阅读说明：本技术 在生物膜控制中表现出协同作用的组合物 (Compositions exhibiting synergistic effects in biofilm control ) 是由 J·S·查普曼 C·E·科恩萨洛 于 2018-10-12 设计创作，主要内容包括：公开了一种控制和去除与水性工业系统接触的表面上的生物膜的方法,其包括以下步骤：加入有效量的生物膜破坏剂,并且向被处理的水性系统中加入杀生物剂,以从与所述水性系统接触的表面上减少和去除形成生物膜的微生物。还公开了聚乙烯亚胺和氧化性杀生物剂的协同组合物。(Disclosed is a method for controlling and removing biofilm on surfaces in contact with aqueous industrial systems comprising the steps of: adding an effective amount of a biofilm disruptor, and adding a biocide to the treated aqueous system to reduce and remove biofilm-forming microorganisms from surfaces in contact with the aqueous system. Also disclosed are synergistic compositions of polyethyleneimine and an oxidizing biocide.)

具体实施方式

下面的详细描述在本质上仅是示例性的，并不用于限制本发明或本发明的应用和使用。此外，不会受到本发明的前述背景技术或下面的详细描述中提出的任何理论的约束。

下面的详细描述在本质上仅是示例性的，并不用于限制本发明或本发明的应用和使用。此外，不会受到本发明的前述背景技术或下面的详细描述中提出的任何理论的约束。

惊奇地发现，杀生物剂，优选氧化性杀生物剂和生物膜破坏剂的一些组合在既杀灭微生物又将其从表面上去除方面表现出对生物膜的协同控制。杀生物剂和生物膜破坏剂的组合的总效果远大于这两种化学物质的单纯叠加效果，使得可以大大减少这一种或两种化学物质的量，并且仍然实现生物膜控制的期望终点。这种协同相互作用并没有在化学物质的所有组合中都发现，也没有在这两种化学物质的所有比例中都发现。

公开了一种控制和去除与水性工业系统接触的表面上的生物膜的方法，其包括以下步骤：加入有效量的生物膜破坏剂，并且向被处理的水性系统中加入杀生物剂，以从与水性系统接触的表面减少和去除形成生物膜的微生物。

本发明还提供了一种协同组合物，其包括生物膜破坏剂和杀生物剂。

可用于本发明的氧化性杀生物剂包括：次氯酸钠、次氯酸钙和其它次氯酸盐、次氯酸、次溴酸，来源于氢氧化铵、氯化铵、硫酸铵、醋酸铵、碳酸氢铵、溴化铵、碳酸铵、氨基甲酸铵、氨基磺酸铵、硝酸铵、草酸铵、过硫酸铵、磷酸铵、硫化铵、尿素和尿素衍生物、以及能够提供铵离子并与氯或溴部分例如氯化或溴化氧化剂、优选次氯酸或次氯酸盐、优选次氯酸盐反应的其它含氮化合物的单卤代胺杀生物剂；以及，铵衍生的氯胺化合物的共混物，例如一氯胺和二氯胺。这种卤代胺杀生物剂是本领域中公知的，例如，参见US 7285224、US7052614、US 7837883、US 7820060。其它氧化性杀生物剂包括二溴氰基丙酰胺、溴氯二甲基乙内酰脲和其它卤代乙内酰脲、以及三氯异氰尿酸。用于对抗生物膜并期望与分散剂一起作用的非氧化性杀生物剂包括异噻唑酮杀生物剂、戊二醛、甲醛和甲醛释放型化合物、四羟基氯化鏻以及其它非阳离子杀生物剂。

本发明提供了一种控制与系统接触的表面上的微生物生物膜的方法，所述系统包括但不限于水性系统，所述方法包括向系统中加入氧化性杀生物剂和包含聚乙烯亚胺表面活性剂的生物膜破坏剂或分散剂的协同组合。聚乙烯亚胺是一种具有高电荷密度的高分子胺，这使得其可以紧紧吸附在带负电荷的基质上。

所述电荷密度可以是8至20meq/g材料，优选10至20meq/g材料，最优选14至20meq/g材料。它是一种水溶性聚合物，通常由乙烯亚胺的聚合而成。它可以包含伯胺、仲胺和叔胺。示例性聚乙烯亚胺可以商标名Lupasol^TM(BASF,Florham Park,NJ)获得。

本发明中使用的生物膜破坏剂是聚乙烯亚胺(“PEI”)，一种低分子量乙烯亚胺共聚物。聚乙烯亚胺的平均分子量小于750,000道尔顿，优选小于100,000道尔顿并且大于500道尔顿。平均分子量通常为750至25,000，优选800至4000，更优选约1000至约3000。聚乙烯亚胺表面活性剂的实例包括但不限于BASF Lupasols(BASF Corporation,Florham Park,N.J.)。分散剂包括约20至约98重量％的聚乙烯亚胺，分散剂的剩余部分包括水，水可以以约2至约80重量％的量存在。其他组分可以包括溶剂，例如低分子量醇，例如乙醇、甲醇和丁醇。

聚乙烯亚胺的一个实施方案由约40％至约50％的水和约40％至约50％的具有氮丙啶的PEI聚合物组成。本发明中提供的浓度仅仅是聚乙烯亚胺聚合物，市售的PEI产品中其它组分或溶剂不被视为是剂量范围的一部分。例如，50克50％PEI产品是25克PEI的剂量。

本发明还提供了一种协同组合物，其包括生物膜破坏剂和杀生物剂，其中生物膜破坏剂是聚乙烯亚胺，以及杀生物剂是优选选自单卤代胺、二卤代胺及其组合的卤代胺。该卤代胺可以是氯胺。优选地，生物膜破坏剂与氧化性杀生物剂的重量比是1份杀生物剂：小于1份生物膜破坏剂。杀生物剂与生物膜破坏剂的重量比可以是1:1至1:80、或1:1至1:40、或1:1至1:20，更优选约1:1至约1:8。

组合物中两种化学物质的相互作用可以以三种可能的方式发生。在第一种方式中，两种化学物质以负向方式相互作用以降低组合物的组合效果，从而所得的结果是小于从其组合活性期望获得的结果。因此，如果一种试剂本身的测量变量达到50的值并且第二种试剂本身达到50的值，则在负向相互作用下，两者的组合降低值将小于100。可以相互作用的另一种方式是叠加，最终结果是两个值的简单相加。因此，如果将分别能够达到50的值的两种试剂进行组合，则它们的总组合值将是100。在第三种方式中，这在微生物控制的情况下是最理想的，将分别能够达到50的值的两种试剂进行组合的结果将会是大于100的某个值。

研究员已经研发出用于测量组合物中各组分之间相互作用的性质和程度的公式。在微生物控制领域中，最常用的等式是Kull等人(Kull等人，1961，J.Appl.Microbiology9:538)中描述的，其通过引用并入本文。在专利中使用该等式的最新示例是US#9555018“可用于控制工业工艺中微生物的有机酸的协同组合”和US#8778646“使用啤酒花酸提取物和有机酸在繁殖、调节和发酵过程中处理微生物的方法”。原始的Kull等式使用抗菌剂的最小抑制浓度(MIC)作为测定终点。MIC值是对微生物培养物产生抑制作用的抗菌剂的最低测量浓度。抑制作用可以通过检测微生物培养物的浊度来视觉确定；在其它可能的方式中，也可以通过基于培养物的方法或显微镜方法对活细胞进行计数或者通过代谢活性的一些测量来确定。该等式如下所示：

协同指数＝(终点a/终点A)+(终点b/终点B)，其中终点A是试剂A本身的终点，终点a是与试剂B组合的试剂A的终点，终点B是试剂B本身的终点，并且终点b是与试剂A组合的试剂B的终点。

在这项工作中，通过测量处理后剩余的模型生物膜中活细胞的数量来确定单独或联合使用这些试剂的功效。最小生物膜清除值(MBEC)定义为与未处理的对照相比，活细胞的数量减少95％。相对无毒的分散剂无法以物理上可能的浓度达到这种杀灭水平，因此对于这些试剂，MBEC视为是测试的最高值。因为该值在协同指数等式中用作除数，所以该最高测试值实际上是MBEC的低估值，因此协同指数值也是低估的。

本发明主要用于工业工艺水，特别是冷却塔、蒸发器、冷却器和冷凝器，但是也用于在水性基体中形成生物膜而不利于工艺的任何工业工艺。预期本发明还可以用于地热流体处理、油气开采以及使用就地清洁系统的工艺。

待使用的生物膜破坏剂，优选PEI的浓度范围是被处理的水性系统中每升(ppm)水1至200毫克，或优选1至100毫克每升(ppm)水、或1至50mg/L、1至15mg/L，更优选1至10mg/L。

基于每升被处理水中杀生物剂的毫克数，以Cl₂计活性基础上的杀生物剂按照以下量计量加入：通常以Cl₂计至少1.0(mg/L)ppm，或以Cl₂计至少1.5ppm，或优选以Cl₂计至少2ppm或更高，或以Cl₂计至少2.5ppm或更高且以Cl₂计至多15ppm或更优选以Cl₂计至多10ppm。优选地，杀生物剂的剂量是每升被处理水1.5mg至10mg杀生物剂。

优选地，生物膜破坏剂与杀生物剂，优选氧化性杀生物剂的重量比是1份杀生物剂：至少1份生物膜破坏剂。杀生物剂与生物膜破坏剂的重量比可以是1:1至1:80或1:1至1:40，优选1:1至1:20，更优选1:1至1:8。每种组分均按重量测量。

本领域技术人员能够确定最佳剂量加料点，但是通常优选直接在被污染位置的上游。例如，本发明可以应用于冷却塔水池或直接应用于冷却塔分配箱或网前箱，从而处理冷却水系统。

生物膜破坏剂和氧化性杀生物剂可以顺序或同时加入，或者各组分可以混合在一起并且作为单一组合物加入。

实施例

实施例1、一氯胺和PEI的协同效果

进行剂量反应研究以确定单独的一氯胺和单独的PEI的最小生物膜清除浓度(MBEC)。MBEC定义为通过活菌平板计数测量，将活生物膜种群减少未处理的对照值的95％的试剂浓度。然后，进行实验以确定组合两种试剂，单独的氧化性杀生物剂一氯胺和分散剂PEI对生物膜种群的结果。实验检测了三种浓度的一氯胺与四种浓度的PEI。实施例中使用的PEI是BASF的Lupasol^TMG20。

M9YG培养基是补充了500mg/L葡萄糖和0.01％酵母提取物的简单基础盐培养基。盐组合物旨在模拟典型的冷却塔水组成。培养基的组成使用以下过程制备：使用64克Na₂HPO₄.7H₂O、15克KH₂PO₄、2.5克NaCl和5克NH₄Cl在一升水中混合成5XM9盐组合物。分成200毫升等份试样，并且进行灭菌(通过高压灭菌器)。在搅拌下向750毫升无菌去离子水中加入无菌补充溶液。在加入CaCl₂时会出现白色沉淀，但是在搅拌下会溶解。

补充溶液是200毫升5XM9组合物、2毫升1M MgSO4、0.1毫升1M CaCl₂、20毫升20％葡萄糖、1毫升10％酵母提取物和足够的水以制成1000毫升溶液。参见参考文献：MolecularCloning-A Laboratory Manual(Second Edition).1989.J.Sambrook&T.Maniatis.ColdSpring Harbor Press。

实施例中使用的培养液是恶臭假单胞菌(Pseudomonas putida)的过夜培养物。假单胞菌是常见的冷却水污染物。虽然冷却水种群是多微生物的，但是假单胞菌通常在此类研究中用作整个种群的代表。

简言之，在CDC生物膜反应器中使用M9YG基础盐生长培养基在不锈钢316试片上生长生物膜24小时。向12孔细胞培养平板的孔中加入单独的PEI、单独的一氯胺以及氧化剂和分散剂的组合。使用M9YG培养基作为对照。在生物膜生长后，从CDC反应器中的棒上取下各试片，并放入平板的孔中。然后，在28℃摇动下培育平板2小时。在培育后，从孔中取出试片，放入5毫升磷酸盐缓冲盐水(PBS)中，并超声处理6分钟。然后，通过平板法测定释放到流体中的活细胞。

通过Kull等人的方法计算协同指数。该方法确定各抗菌剂自身的抑制浓度的限定终点，然后确定两种试剂组合在一起的抑制水平。Kull中描述的等式用MBEC值表示为：

协同指数(SI)＝MBEC a/MBEC A+MBEC b/MBEC B。

其中“MBEC a”是组合中化合物A的MBEC值，“MBEC A”是化合物A自身的MBEC值，“MBEC b”是组合中化合物“B”的MBEC值，并且“MBEC B”是化合物B自身的MBEC值。

协同指数为1表示两种试剂之间没有相互作用，例如，这些值只是简单叠加的。SI值大于1表示两种化合物以拮抗方式相互作用，而SI值小于1表示两种化合物以协同方式相互作用。

下表1表明，单独的一氯胺需要20mg/L的浓度以实现活生物膜种群减少大于90％，而800mg/L的PEI实现了减少71.4％。然而，所检测的两种试剂的多种比例显示出比单独添加这两种试剂的预期活性更高的活性。例如，2.5mg/L MCA(单独MCA的值的1/8)和25mg/LPEI(单独PEI的值的1/32)的组合能够实现活生物膜细胞减少95％的MBEC目标。这种协同效果是MCA与PEI的比例为1:1.25至1:20时获得的。

表1	％减少	协同指数	比例
				对照	0
20mg/L MCA	93.58
				800mg/L PEI	71.4
10mg/L MCA/200mg/L PEI	98.91	0.75	1:10
				10mg/L MCA/100mg/L PEI	99.8	0.63	1:5
10mg/L MCA/50mg/L PEI	99.8	0.56	1:2.5
				10mg/L MCA/25mg/L PEI	99.59	0.53	1:1.3
5mg/L MCA/200mg/L PEI	93.63	0.5	1:20
				5mg/L MCA/100mg/L PEI	97.98	0.38	1:10
5mg/L MCA/50mg/L PEI	95.93	0.31	1:5
				5mg/L MCA/25mg/L PEI	99.59	0.28	1:2.5

实施例32、一氯胺/二氯胺共混物和PEI的协同效果

进行剂量反应研究以确定单独的一氯胺/二氯胺共混物(MCA/DCA)和单独的PEI的最小生物膜清除浓度(MBEC)。MCA/DCA共混物由9份MCA和1份DCA组成。MBEC定义为通过活菌平板计数测量，将活生物膜种群减少未处理的对照值的95％的试剂浓度。然后，进行实验以确定组合两种试剂，单独的氧化性杀生物剂MCA/DCA和分散剂PEI对生物膜种群的结果。实验检测了三种浓度的MCA/DCA与四种浓度的PEI。

简言之，在CDC生物膜反应器中使用M9YG基础盐生长培养基在不锈钢316试片上生长生物膜24小时。向12孔细胞培养平板的孔中加入单独的PEI、单独的MCA/DCA以及氧化剂和分散剂的组合。使用M9YG培养基作为对照。在生物膜生长后，从CDC反应器中的棒上取下各试片，并放入平板的孔中。

然后，在28℃摇动下培育平板2小时。在培育后，从孔中取出试片，放入5毫升磷酸盐缓冲盐水(PBS)中，并超声处理6分钟。然后，通过平板法测定释放到流体中的活细胞。

通过Kull等人描述的方法计算协同指数，与实施例1一样。

下表2表明，单独的MCA/DCA需要10mg/L的浓度以实现活生物膜种群减少大于90％，而800mg/L的PEI实现了减少71.4％。然而，所检测的两种试剂的多种比例显示出比单独添加这两种试剂的预期活性更高的活性。例如，2.5mg/L MCA/DCA(单独MCA/DCA的值的1/4)和25mg/L PEI(单独PEI的值的1/32)的组合能够实现活生物膜细胞减少95％的MBEC目标。这种协同效果是MCA/DCA与PEI的比例为1:1.25至1:20时获得的。

虽然在上面的详细描述中已经给出了至少一个示例性实施方案，但是应当理解，还存在大量的变化。还应当理解，一个或多个示例性实施方案仅是示例，并不用于以任何方式限制本发明的范围、适用性或配置。相反，上面的详细描述将为本领域技术人员提供用于实施示例性实施方案的方便路线图；应当理解，在不脱离所附权利要求及其合法等同物中阐述的本发明范围的情况下，可以对示例性实施方案中描述的元素的功能和布置进行各种改变。