一种i型胶原蛋白的提取方法及其应用

文档序号:900171 发布日期:2021-02-26 浏览:7次 >En<

阅读说明:本技术 一种i型胶原蛋白的提取方法及其应用 (Extraction method and application of type I collagen ) 是由 刘晓华 于 2020-11-11 设计创作,主要内容包括:本发明属于软骨的技术领域,具体涉及一种I型胶原蛋白的提取方法及其应用,其中,一种I型胶原蛋白的提取方法包括:将动物骨脱脂、脱钙后,进行蛋白酶酶解,得到酶解液;提取所述酶解液后,加入蛋白变性溶液,得到胶原蛋白沉淀;溶解所述胶原蛋白沉淀后,盐析溶解后的胶原蛋白,得到胶原蛋白粗产物;纯化所述胶原蛋白粗产物,得到I型胶原蛋白。将I型胶原蛋白应用在实际中。本发明能够从动物硬质骨中提取I型胶原蛋白,大大提升了可食性骨的综合利用价值。本发明提供的I型胶原蛋白的提取方法的应用,其交联度适宜,具有良好的生物活性,且性质稳定,不易降解,具备新型软骨替代物生成纤维软骨的潜在应用。(The invention belongs to the technical field of cartilage, and particularly relates to an extraction method and application of type I collagen, wherein the extraction method of the type I collagen comprises the following steps: degreasing and decalcifying animal bones, and performing protease enzymolysis to obtain an enzymolysis liquid; after extracting the enzymolysis liquid, adding a protein denaturation solution to obtain collagen precipitation; dissolving the collagen precipitate, and salting out the dissolved collagen to obtain a crude collagen product; and purifying the crude collagen product to obtain the type I collagen. Type I collagen is used in practice. The invention can extract type I collagen from animal hard bones, and greatly improves the comprehensive utilization value of edible bones. The extraction method of the type I collagen provided by the invention has the advantages of proper crosslinking degree, good biological activity, stable property and difficult degradation, and has the potential application of generating fibrocartilage by using a novel cartilage substitute.)

一种I型胶原蛋白的提取方法及其应用

技术领域

本发明属于软骨的技术领域,具体涉及一种I型胶原蛋白的提取方法及其应用。

背景技术

I型胶原蛋白(COL),由两条α1链和一条α2链构成的异源三聚体,每条肽链均含有多个(Gly-Xaa-Yaa)n的重复序列,其中Gly为甘氨酸,X与Y常分别为脯氨酸及羟脯氨酸,这种结构有助于形成稳定三螺旋链结构,再成为原胶原并切除氨基端和羧基端,成为Ⅰ型胶原。I型胶原蛋白是人体内所含的各种胶原蛋白中最丰富的一种,存在于肌肉、皮肤、动脉壁、纤维软骨中,可以从动物组织中提取,具有优良的生物学性质,如低抗原性、凝血作用以及可调节细胞的粘附、增殖、分化等行为,其在生物相容性方面是最好的替代材料,且有利于细胞长入及软组织愈合。

人体拥有大量软骨,在软骨出现问题时,常常需要对应的软骨替代物来进行对应的治疗,由于I型胶原蛋白其在生物相容性方面是最好的替代材料,因此,一种各方面性能良好的I型胶原蛋白就显得尤为重要。

为了解决上述问题,本发明提供一种I型胶原蛋白的提取方法及其应用。

发明内容

本发明的一个目的是提供了一种I型胶原蛋白的提取方法,其能够从动物硬质骨中提取I型胶原蛋白,大大提升了可食性骨的综合利用价值。

本发明还有一个目的是提供了一种I型胶原蛋白的提取方法的应用,其交联度适宜,具有良好的生物活性,且性质稳定,不易降解,具备新型软骨替代物生成纤维软骨的潜在应用。

为了实现根据本发明的这些目的和其它优点,本发明提供了一种I型胶原蛋白的提取方法,包括以下步骤:

将动物骨脱脂、脱钙后,进行蛋白酶酶解,得到酶解液;

提取所述酶解液后,加入蛋白变性溶液,得到胶原蛋白沉淀;

溶解所述胶原蛋白沉淀后,盐析溶解后的胶原蛋白,得到胶原蛋白粗产物;

纯化所述胶原蛋白粗产物,得到I型胶原蛋白。

优选的是,所述将动物骨脱脂、脱钙后,进行蛋白酶酶解,得到酶解液包括:

将动物骨破碎、水洗后,用浓度为0.5-0.8mol/L的氢氧化钠或者体积分数为70-75%乙醇溶液进行脱脂;

用浓度为0.01-0.02mol/L的盐酸对脱脂后的动物骨进行脱钙;

向脱钙后的物料里加入蛋白酶,进行酶解,得到酶解液。

优选的是,所述进行蛋白酶酶解,得到酶解液包括:

向脱钙后的物料中加入第一蛋白酶,在温度为50-55℃,pH=5-7条件下,酶解20-40min,得到第一酶解液;

向第一酶解液中加入第二蛋白酶,在温度为50-55℃,pH=5-7条件下酶解,得到酶解液;

其中,所述第一蛋白酶的质量分数为0.2~0.5‰,所述第一蛋白酶和所述第二蛋白酶的质量分数总和为3~5‰,两次酶解时间总和为5~7h。

优选的是,所述提取所述酶解液后,加入蛋白变性溶液,得到胶原蛋白沉淀包括:

提取酶解液,对酶解液进行缓慢搅拌、离心,得到上清液;

向所述上清液中加入氢氧化钠溶液,搅拌、调节pH后,得到去处蛋白酶的胶原蛋白沉淀。

优选的是,所述溶解所述胶原蛋白沉淀后,盐析溶解后的胶原蛋白,得到胶原蛋白粗产物包括:

将含有过氧乙酸的磷酸氢二钠溶液加入所述胶原蛋白沉淀中,待所述胶原蛋白沉淀溶解后,静置盐析、过滤、清洗,得到胶原蛋白粗产物。

优选的是,所述纯化所述胶原蛋白粗产物,得到I型胶原蛋白包括:

将含过氧乙酸的醋酸溶液加入所述胶原蛋白粗产物中,得到1g/L的胶原蛋白溶液;

将所述胶原蛋白溶液进行超滤纯化柱层析分离,经纳滤膜浓缩系统进入到双效降膜真空浓缩器,得到未消毒的I型胶原蛋白;

用钴60-γ射线辐照所述I型胶原蛋白,得到I型胶原蛋白。

优选的是,所述动物骨为牛跟腱或者牛骨。

一种所述提取方法提取的I型胶原蛋白在生成软骨替代物,并根据所述软骨替代物生成纤维软骨的应用。

优选的是,所述I型胶原蛋白的胶原分子间通过赖氨酸氧化酶形成赖氨酸-羟赖氨酸共价交联,形成致密的胶原纤维,生成软骨替代物,并根据所述软骨替代物生成纤维软骨。

本发明的有益效果

1、本发明提供的I型胶原蛋白的提取方法,其能够从动物硬质骨中提取I型胶原蛋白,大大提升了可食性骨的综合利用价值;

2、本发明提供的I型胶原蛋白的提取方法,其本发明的制备方法简单、生产效率高、经济效益突出;

3、本发明提供的I型胶原蛋白的提取方法,其工艺中采用膜法与真空降膜梯度浓缩水解胶原蛋白,节能效果明显;

4、本发明提供的I型胶原蛋白的提取方法,其提取过程含过氧乙酸,可以保证生产过程的无菌操作环境,同时,结合后续步骤用钴60-γ射线辐照,前后两个步骤的配合,能够使得提取的全程消毒无菌。

5、本发明提供的I型胶原蛋白的应用,其采用I型胶原蛋白,交联度适宜,具有良好的生物活性,且性质稳定,不易降解,具备新型软骨替代物生成纤维软骨的潜在应用。

附图说明

图1为一实施例提供的提取I型胶原蛋白的方法流程示意图;

图2为一实施例提供的I型胶原蛋白板软骨细胞甲苯胺染色示意图;

图3为一实施例提供的I型胶原蛋白纤维的显微镜成像。

具体实施方式

下面结合实施例对本发明做进一步的详细说明,以令本领域技术人员参照说明书文字能够据以实施。

应当理解,本文所使用的诸如“具有”、“包含”以及“包括”术语并不排除一个或多个其它组合的存在或添加。

本发明提供了一种I型胶原蛋白的提取方法,包括以下步骤:

步骤1,将动物骨脱脂、脱钙后,进行蛋白酶酶解,得到酶解液;

具体的,将动物骨破碎、水洗后,用浓度为0.5-0.8mol/L的氢氧化钠或者体积分数为70-75%乙醇溶液进行脱脂;

具体的,用浓度为0.01-0.02mol/L的盐酸对脱脂后的动物骨进行脱钙;

具体的,向脱钙后的物料中加入第一蛋白酶,在温度为50-55℃,pH=5-7条件下,酶解20-40min,得到第一酶解液;

具体的,向第一酶解液中加入第二蛋白酶,在温度为50-55℃,pH=5-7条件下酶解,得到酶解液;

其中,所述第一蛋白酶的质量分数为0.2-0.5‰,所述第一蛋白酶和所述第二蛋白酶的质量分数总和为3-5‰,两次酶解时间总和为5-7h。

步骤2,提取所述酶解液后,加入蛋白变性溶液,得到胶原蛋白沉淀;

具体的,提取酶解液,对酶解液进行缓慢搅拌、离心,收集得到上清液;

具体的,向所述上清液中加入一定浓度的氢氧化钠溶液,并进行缓慢搅拌、调节pH后,得到去处蛋白酶的胶原蛋白沉淀。

步骤3,溶解所述胶原蛋白沉淀后,盐析溶解后的胶原蛋白,得到胶原蛋白粗产物;

具体的,将胶原蛋白溶于含有低浓度过氧乙酸的磷酸氢二钠(0.02mol/L),盐析胶原蛋白,静置一段时间、过滤、用蒸馏水快速清洗数次,得到胶原蛋白粗产物。

步骤4,纯化所述胶原蛋白粗产物,得到I型胶原蛋白。

具体的,将上述胶原蛋白粗产物溶于0.5mol/L醋酸(含过氧乙酸),得到1g/L的胶原蛋白溶液;

将所述胶原蛋白溶液(不断加入纯化水,直至纯化后的胶原蛋白液pH接近5时,获取高纯度胶原)进行超滤纯化柱层析分离后进入到纳滤膜浓缩系统,随后进入到双效降膜真空浓缩器,得到未消毒的I型胶原蛋白;

用钴60-γ射线辐照所述I型胶原蛋白,得到I型胶原蛋白。

其中,具体的,所述动物骨为牛跟腱或者牛骨。

一种所述提取方法提取的I型胶原蛋白在生成软骨替代物,并根据所述软骨替代物生成纤维软骨的应用。

具体的,所述I型胶原蛋白的胶原分子间通过赖氨酸氧化酶形成赖氨酸-羟赖氨酸共价交联,形成致密的胶原纤维,生成软骨替代物,并根据所述软骨替代物生成纤维软骨。

本发明提供了下列实施例,来具体说明本发明的方法和应用。

实施例1

一种I型胶原蛋白的提取方法,包括以下步骤:

将500g牛跟腱冷冻切片,用体积分数75%乙醇溶液浸泡6h脱脂消毒,用水冲洗干净,粉碎,按固液比1∶60(g/mL)分散于0.5mol/L醋酸-胃蛋白酶溶液中〔m(牛跟腱)∶m(胃蛋白酶)=1∶0.03〕,使用冷循环装置在10℃以下进行酶解提取,提取过程中缓慢搅拌。7h后,提取液于4℃左右8000r/min离心5min,收集上清液,进入纯化阶段。首先,采用等电点沉淀法去除胃蛋白酶:往上清液中缓慢加入0.5mol/L氢氧化钠溶液,缓慢搅拌,调节溶液的pH至5.8-7.0,可观察到胶原蛋白沉淀析出。将沉淀溶于含有低浓度过氧乙酸的磷酸氢二钠(0.02mol/L),盐析胶原蛋白,静置2分钟,过滤,纯水快速清洗胶原蛋白沉淀物3-4次,即得Ⅰ型胶原蛋白粗提取物。将粗提物溶于0.5mol/L醋酸(含过氧乙酸)配制成1g/L胶原蛋白溶液,在一定压力下进行超滤纯化柱层析分离,其中,纯化层析柱截留相对分子质量为100kDa,超滤纯化过程中压力保持在0.8MPa以下。为保证胶原蛋白的稳定性,尽量使用温度保持4℃的冷循环装置。纯化过程中,不断加入纯化水,直至纯化后的胶原蛋白液pH≈5,即得到高纯度胶原蛋白液。

经检测,本申请实施例1中I型胶原蛋白的提取产率达到78.1%。但未经钴60-γ射线辐照法进行消毒杀菌,产品合格率降低。

根据上述记载,还包括对纯化过程中胃蛋白酶的残余检测,具体地,蛋白质属于两性物质,当其pH处于等电点时,分子表面净电荷为零,蛋白分子间的静电排斥作用减弱,吸引力增大,蛋白分子聚集发生沉淀。采用等电点沉淀法进行测试,蛋白质的回收率较高,并可有效清除中性脂肪。

胃蛋白酶可切除胶原蛋白非螺旋结构区域的过敏端肽,不破坏三螺旋结构。若将残留有胃蛋白酶的胶原蛋白制成产品容易出现颜色发黄等现象,并伴有刺激等不良反应,应尽量清除胶原蛋白中的胃蛋白酶。多次预实验发现,调节溶液的pH在5.8以上,接近胶原蛋白等电点时,胶原蛋白即絮凝沉淀。

由于胃蛋白酶亲水性较强,在水中的溶解度较大,根据溶解度的差异,多次快速水洗可除去胃蛋白酶。胃蛋白酶与鞣酸结合会出现白色沉淀,根据这一性质,可以判断胃蛋白酶是否残留。使用0.5mol/L氢氧化钠溶液,调节pH到胶原蛋白的等电点时,胶原蛋白析出,取滤液加入50g/L鞣酸溶液,出现大量白色浑浊,说明胶原蛋白沉淀后的滤液中含有较高浓度的胃蛋白酶;第1次和第2次水洗胶原蛋白后的滤液加入50g/L鞣酸溶液后,白色沉淀逐渐减少,第3次水洗胶原蛋白后,水洗滤液与鞣酸反应后,已观察不到絮状沉淀,肉眼判断如纯净水清澈。所以,经3次清洗可基本除去胃蛋白酶。

在此实施例中,Ⅰ型胶原蛋白不溶于水,但可溶于稀醋酸溶液,故采用酸酶结合提取法较为适用。由于胶原蛋白在38℃以上容易变性,因而提取操作尽量低温。胃蛋白酶蛋白相对分子质量大小在35-55kDa,会刺激眼睛、呼吸系统和皮肤,是一种过敏源,纯化胶原蛋白的过程中需将其清除。胃蛋白酶与胶原蛋白长期作用,会导致胶原蛋白裂解为胶原蛋白肽甚至小分子质量的氨基酸。为消除胃蛋白酶的影响,通常通过盐析或加热失活胃蛋白酶。但盐析会引入氯离子,增加后期纯化胶原蛋白的困难,加热操作步骤会加大胶原蛋白变性的风险,进而破坏了胶原蛋白的结构及功效。

Ⅰ型胶原蛋白的相对分子质量约为300kDa,可被半透膜截留,一些小分子杂质可以从半透膜穿过从而达到分离纯化效果。但这一纯化过程周期长,需7d左右,容易滋生微生物,不利于工业化生产。本专利方法采用等电点沉淀法,可以快速有效清除胶原蛋白溶液中的蛋白酶;将胶原蛋白溶于磷酸氢二钠,盐析胶原蛋白,静置过滤,清洗胶原蛋白粗产物;使用超滤纯化技术,可得到高纯度的Ⅰ型胶原蛋白。

实施例2

从牛骨中提取I型胶原蛋白,包括以下步骤:

选取-18℃冷冻骨原料10公斤,首先用清水将其杂质冲洗干净后,通过硬质骨破碎机破碎将经过粉碎,粉碎粒度控制在10mm;

将粉碎后的骨使用清水冲洗、清理去杂、去除附着物;

在清洗后的碎骨采用NaOH溶液浓度为0.5mol/L,浸泡时间为6h,浸泡过程中搅拌转速为12rpm进行脱脂;

采用HCl溶液浓度为0.01mol/L,浸泡时间为10h,浸泡过程中搅拌转速为12rpm进行脱钙处理;

将前步骤处理后的物料进行蒸煮,蒸煮温度90℃,2h,蒸煮过程中搅拌转速为12rpm;

所使用的酶为胃蛋白酶,添加量为0.3‰,酶解温度为50℃,酶解时间5h,保持在pH5,酶解过程中搅拌转速为12rpm;

将上述酶解后物料首先通过固液分离,通过过滤的方式进行固液分离;液油分离采用碟片离心机对其进行处理,重相(酶解液)与轻相(骨油)通过高速离心进行分离;

往酶解液中缓慢加入0.5mol/L氢氧化钠溶液,并进行缓慢搅拌,调节pH,得胶原蛋白沉淀并去除蛋白酶;

将胶原蛋白溶于含有低浓度过氧乙酸的磷酸氢二钠(0.02mol/L),盐析胶原蛋白,静置2分钟后过滤,蒸馏水清洗胶原蛋白粗产物5次;

将粗提物溶于0.5mol/L醋酸(含过氧乙酸)配制成1g/L胶原蛋白溶液,在一定压力下进行超滤纯化柱层析分离,纯化层析柱截留相对分子质量为100kDa,超滤纯化过程中压力保持在0.8MPa以下。为保证胶原蛋白的稳定性,尽量使用温度保持4℃的冷循环装置。纯化过程中,不断加入纯化水,直至纯化后的胶原蛋白液pH≈5,即得到高纯度胶原蛋白液。

胶原蛋白液进入到纳滤膜浓缩系统,纳滤膜孔径1nm,浓缩到浓度Brix10°;随后进入到双效降膜真空浓缩器,浓缩到浓度为Brix40°,体积缩小为原体积的31.4%;将高纯度胶原蛋白浓缩液置于冷冻干燥机中,-50℃下冷冻干燥48h,节约能耗约69%。取出后真空封装,产品用钴60-γ射线辐照法进行消毒杀菌。

经检测,本申请实施例2中I型胶原蛋白的提取产率达到81.7%,且计算I型胶原蛋白得率(%)=冻干I型胶原蛋白粗品质量/提取用原料骨质量×100%,其得率为3.53%。

实施例3

从牛跟腱中提取I型胶原蛋白,包括:

将新鲜的牛跟腱用超纯水清洗干净,采用手术刀片剔除筋膜、碎骨、廋肉和脂肪,在-20℃冰箱中将牛跟腱冷冻至硬化,取出后沿着组织纤维方向将牛跟腱切成1mm厚度的跟腱片。

称取100g跟腱片于75%乙醇:正己烷=3:1的混合溶液中浸泡12h,溶液温度15-25℃,机械搅拌,采用不锈钢丝网滤去溶液,取出后用超纯水清洗5次。

用0.05mol/L碳酸钠溶液浸泡24h,溶液温度15-25℃,机械搅拌,间隔8h更换一次碳酸钠溶液,采用不锈钢丝网滤去溶液,取出后用超纯水清洗数次至跟腱片表面为中性(pH值为7)。

将脱杂蛋白后的跟腱片放入绞肉机中绞碎,将绞碎后的跟腱组织置于1000mL的75%(体积分数)乙酸溶液,溶液温度15-25℃,采用匀浆机对其匀浆破碎5次,每次匀浆5min。

将匀浆液至于大容量的不锈钢容器中,继续向匀浆液中加入1000mL75%(体积分数)的乙酸溶液,再向其中加入胃蛋白酶,胃蛋白酶浓度为100mg/L,15-25℃下搅拌消化24h,离心15-30min。取上清液备用。

往上清液中缓慢加入0.5mol/L氢氧化钠溶液,并进行缓慢搅拌,调节pH,得胶原蛋白沉淀并去除蛋白酶;

将胶原蛋白溶于含有低浓度过氧乙酸的磷酸氢二钠(0.02mol/L),盐析胶原蛋白,静置2分钟后过滤,蒸馏水清洗胶原蛋白粗产物4次;

将粗提物溶于0.5mol/L醋酸(含过氧乙酸)配制成1g/L胶原蛋白溶液,在一定压力下进行超滤纯化柱层析分离,纯化层析柱截留相对分子质量为100kDa,超滤纯化过程中压力保持在0.8MPa以下。为保证胶原蛋白的稳定性,尽量使用温度保持4℃的冷循环装置。纯化过程中,不断加入纯化水,直至纯化后的胶原蛋白液pH≈5,即得到高纯度胶原蛋白液。

将高纯度胶原蛋白原液置于冷冻干燥机中在-50℃下冷冻干燥48h,取出后真空封装。产品用钴60-γ射线辐照法进行消毒杀菌。

经检测,本申请实施例3中I型胶原蛋白的提取产率达到78.6%。

实施例4

从牛跟腱中提取I型胶原蛋白,包括:

将新鲜的牛跟腱用超纯水清洗干净,采用手术刀片剔除筋膜、碎骨、廋肉和脂肪,在-20℃冰箱中将牛跟腱冷冻至硬化,取出后沿着组织纤维方向将牛跟腱切成1mm厚度的跟腱片。

称取100g跟腱片于70%乙醇:正己烷=3:1的混合溶液中浸泡12h,溶液温度15-25℃,机械搅拌,采用不锈钢丝网滤去溶液,取出后用超纯水清洗5次。

用0.04mol/L碳酸钠溶液浸泡24h,溶液温度15-25℃,机械搅拌,间隔8h更换一次碳酸钠溶液,采用不锈钢丝网滤去溶液,取出后用超纯水清洗数次至跟腱片表面为中性(pH值为7)。

将脱杂蛋白后的跟腱片放入绞肉机中绞碎,将绞碎后的跟腱组织置于1000mL的72%(体积分数)乙酸溶液,溶液温度15-25℃,采用匀浆机对其匀浆破碎5次,每次匀浆5min。

将匀浆液至于大容量的不锈钢容器中,继续向匀浆液中加入1000mL72%(体积分数)的乙酸溶液,再向其中加入胃蛋白酶,胃蛋白酶浓度为80mg/L,15-25℃下搅拌消化24h,离心15-30min。取上清液备用。

使用0.6mol/L氢氧化钠溶液将上清液中和至溶液呈中性,加入氯化钠至氯化钠浓度为2mol/L,搅拌盐析12h,离心15-30min。将沉淀溶于含有低浓度过氧乙酸的磷酸氢二钠(0.02mol/L),盐析胶原蛋白,静置5分钟后过滤,蒸馏水清洗胶原蛋白粗产物3次;

将粗提物溶于0.5mol/L醋酸(含过氧乙酸)配制成1g/L胶原蛋白溶液,在一定压力下进行超滤纯化柱层析分离,纯化层析柱截留相对分子质量为100kDa,超滤纯化过程中压力保持在0.8MPa以下。为保证胶原蛋白的稳定性,尽量使用温度保持4℃的冷循环装置。纯化过程中,不断加入纯化水,直至纯化后的胶原蛋白液pH≈5,即得到高纯度胶原蛋白液。将高纯度胶原蛋白原液置于冷冻干燥机中在-50℃下冷冻干燥48h,取出后真空封装。产品用钴60-γ射线辐照法进行消毒杀菌。

经检测,本实施例4中I型胶原蛋白的提取产率达到79.1%。

实施例5

在本申请的另一个实施例中,从牛跟腱中提取I型胶原蛋白,包括:

将新鲜的牛跟腱用超纯水清洗干净,采用手术刀片剔除筋膜、碎骨、廋肉和脂肪,在-20℃冰箱中将牛跟腱冷冻至硬化,取出后沿着组织纤维方向将牛跟腱切成1mm厚度的跟腱片。

称取100g跟腱片于73%乙醇:正己烷=3:1的混合溶液中浸泡12h,溶液温度15-25℃,机械搅拌,采用不锈钢丝网滤去溶液,取出后用超纯水清洗5次。

用0.06mol/L碳酸钠溶液浸泡24h,溶液温度15-25℃,机械搅拌,间隔8h更换一次碳酸钠溶液,采用不锈钢丝网滤去溶液,取出后用超纯水清洗数次至跟腱片表面为中性(pH值为7)。

将脱杂蛋白后的跟腱片放入绞肉机中绞碎,将绞碎后的跟腱组织置于1000mL的70%(体积分数)乙酸溶液,溶液温度15-25℃,采用匀浆机对其匀浆破碎5次,每次匀浆5min。

将匀浆液至于大容量的不锈钢容器中,继续向匀浆液中加入1000mL70%(体积分数)的乙酸溶液,再向其中加入胃蛋白酶,胃蛋白酶浓度为80mg/L,15-25℃下搅拌消化24h,离心15-30min。取上清液备用。

使用0.6mol/L氢氧化钠溶液将上清液中和至溶液呈中性,加入氯化钠至氯化钠浓度为2mol/L,搅拌盐析12h,离心15-30min。将沉淀溶于含有低浓度过氧乙酸的磷酸氢二钠(0.02mol/L),盐析胶原蛋白,静置5分钟后过滤,蒸馏水清洗胶原蛋白粗产物3次;

粗提物溶于0.5mol/L醋酸(含过氧乙酸)配制成1g/L胶原蛋白溶液,首先经过由活性炭填充的过滤脱色柱以5倍外水体积流过,随后以串联方式,经过脱色的液体再以8倍外水体积流速进入到填充阴阳离子树脂的树脂柱;

经过脱色脱盐处理后的液体离心后进入到纳滤膜浓缩系统,纳滤膜孔径1nm,浓缩到浓度Brix10°;随后进入到双效降膜真空浓缩器,浓缩到浓度为Brix40°,体积缩小为原体积的30.9%;将高纯度胶原蛋白浓缩液置于冷冻干燥机中,-50℃下冷冻干燥48h,节约能耗约69%。取出后真空封装,产品用钴60-γ射线辐照法进行消毒杀菌。

经检测,本申请实施例6中I型胶原蛋白的提取产率达到63.7%,且计算I型胶原蛋白得率(%)=冻干I型胶原蛋白粗品质量/提取用原料骨质量×100%,其得率为2.08%。通过对酶溶性I型胶原蛋白(PSC)的分析,其具有完整的3股螺旋结构,保持了较好的网状结构,蛋白结构未被破坏。

实施例6

从牛骨中提取I型胶原蛋白,包括:

选取-18℃冷冻骨原料20公斤,首先用清水将其杂质冲洗干净后,通过硬质骨破碎机破碎将经过粉碎,粉碎粒度控制在10mm;

将粉碎后的骨使用清水冲洗、清理去杂、去除附着物;

在清洗后的碎骨采用NaOH溶液浓度为0.8mol/L,浸泡时间为6h,浸泡过程中搅拌转速为12rpm进行脱脂;

采用HCl溶液浓度为0.02mol/L,浸泡时间为10h,浸泡过程中搅拌转速为12rpm进行脱钙处理;

将前步骤处理后的物料进行蒸煮,蒸煮温度90℃,2h,蒸煮过程中搅拌转速为12rpm;

蛋白酶分两次加入,第一次加入蛋白酶,添加量为0.5‰,酶解温度为50℃,保持在pH5,酶解时间为20min;之后再第二次加入蛋白酶,酶解温度为50℃,保持在pH5,两次加入蛋白酶的添加量合计为4‰,两次酶解时间合计为5h,酶解过程中搅拌转速为12rpm;

将上述酶解后物料首先通过固液分离,通过过滤的方式进行固液分离;液油分离采用碟片离心机对其进行处理,重相(酶解液)与轻相(骨油)通过高速离心进行分离;

往酶解液中缓慢加入0.5mol/L氢氧化钠溶液,并进行缓慢搅拌,调节pH,得胶原蛋白沉淀并去除蛋白酶;

将胶原蛋白溶于含有低浓度过氧乙酸的磷酸氢二钠(0.02mol/L),盐析胶原蛋白,静置2分钟后过滤,蒸馏水清洗胶原蛋白粗产物5次;

将粗提物溶于0.5mol/L醋酸(含过氧乙酸)配制成1g/L胶原蛋白溶液,在一定压力下进行超滤纯化柱层析分离,纯化层析柱截留相对分子质量为100kDa,超滤纯化过程中压力保持在0.8MPa以下。为保证胶原蛋白的稳定性,尽量使用温度保持4℃的冷循环装置。纯化过程中,不断加入纯化水,直至纯化后的胶原蛋白液pH≈5,即得到高纯度胶原蛋白液。

胶原蛋白液进入到纳滤膜浓缩系统,纳滤膜孔径1nm,浓缩到浓度Brix10°;随后进入到双效降膜真空浓缩器,浓缩到浓度为Brix40°,体积缩小为原体积的30.9%;将高纯度胶原蛋白浓缩液置于冷冻干燥机中,-50℃下冷冻干燥48h,节约能耗约70%。取出后真空封装,产品用钴60-γ射线辐照法进行消毒杀菌。

经检测,本申请实施例6中I型胶原蛋白的提取产率达到82.6%,且计算I型胶原蛋白得率(%)=冻干I型胶原蛋白粗品质量/提取用原料骨质量×100%,其得率为3.69%。通过对酶溶性I型胶原蛋白(PSC)的分析,其具有完整的3股螺旋结构,保持了较好的网状结构,蛋白结构未被破坏。

实施例7

在本申请的另一个实施例中,从牛骨中提取I型胶原蛋白,包括:

使用-18℃的冷冻牛骨,通过破碎机破碎将经过粉碎,粉碎粒度控制在20mm;

在清洗后的碎骨采用NaOH溶液浓度为0.6mol/L,浸泡时间为7h,浸泡过程中搅拌转速为24rpm进行脱脂;

采用HCl溶液浓度为0.015mol/L,浸泡时间为12h,浸泡过程中搅拌转速为24rpm进行脱钙处理;

将前步骤处理后的物料进行蒸煮,蒸煮温度95℃,3h,蒸煮过程中搅拌转速为24rpm;

蛋白酶分两次加入,第一次加入蛋白酶,添加量为0.5‰,酶解温度为55℃,保持在pH7,酶解时间为40min;之后再第二次加入蛋白酶,酶解温度为55℃,保持在pH7,两次加入蛋白酶的添加量合计为5‰,两次酶解时间合计为7h,酶解过程中搅拌转速为24rpm;

将上述酶解后物料首先通过固液分离,针对牛骨采用卧螺离心机进行固液分离方式进行固液分离;液油分离采用碟片离心机对其进行处理,重相(酶解液)与轻相(骨油)通过高速离心进行分离;

往酶解液中缓慢加入0.4mol/L氢氧化钠溶液,并进行缓慢搅拌,调节pH,得胶原蛋白沉淀并去除蛋白酶;

将胶原蛋白溶于含有低浓度过氧乙酸的磷酸氢二钠(0.02mol/L),盐析胶原蛋白,静置2分钟后过滤,蒸馏水清洗胶原蛋白粗产物5次;

将粗提物溶于0.5mol/L醋酸(含过氧乙酸)配制成1g/L胶原蛋白溶液,在一定压力下进行超滤纯化柱层析分离,纯化层析柱截留相对分子质量为100kDa,超滤纯化过程中压力保持在0.8MPa以下。为保证胶原蛋白的稳定性,尽量使用温度保持4℃的冷循环装置。纯化过程中,不断加入纯化水,直至纯化后的胶原蛋白液pH≈5,即得到高纯度胶原蛋白液。

胶原蛋白液进入到纳滤膜浓缩系统,纳滤膜孔径1nm,浓缩到浓度Brix10°;随后进入到双效降膜真空浓缩器,浓缩到浓度为Brix40°,体积缩小为原体积的31.1%;将高纯度胶原蛋白浓缩液置于冷冻干燥机中,-50℃下冷冻干燥48h,节约能耗约69%。取出后真空封装,产品用钴60-γ射线辐照法进行消毒杀菌。

经检测,本申请实施例7中I型胶原蛋白的提取产率达到82.3%,且计算I型胶原蛋白得率(%)=冻干I型胶原蛋白粗品质量/提取用原料骨质量×100%,其得率为3.74%。通过对酶溶性I型胶原蛋白(PSC)的分析,其具有完整的3股螺旋结构,保持了较好的网状结构,蛋白结构未被破坏。

由于本发明实施例中融入了对比试验,现做说明:实例1是仅生产出胶原蛋白并做了结构分析,没有后续消杀产品化过程,其产率仅为78.1%,虽然提取过程含过氧乙酸,可以保证生产过程的无菌操作环境,但是没有后续步骤用钴60-γ射线辐照的协同配合,保证全程提取的消毒无菌,所以,产品合格率受到影响,故而降低了产率;

实施例2、实施例6和实施例7则加入膜分离浓缩法和消杀产品过程,此两个步骤可以提高得率,提取产率分别为81.7%、82.6%、82.3%,同时便于下一步的干燥,有节能的有益效果;

实施例3和实施例4可操作,但是未经过浓缩,结果提取产率分别为78.6%、79.1%,所以浓缩步骤也是非常重要,提高提取产率必不可少的;

实施例5则是省略了非常重要的一个步骤-超滤纯化,故产率降低很多69.7%,说明超滤纯化步骤是本实施例的提高提取率份重要步骤,不可缺少。

综上所述,本发明提供的一种提取I型胶原蛋白的方法提高了I型胶原蛋白的提取产率,且胶原蛋白中杂蛋白的含量较少。本发明提取的I型胶原蛋白具有良好的生物相容性和生物活性,还能够促进上皮细胞的增生和胶原酶的生成,满足临床生物医学工程领域和化妆品行业的需求。本发明的制备工艺简单、可实现大规模生产,是一种经济有效的提取方法。通过I型胶原蛋白形成软骨替代物,能够利用I型胶原蛋白为骨矿化提供基本结构场所、保证了骨骼的韧性,还在骨细胞的发育、分化和活性调节等方面起重要作用,胶原结构和数量的改变可致骨细胞发育、分化和功能的异常,进而改变骨的结构和性能。

胶原蛋白是一个庞大的家族,种类繁多,结构高度复杂,从分子结构、超分子结构,再到组织分布和功能,具有显著的多样性。尽管如此,胶原蛋白的基本组成却是大同小异,在氨基酸序列上都含有(Gly-X-Y)n重复序列,这些重复序列是构成三聚体的结构基础,其中X通常为Pro,Y通常为Hy-Pm或Hy-Lys。Ⅰ型原胶原蛋白,即Ⅰ型胶原蛋白的前体,比Ⅰ型胶原蛋白在结构上多2个末端前肽结构(C-前肽与N-前肽)。Ⅰ型原胶原蛋白具有胶原蛋白家族中所有原胶原蛋白的典型特征:首先含有一段具有(Gly-X-Y)n重复序列的三聚体结构,在N端与C端的2个前肽形成非螺旋的结构域(NC结构域),位于(Gly-X-Y)n重复序列两侧,NC结构域再进一步形成球状结构。折叠好的Ⅰ型原胶原蛋白是异源三聚体的结构,即由2条α1链与1条α2链交互缠绕所形成,胶原三聚体有很高的抗拉强度。Ⅰ型原胶原蛋白分泌到胞外基质中后,经过蛋白酶的剪切除去C-前肽与N-前肽,就形成了成熟的胶原蛋白。成熟的胶原蛋白能自我组装成高度有序的结构,即胶原蛋白纤维。

本发明还提供一种应用如上述型胶原蛋白的方法制备处的I型胶原蛋白,包括:应用所述I型胶原蛋白生成新型软骨替代物,并根据所述软骨替代物生成纤维软骨;其中,所述I型胶原蛋白的胶原分子间通过赖氨酸氧化酶形成赖氨酸-羟赖氨酸共价交联,成为排列规律的致密胶原纤维。通过甲苯胺蓝染色测定软骨细胞分泌的糖胺多糖GAG,I型板中软骨细胞异染现象明显,如图2所示,表明第三代软骨细胞分泌糖胺多糖GAG明显减少,I型胶原能促进软骨细胞分泌糖胺多糖GAG。通过将新型软骨替代物生成纤维软骨,可以为骨矿化提供基本结构场所、保证了骨骼的韧性,还在骨细胞的发育、分化和活性调节等方面起重要作用,并且可以改变可致骨细胞发育、分化和功能的异常,进而改变骨的结构和性能。

尽管本发明的实施方案已公开如上,但其并不仅仅限于说明书和实施方式中所列运用,全可以被适用于各种适合本发明的领域,对于熟悉本领域的人员而言,可容易地实现另外的修改,因此在不背离权利要求及等同范围所限定的一般概念下,本发明并不限于特定的细节和这里示出的实施例。

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