阅读说明：本技术 食道组织和/或类器官组合物及其制备方法 (Esophageal tissue and/or organoid compositions and methods of making same ) 是由 J·M·威尔斯 S·特里斯诺 于 2018-10-05 设计创作，主要内容包括：本公开涉及通过定向分化将哺乳动物定形内胚层(DE)细胞转化为特定组织或器官的方法。特别地,本公开涉及从分化的定形内胚层形成的食道组织和/或类器官的形成。(The present disclosure relates to methods for transforming mammalian Definitive Endoderm (DE) cells to specific tissues or organs by directed differentiation. In particular, the present disclosure relates to the formation of esophageal tissue and/or organoids formed from differentiated shaped endosymbiods.)

食道组织和/或类器官组合物及其制备方法

相关申请的交叉引用

本申请要求2017年10月10日提交的James Wells的美国临时申请62/570,182的优先权和权益，其内容以其整体出于所有目的并入。

关于联邦资助研究的声明

本发明是在美国政府支持NIH资助号P01HD093363下完成。美国政府享有本发明的某些权利。

背景技术

食道活跃地促进食物从口腔和咽通过到胃。它由复层鳞状上皮，肌肉层和感知伸张并控制蠕动的肠神经系统组成。先天性疾病(例如食道闭锁)是由导致管腔变窄或不连续的基因突变引起。其他疾病在以后的生活中影响食道，例如食道癌，嗜酸性食道炎，失弛缓症和其他运动障碍。气管和食道疾病在人类中普遍，且难以在小鼠中准确建模。尽管上述疾病状态普遍，且因为小鼠和人类食道之间存在组织结构的实质性差异，所以本领域需要用于研究的人类食道组织模型。本公开解决了本领域中的前述需要中的一个或多个。

发明内容

本公开涉及通过定向分化将哺乳动物定形内胚层(DE)细胞转化为特定组织或器官的方法。特别地，本公开涉及从分化的定形内胚层形成的食道组织和/或类器官的形成。

附图说明

本领域技术人员将理解，以下描述的附图仅用于说明性目的。附图无意以任何方式限制本教导的范围。

图1A-1K。通过在前肠球体发育过程中调节Wnt和视黄酸信号传导来规定前段前肠命运。(1A)通过操纵Wnt激活的持续时间(chiron-chr)沿前后轴使前肠球体模式化的实验方案。(1B-1C)不同chiron处理持续时间对前肠球体的模式化的qPCR分析，如通过(1B)前肠标志物SOX2和中/后肠标志物CDX2，和(1C)前段前肠(“AFG”)标志物HNF1B，和后段前肠标志物PROX1和HNF6测量的。(D-E)用1天(1D)和3天(1E)的chiron处理的新生球体(第6天)的HNF1B，SOX2和CTNNB1的整装免疫荧光(“IF”)分析。(1F)使用视黄酸(RA)沿前后轴模式化前肠球体的实验方案。(1G)如通过SOX2，TP63(ΔN亚型)，GATA4和PDX1测量的，改变RA处理的持续时间对3日龄前肠球体的影响。(1J-1K)对未经处理的球体(1I)和用RA处理1天(1J)或4天(1K)的球体中的早期食道标志物SOX2和p63的IF分析。1l-1、1J-1和1K-1显示单独的p63染色。(1H)每个球体中SOX2+和p63+上皮细胞的百分比的定量。比例尺＝25μm。详细信息参见定量和统计分析部分。还参见图8和图9A-R。

图2A-2I。前段前肠球体具有食道呼吸能力。(2A)示意图，描绘了沿着背腹轴将AFG球体模式化的实验方案。(2B)指导小鼠和青蛙胚胎的AFG的背腹模式的提示的当前简化模型。(2C-2G)使用背侧标志物SOX2和MNX1(2C+2E)，呼吸标志物NKX2-1(2D)，TP63的ΔN剪接变体(2F)，和复层鳞状上皮标志物KRT4(2G)，用Noggin处理3天的、未经处理的(-ctrl)，或chiron和BMP4(10ng/mL)的3日龄球体(第9天)的qPCR分析。(2H-2I)在Noggin(2H)相比于chiron+BMP4(2I)处理的球体中的SOX2，NKX2-1，CDH1和核(DAPI)的IF染色。比例尺＝25μm。详细信息参见定量和统计分析部分。还参见图10A-10J。

图3A-3Y。背侧前段前肠球体形成类器官，其包含表达食道标志物的复层鳞状上皮。(3A)示意图，描述了DE向人食道类器官(HEO)分化。(3B-3F)明场图像，描绘了新生球体向HEO的生长。(G-R)通过转录因子Sox2和p63(3G-3I)，上皮标志物Krt8相比于Krt14(3J-3O)，和上基底(suprabasal)标志物Krt13(3P-3R)的IF分析，E17.5食道(G，J，M，K)与1月龄和2月龄的HEO(3H-3I，3K-3L，3N-3O，3Q-3R)的比较。(3S-3V)通过复层鳞状上皮标志物p63，KRT5，KRT13，IVL，CRNN，1月龄和2月龄的食道类器官的身份和成熟与人胃和肠类器官(HGO和HIO)和小儿食道活检相比的qPCR分析。(3W)2月龄的HEO与胃肠道的各种活检相比的无监督层次聚类(unsupervised hierarchical clustering)。(3X)1月龄的HIO，HGO和HEO的主成分分析。(3Y)在重复中取平均值的选定基因(食道，胃，肠)的log2转换标准化TPM值的热图。SSE＝复层鳞状上皮；b＝基底；sb＝上基底；比例尺＝500μm(3B-3F)，50μm(3G-3L)，100μm(3O-3R)，和25μm(3O-1-3R-1)。详细信息参见定量和统计分析部分。还参见图11A-11CC。

图4A-4BB。HEO含有祖细胞，其产生分化的复层鳞状上皮。(4A-4B)H&E染色，比较了7周龄HEO与使用从角质形成细胞衍生的HEO生成的器官型筏(raft)。(4C-4N)通过转录因子SOX2和p63(4C-4D)，基底标志物KRT14(4E-4F)，上基底角蛋白KRT4(4G-4H)和KRT13(4I-4J)和分化标志物IVL，CRNN，和FLG(4K-4N)的IF分析，比较7周龄HEO与器官型筏。(4O-4U)食道活检，7周龄HEO，角质形成细胞衍生的HEO，和器官型筏对于SOX2和TP63(4O)，KRT5(4P)，KRT14(4Q)，KRT4和KRT13(4R)，IVL(4S)，CRNN(4T)和食道特异性标志物TMPRSS11A/D(4U)的qPCR分析。(4V)HEO中EdU脉冲追踪标记实验的方案。(4W-4Z)在标记后的各种各样时间点的HEO的IF图像。(4AA-4BB)使用P63强度相比于EdU强度的2D直方图(4AA)和总EdU标记细胞的百分比相比于离上皮基底的距离的1D直方图(4BB)，对IF图像的分析。b＝基部；sb＝上基底。比例尺＝50μm(C-N)，100μm(4A-4B，4S-4V)。详细信息参见定量和统计分析部分。还参见图12A-12R。

图5A-5L。Sox2的早期内胚层缺失导致小鼠食道发育不全。(5A-5d)来自以6.5dpc的他莫昔芬强饲的怀孕母畜的对照胚胎(Sox2^fl/fl)和Sox2条件性内胚层敲除胚胎(Sox2-DE-LOF，FoxA2^CreER；Sox2^fl/fl)中的Sox2和Nkx2-1的IF分析。在E9.5(5A-5B)的胚胎切片和在E11.5(5C-5D)的整装IF，其中遮盖图像，突出内胚层。(5E-5F)对于Nkx2-1(5E)和p63(5F)，具有在整装图像(5C-5D)中指示的相对截面的截面的IF图像。插图仅显示Sox2通道(左)和绿色/右(Nkx2-1或p63)通道。(5G-51H)通过来自以8.5dpc强饲的怀孕母畜的E10.5 Sox2cKO(Sox2^CreER/fl)胚胎中的切割Caspase 3染色，对细胞死亡的分析。方框区域被放大并示于(5G-1-5H-1)，内胚层以白色描画轮廓和仅显示切割的Caspase 3。(5I-5L)来自以9.5dpc强饲的怀孕母畜的E11.5小鼠对照和Sox2 cKO胚胎(Sox2^CreER/fl)的IF分析。(5I和5J)来自侧面和正面投影的前肠的Nkx2-1和Foxa2的整装IF。(5K和5L)E11.5前肠的切片，对应于它们在整装IF投影中的相对位置(5I-5J)，对Nkx2-1(5K)和p63(5J)染色，黄色箭头指向突变食道。比例尺在所有IF切片中为50μm，在所有IF整装投影中为100μm。详细信息参见定量和统计分析部分。fg＝前肠，dfg＝背侧前肠，vfg＝腹侧前肠，eso＝食道，tr＝气管，br＝支气管，st＝胃。还参见图13A-13F。

图6A-6T。Sox2抑制呼吸命运并促进背侧(食道)谱系。(6A-6F)在用Bio(GSK3β抑制剂)和Bio+BMP4处理的阶段NF35分析的对照(6A，6C，6E)或注射Sox2 MO(6B，6D，6F)的非洲爪蟾内胚层外植体的nkx2-1的原位杂交。(6G)示意图，描述了产生人背侧(Noggin)和腹侧(BMP)AFG培养物的实验方案。+SOX2指示tet诱导型SOX2，而-SOX2指示SOX2 CRISPRi。(6H-6N)在第3-9天使用Dox诱导型CRISPRi，对沿背-腹轴模式化的第9天AFG培养物的分析，在背侧培养物中有或没有SOX2敲低；(6H-6K)培养物针对SOX2和NKX2-1的IF染色和(6L)中的定量。(6M-6N)响应于这些模式化条件，针对SOX2和NKX2-1的qPCR分析。(6O-6T)在第8天腹部培养物中强力霉素诱导的外源SOX2表达和在第9天的分析。(6O-6R)培养物针对NKX2-1和HA-SOX2的IF染色；和(6S-6T)响应于模式化条件，针对SOX2和NKX2-1的qPCR分析。比例尺对于IF图像为50μm，对于非洲爪蟾外植体图像为200μm。详细信息参见定量和统计分析部分。

图7A-7L。Sox2调节背侧前肠内胚层中的分泌型Wnt拮抗剂的表达和Wnt信号传导活性。(7A)来自第9天背侧(+Noggin)或腹侧(+BMP4)AFG培养物的RNA测序的差异表达基因的聚类热图，有(+dox)和没有SOX2 CRISPR干扰(CRISPRi)。(7B)背侧和腹侧培养物中上调的基因相比于在通过CRISPRi敲低SOX2后升高或降低的基因的维恩图分析。(7C)对通过SOX2正向调控的基因的生物学过程的基因本体论(GO)术语分析。(7D)背侧和腹侧培养物中富集的基因的数量，以及它们的表达是否为SOX2依赖性。(7E)基因本体论术语“Wnt信号传导通路的调控”的基因集富集分析，红色表示较高的表达，而蓝色表示较低的表达。(7F-7G)Wnt响应性基因Axin2对(7F)对照(Sox2^fl/fl)和(7G)Sox2-DE-LOF(FoxA2^CreER；Sox2^fl/fl)胚胎中的E9.5小鼠前段前肠的原位杂交。(7H-7I)从以8.5dpc强饲的母畜获取的(7H)对照(Sox2^fl/+)和(7I)Sox2 cKO(Sox2^CreER/fl)胚胎的E10.5小鼠胚胎前肠中的Axin2的原位杂交。左上方显示了所分析的胚胎数量。方框区域(7F-7I)突出了背侧前肠区域。(7J)第9天的背侧和腹侧前肠培养物中的AXIN2的qPCR分析，有或没有外源表达的SOX2。(7K)来自AFG培养物的RNA-seq的Wnt拮抗剂SFRP1，SFRP2和DKK1的绘制的TPM值。(7L)关于Sox2在前段前肠的背腹模式化中的角色的提议的模型。比例尺＝100μm。详细信息参见材料和方法以及定量和统计分析部分。还参见图14A-14D。

图8A-8V。调节Wnt和视黄酸信号传导的持续时间，以协调在前后轴上的前肠模式化。(8A)示意图，描绘使用CHIR99021(chiron，或chr)和视黄酸(RA)沿前后轴使前肠球体模式化的实验方案。(8B-8G)通过改变chiron处理的持续时间造成的第6天的球体的qPCR分析，有或没有视黄酸处理，该分析是针对(B)前段和后段前肠标志物HNF1B，(8C-8D)后段前肠标志物PROX1和HNF6，(8E)后肠标志物CDX2，和(8F-8G)咽标志物PAX9和OTX2。(8H-8N)分别通过(8H)前肠标志物SOX2，(8I)HNF1B，PROX1，HNF6，和CDX2，(8j)Wnt靶基因AXIN2，LEF1和TCF1，以及(8K)上皮和神经标志物CDH1和NESTIN的qPCR分析，chiron相比于Wnt3a对内胚层的处理的比较。用一天的chiron处理产生的球体具有与用2天的Wnt3a产生的球体相同的基因表达谱。(8L-8N)从chiron相比于Wnt3a处理产生的新生球体的明场成像显示，在不同条件下，产生球体的效率不受影响。(8O-8R)对改变从第5天开始的视黄酸处理的持续时间产生的第9天球体的分析。(8O)视黄酸靶标HOXA1，HOXB1，CYP26C1的qPCR分析。(8S)示意图，描绘了使用合成抑制剂DEAB调节视黄酸信号传导的实验方案。(8T-8U)(8T)第6天的前肠标志物，(8U)第9天的背侧前段前肠标志物SOX2和TP63(ΔN亚型)，和(8V)第9天的RA靶标HOXA1和HOXB1的qPCR分析。比例尺在(8L-8N)中为500μm，在(8P-8R)中为50μm。误差线表示SD。对于两尾t检验，*p<0.05，**p<0.01和***p<0.001。

图9A-9R。Wnt和视黄酸信号传导的早期调节影响后来分化为人食道类器官。(9A)示意图，描绘生成以用chiron处理1或3天的前肠球体开始的类器官的实验方案。(9B-9C)第35天(1月龄)的类器官的qPCR分析，针对(9B)复层鳞状上皮标志物KRT5，KRT13和KRT13，和(9C)后段前肠标志物GATA4和PDX1。(9D-9O)通过改变从第5天开始的视黄酸处理的持续时间导致的第35天(1月龄)类器官的分析。(9D)前段前肠基底转录因子SOX2和TP63的ΔN亚型，(9E)胃窦和胰腺标志物PDX1，和(9F)复层鳞状上皮标志物KRT5，KRT13和IVL的qPCR分析。一月龄类器官的(9G-9I)SOX2和p63，(9J-9L)KRT13，和(9M-9O)PDX1的免疫荧光分析。(9P)示意图，描述了使用合成抑制剂DEAB调节视黄酸信号传导的实验方案。(9Q-9R)第35天的类器官的(9Q)食道基底标志物SOX2和TP63，(9R)复层鳞状上皮标志物KRT5，KRT13和IVL的qPCR分析。这些数据代表每个实验中n＝3孔的2个独立实验。比例尺＝100μm。误差线表示SD。对于两尾t检验，*p<0.05和**p<0.01。

图10A-10J。使前肠在这些培养条件下模式化成前段前肠球体不需要TGFβ抑制。(10A)示意图，描绘测试前肠的前-后模式化中对TGFβ信号传导的需要的实验方案。(10B-10F)用和未用Wnt3a和TGFβ抑制剂(SB431542，10μM)处理的第6天的前段前肠球体针对(10B-10C)前肠标志物SOX2和后肠标志物CDX2，(10D)前肠标志物HNF1B，和(10E-10F)后段前肠标志物PROX1和HNF6的qPCR分析。(10G)示意图，描绘测试用和未用Wnt3a或TGFβ抑制剂SB431542处理的前段前肠球体响应呼吸诱导的能力的实验方案。(H-J)通过(10H-10I)免疫荧光和(10J)qPCR分析第9天的球体的NKX2-1。比例尺＝50μm。误差线表示SD。对于两尾t检验，*p<0.05和**p<0.01。

图11A-11CC。人食道类器官的稳健生长和与小鼠胚胎食道发育的比较。(11A-11E)第6-13天用FGF10处理的类器官的改善的球体长出效率，如通过(A-D)明场成像和(11E)图像的定量分析的。(11F-11Q)通过在E12.5(11F，11J，11N)和E14.5(11G，11K，11O)时的小鼠胚胎食道和在第2周(11H，11L，11P)和第3周(11I，11M，11Q)时的人食道类器官(HEO)的免疫荧光染色进行的比较分析。(R11)小鼠食道中的复层鳞状上皮标志物随时间的基因表达；从GEO数据集GSE34728(Chen等，2012)获得的公共数据。(11S)在定形内胚层分化成人食道类器官的过程中的各个时间点对复层鳞状上皮标志物的qPCR分析。(11T)第62天的HEO对KRT5和KRT13阳性的上皮的面积％的定量。每个点是个体类器官，并且子图“a”和“b”是此图中描绘的不同类器官的代表图像。(11U)第62天的HEO对SOX2和p63阳性的上皮核％的定量。每个点是个体类器官。(11V-11CC)对所测试的不同细胞系中的1月龄HEO的免疫荧光分析，检查食道富集标志物SOX2和p63(11V-11Y)和KRT13(11Z-11CC)。比例尺在(11A-11D)中为500μm，在(11F-11Q，11V-11CC)中为50μm，在(11T-11U)中为100μm。误差线表示SD。对于两尾t检验，*p<0.05，**p<0.01和***p<0.001。

图12A-12R。人食道类器官成熟和扩展的替代方法。(12A-12F)通过(12A-12E)早期(KRT8)和分化(KRT13，KRT14和IVL)食道特异性标志物的免疫荧光图像和(12F)H&E，对移植到免疫缺陷小鼠肾脏囊2个月后生长的HEO的分析。(12G-12R)对机械传代(解离和再培养)两次的HEO的分析。(12G-12N)经传代的类器官的(12G-12H)转录因子SOX2和p63，(12I-12J)未成熟(KRT8)和基底标志物(KRT14)，(12K-12L)基底(KRT5)和上基底(KRT13)标志物，以及(12M-12N)上基底分化标志物KRT4，CRNN和IVL的IF图像。(12O-12R)比较传代HEO与正常HEO和胃类器官(hAGO)的(12O)转录标志物SOX2和TP63，(12P)复层鳞状标志物KRT5，KRT13，IVL和(12Q-12R)肺(NKX2-1)，胃(GATA4)和肠(GATA4和CDX2)的模式化标志物的qPCR分析。对于两尾t检验，*p<0.05，**p<0.01和***p<0.001。

图13A-13V。原肠胚形成后内胚层或广泛Sox2敲除导致了食道发育不全的类似表型。(13A-13B)在E9.5对照(Sox2^fl/fl)和Sox2-DE-LOF(FoxA2^CreER；Sox2^fl/fl)胚胎中的背侧标志物Sox2(红色)，呼吸标志物Nkx2-1(绿色)的整装免疫荧光(IF)分析。(13C-13D)在E10.5对照(Sox2^fl/fl)和Sox2-DE-LOF(FoxA2^CreER；Sox2^fl/fl)胚胎中的Sox2，Nkx2-1的整装IF分析。白色箭头突出了正常相比于异位Nkx2-1表达。(13E-13F)E11.5胚胎的前肠切片针对顶端标志物aPKC(绿色)的IF分析。(G-H)取自以8.5dpc强饲的母畜的E11.5对照(Sox2^fl/+)和Sox2-cKO(Sox2^CreER/fl)胚胎的Nkx2-1的整装IF分析。(13I-13L)E11.5胚胎(类似于13E-13F中)针对(13I-13J)Sox2和Nkx2-1和(13K-13L)Sox2和p63的免疫荧光分析。(13M-13T)取自以8.5dpc强饲的母畜的E10.5对照(Sox2^fl/+)和Sox2-cKO(Sox2^CreER/fl)胚胎的IF分析，针对穿过前轴(13M，13N)到后轴(13S，13T)的上皮形态。(13S，13T)在分离取自以8.5dpc强饲的母畜的对照(Cre-，Sox2^fl/+)和Sox2 cKO(Cre+，Sox2^CreER/fl)胚胎中的背侧和腹侧前肠时，E10.5小鼠胚胎前肠中对细胞死亡的(13U)切割Caspase 3和(13V)Ki67 IF染色的定量。比例尺在(13A-13D，13G-13H)中为100μm，在(13I-13T)中为50μm，和在(13E-13F)中为25μm。对于Sox2-DE-LOF胚胎，在E9.5时每种基因型为n＝3个胚胎，在E11.5时每种基因型的每次分析为n＝2个胚胎(每次分析和时间点收获最少2窝)。。对于Sox2驱动的Sox2 cKO胚胎，每种基因型为n＝3个胚胎。误差线表示SD。*对于两尾t检验，*p≤0.05。fg＝前肠，dfg＝背侧前肠，vfg＝腹侧前肠，ph＝咽内胚层，eso＝食道，r＝呼吸祖细胞，thy＝甲状腺，tr＝气管，br＝支气管，st＝胃。

图14A-14D。人培养物中对Sox2的功能丧失或获得的分析。(14A)由沿背-腹轴模式化的第9天前段前肠培养物(有和没有SOX2)产生的转录组的主成分分析(没有或有激活CRISPR干扰构建体的Dox处理)。背侧相比于腹侧前段前肠(dAFG相比于vAFG)分别表示为chr+Nog和chr+BMP4。敲低由+Dox表示。(14B)SOX2和NKX2-1的TPM值。(14C)沿背(dAFG)和腹(vAFG)轴模式化的第9天前段前肠培养物的SFRP2的qPCR分析，包括在第8天通过Dox处理在腹侧培养物中诱导外源HA标记SOX2。(14D)在来自GEO数据集GSE61475(Tsankov等，2015)的hPSC衍生内胚层(GSM1505764)和中内胚层(GSM1505767)中的SFRP2基因座处的Sox2峰的基因组浏览器视图。比例尺＝500μm。误差线表示SD。对于两尾t检验，*p≤0.05。

图15A-15E。在前段前肠分离后，Sox2在食道发育中的作用。(15A)小鼠繁殖和他莫昔芬施用方案的示意图。(15B)E14.5(左)，E17.5(中)，和P7(右)食道切片的共聚焦免疫荧光(IF)图像，怀孕母畜以11.5dpc(左)，14.5dpc(中)强饲，幼仔以P1(右)强饲。针对E-钙粘蛋白对切片染色以使上皮显现，Sox2和Nkx2-1针对呼吸特性。(15C)来自以11.5dpc强饲的怀孕母畜的E17.5食道的各种标志物的IF图像：确认食道身份的p63和Sox2，基底标志物Krt14，上基底标志物Krt13，未成熟或柱状标志物Krt8，增殖标志物Ki67。底部中间右图中的绿色箭头突出了上基底Ki67染色。(15D)来自以11.5dpc强饲的怀孕母畜的E17.5食道的E-钙粘蛋白的高倍率IF图像。(15E)来自以11.5dpc强饲的怀孕母畜的E17.5食道的模式化标志物的IF图像：肠标志物Cdx2，胃/肠标志物Gata4和Pdx1，呼吸标志物Nkx2-1，和平滑肌标志物结蛋白(Desmin)。黄色箭头突出显示了突变食道中的稀有Nkx2-1阳性细胞。比例尺在(15B，15C，15E)中为100μm，在(15D)中为25μm。

图16A-16G。在HEO中对范科尼贫血(FANCA丧失)的效果建模。(16A)示意图，描述了生成带有(+dox)或不带有FANCA的HEO的实验方案。**注：羟基脲(HU)用于(16E)中的蛋白质印迹分析。(16B)第6天的AFG单层对前肠标志物SOX2(绿色)和后肠标志物CDX2(红色)染色的IF图像。(16C)在类器官生长的第0周(第6天)，第2周(第20天)和第4周(第35天)，有或没有强力霉素处理的HEO的明场图像。(16D)HEO的SOX2和增殖标志物KI67的IF图像。(16E)确认dox诱导的FANCA蛋白的表达和功能的FANCA和FANCD2的蛋白质印迹分析。(16F)来自明场图像的2周龄HEO的尺寸定量。(16G)在1月龄(第36天)的HEO中的增殖性(KI67+)上皮细胞的定量。比例尺在(16B，16D)中为100μm，在(16C)中为250μm。对于Mann-Whitney非参数检验，*p≤0.05和**p≤0.01。DE＝定形内胚层；AFG＝前段前肠；HEO＝人食道类器官。

图17A-17L。在人前肠和HEO培养物中CDX2的诱导。(17A)示意图，描述了在前肠和HEO培养物中诱导CDX2的实验方案。(17B)在施用强力霉素后诱导CDX2的转导慢病毒载体的示意图。(17C)用不同水平的强力霉素(20、100和500ng/mL)处理的第6天前段前肠单层的前肠标志物SOX2和后肠标志物CDX2的IF分析。(17D+17E)通过(17D)SOX2相比于CDX2强度的散点图进行的IF图像(如在17C中)的定量。散点图中的垂直线是定义CDX2+相比于CDX2-细胞的“门”。(17E)百分比CDX2+细胞的柱状图。(17F)用或未用强力霉素处理的1月龄HEO的复层鳞状标志物SOX2和p63以及后肠(诱导的)标志物CDX2的IF分析。(17G-17L)后肠标志物(17G)CDX1，(17H)CDX2，(17I)CDH17，(17J)MUC2和前肠/复层鳞状标志物(17K)SOX2和(17L)p63的qPCR分析。比例尺＝100μm。对于带有不假设相等方差的两尾分布的Student t检验，**p≤0.01，***p≤0.001和****p≤0.0001。DE＝定形内胚层；FG＝前肠；AFG＝前段前肠；HEO＝人食道类器官。

图18A-18I。18A)在HEO中CDX2的后期诱导导致食道转录因子SOX2和p63的抑制。18A.示意图，描述了在更成熟的HEO(6-7周龄)中诱导CDX2的实验方案。18B.用(+CDX2)或未用强力霉素处理的第58天的HEO的复层鳞状标志物SOX2和p63和后肠标志物CDX2的IF图像。(18C-18E)第58天的HEO的(18C)CDX2，(18D)SOX2和(18E)p63的qPCR分析。(18F)通过HEO基底上皮细胞的CDX2相比于p63强度的散点图，对IF图像(例如18B)的分析。垂直线将p63阴性(左)和p63阳性(右)细胞分开。水平线将CDX2-阴性(底部)，CDX2-低(中间)和CDX2-高(顶部)细胞分开。(18G-18I)(18G)所有CDX2-高和CDX2-低基底细胞，(18H)为SOX2+的CDX2-高和CDX2-低基底细胞，(18I)为p63+的CDX2-高和CDX2-低基底细胞的IF分析(参见18B和18F)的定量。比例尺＝100μm。对于带有不假设相等方差的两尾分布的Student t检验，***p≤0.0001。DE＝定形内胚层；AFG＝前段前肠；dAFG＝背侧前段前肠；HEO＝人食道类器官。

图19A-19H。CDX2诱导的HEO中的食道分化的丧失。(19A)在HEO中诱导带有或不带有Notch抑制的CDX2的实验方案的示意图。(19B-19G)d58 HEO的复层鳞状标志物(19B)KRT5，(19C)KRT13和(19D)IVL，(19E)肠上皮标志物CDH17，(19F)Notch靶标HES5和(19G)BMP靶标ID1的qPCR分析。(19H)用强力霉素和γ-分泌酶(Notch)抑制剂DAPT处理的HEO的CDH17，KRT5和KRT13(上排)；和分化的复层鳞状标志物CRNN和IVL(下排)的IF图像。比例尺＝100μm。对于带有不假设相等方差的两尾分布的Student t检验，*p≤0.05，**p≤0.01和***p≤0.001。DE＝定形内胚层；AFG＝前段前肠；dAFG＝背侧前段前肠；HEO＝人食道类器官。

图20A-20H。经IL-13处理的HEO上调IL-13靶基因并增加增殖。(20A)示意图，描绘在晚期HEO中处理IL-13的实验方案。(20B-20E)在收获之前用IL-13处理2天的62天HEO的已知IL-13靶基因(20B)CCL26，(20C)CDS26，(20D)CAPN14和(20E)SERPINB4的qPCR分析。(20F)在收获之前用IL-13(100ng/mL)处理1周的第50天HEO的SERPINB13，CDH26，和管家蛋白GAPDS的蛋白质印迹分析。(20G)在收获前用IL-13(100ng/mL)处理2周和用EdU(10μM)处理2天的第62天HEO的IF图像。(20H)所有最基底(basal-most)p63细胞的标记的EdU百分比的(20G的)定量。对于qPCR数据，对于带有不假设相等方差的两尾分布的Student t检验，*p≤0.05和**p≤0.01。对于类器官EdU引入定量，对于Mann-Whitney非参数检验，*p<0.05。比例尺＝100μm。DE＝定形内胚层；AFG＝前段前肠；HEO＝人食道类器官。

图21A-L。用IL-13处理的HEO的受损的分化和改变的形态。(21A)在收获前用IL-13(100ng/mL)处理2周的62天HEO的IF分析。(21B)在收获之前用IL-13(100ng/mL)处理1周的第56天HEO的结构和分化蛋白质的蛋白质印迹分析。(21C-21F)在收获前用IL-13(100ng/mL)处理2周的第62天HEO的(21C)IVL，(21D)CRNN，和BMP拮抗剂(21E)NOG和(21F)FST的qPCR分析。(21G)在固定前用IL-13(100ng/mL)处理2周的第62天HEO通过H&E染色(左列)和电子显微照片(右列)进行的结构分析。(21H-21L)用IL-13(100ng/mL)和BMP4(100ng/mL)处理的第62天HEO的(21H)SOX2，(21I)CCL26，(21J)CDH26，(21K)刺猬靶标PTCH1和(21L)BMP靶标ID3的qPCR分析。对于IF和H&E图像，比例尺＝100μm，对于电子显微照片，比例尺＝6μm。对于具有不假设相等方差的两尾分布的Student t检验，*p≤0.05，**p≤0.01，***p≤0.001和****p≤0.0001。

图22A-22H。人肠类器官(HIOs)中的SOX2诱导上调复层鳞状标志物。(22A)示意图，描述了在HIO中诱导SOX2的实验方案。(22B)在施用强力霉素后诱导HA标记的SOX2的转录慢病毒载体的示意图。(22C)用或未用强力霉素处理的第36天HIO的(顶部)前肠标志物SOX2和后肠标志物CDX2，(中间)前段前肠标志物p63，胃/肠标志物PDX1，和HA标签；(底部)肠标志物CDH17和胃标志物CLDN18的IF图像。(22D-22H)各种区域标志物(22D)SOX2，(22E)p63，(22F)PDX1和(22G)CDX2和(22H)上基底复层鳞状标志物KRT13的qPCR分析。比例尺＝100μm。对于带有不假设相等方差的两尾分布的Student t检验，*p≤0.05，**p≤0.01和****p≤0.0001。DE＝定形内胚层；HG＝后肠；HIO＝人肠类器官。

图23A-23J。HEO中的BMP激活导致增殖和分化的丧失。(23A)示意图，描绘了在晚期HEO中激活BMP信号传导的实验方案。(23B)用或未用BMP4(100ng/mL)处理的第62天HEO的(左)pSMAD1/5/9和SOX2，(中)p63和EdU，(右)IVL和CRNN的IF图像。(23C)有或没有BMP4的HEO中所有最基底上皮细胞的标记的EdU百分比的定量。(23D-23J)第62天HEO的各种标志物的qPCR分析：(D)SOX2，(23E)p63，(23F)ID3，(23G)KRT5，(23H)KRT13，(23I)IVL和(23J)CRNN。比例尺＝100μm。对于qPCR数据，对于带有不假设相等方差的两尾分布的Student t检验，*p≤0.05，****p≤0.0001。对于类器官EdU引入定量(23C)，对于Mann-Whitney非参数检验，**p≤0.01。DE＝定形内胚层；AFG＝前段前肠；dAFG＝背侧前段前肠；HEO＝人食道类器官。

具体实施方式

定义

除非另有说明，否则相关领域的普通技术人员应根据常规用法来理解术语。如有冲突，以包括定义的本文件为准。优选的方法和材料描述如下，虽然类似或等同于本文描述的那些的方法和材料可以在本发明的实践或测试中使用。本文提及的所有公布文件，专利申请，专利和其他参考文献通过引用整体并入本文。本文公开的材料，方法和实施例仅是说明性的，而无意于进行限制。

如本文和所附权利要求书中所使用的，单数形式“一个/种(a)”，“和”和“该/所述(the)”包括复数对象，除非上下文另外明确指出。因此，例如，提及“一种方法”包括多种这样的方法，提及“一种剂量”包括提及本领域技术人员已知的一种或多种剂量及其等同物，等等。

术语“约”或“大约”是指在特定值的可接受误差范围内，如本领域普通技术人员所确定的，该误差将部分取决于如何测量或确定该值，例如，测量系统的局限性。例如，根据本领域的实践，“约”可以表示在1个或大于1个标准偏差之内。或者，“约”可以表示给定值的至多20％，或至多10％，或至多5％，或至多1％的范围。或者，特别是关于生物系统或过程，该术语可以意指在数值的一个数量级内，优选在5倍以内，更优选在2倍以内。在本申请和权利要求书中描述了特定值的情况下，除非另有说明，否则应假设术语“约”表示该特定值在可接受的误差范围内。

术语“个体”，“宿主”，“受试者”和“患者”可互换使用，是指作为治疗，观察和/或实验的对象的动物。通常，该术语是指人类患者，但是方法和组合物可同样适用于非人类受试者，例如其他哺乳动物。在一些实施方式中，该术语是指人类。在其他实施方式中，该术语可以指代儿童。

如本文所用，术语“定形内胚层(DE)细胞”是指通过原肠胚形成过程产生的三个主要胚层之一。

如本文所用，术语“wnt信号传导通路”是指wnt/β-连环蛋白(catenin)通路，并且是由通过β-连环蛋白起作用的Wnt配体和卷曲细胞表面受体介导的信号传导通路。

如本文所用，关于诸如“wnt通路”之类的通路的术语“激活剂”是指激活Wnt/β-连环蛋白通路使得增加Wnt/β-连环蛋白靶标的物质。

如本文所用，术语“FGF信号传导通路激活剂”是指激活FGF通路使得FGF靶标增加的物质。

如本文所用，术语“BMP信号传导通路抑制剂”是干扰BMP通路并使BMP靶标减少的物质。

如本文所用，术语“生长因子”是指能够刺激细胞过程的物质，所述细胞过程包括但不限于生长，增殖，形态发生或分化。

如本文所用，标志物的术语“稳定表达”是指在生长环境改变后不改变的表达。

如本文所用，术语“全能(totipotent)干细胞”(也称为全能(omnipotent)干细胞)是可以分化成胚胎和胚外细胞类型的干细胞。这样的细胞可以构建完整的、有活力的生物。这些细胞是从卵子和精子细胞的融合产生。通过受精卵的前几次分裂产生的细胞也是全能的。

如本文所用，术语“多能干细胞(PSC)”，通常也称为PS细胞，包括可以分化成几乎所有细胞的任何细胞，即，衍生自三个胚层(生殖上皮)中的任一种的细胞，包括内胚层(胃内粘膜，胃肠道，肺)，中胚层(肌肉，骨骼，血液，泌尿生殖器)和外胚层(表皮组织和神经系统)。PSC可以是全能细胞的后代，衍生自胚胎(包括胚胎生殖细胞)，或通过迫使表达某些基因诱导非多能细胞(例如成体细胞)获得。

如本文所用，术语“诱导多能干细胞(iPSC)”，通常也缩写为iPS细胞，是指通过诱导某些基因的“受迫”表达，人工衍生自正常非多能细胞例如成体细胞的一种类型的多能干细胞。

如本文所用，术语“前体细胞”涵盖可用于本文所述方法中的任何细胞，一种或多种前体细胞通过这些细胞获得自我更新或分化为一种或多种专门细胞类型的能力。在一些实施方式中，前体细胞是多能的或具有变为多能的能力。在一些实施方式中，对前体细胞进行外部因素(例如，生长因子)的处理以获得多能性。在一些实施方式中，前体细胞可以是全能干细胞；多能(pluripotent)干细胞(诱导或非诱导)；多能(multipotent)干细胞；和单能干细胞。在一些实施方式中，前体细胞可以来自胚胎，婴儿，儿童或成人。在一些实施方式中，前体细胞可以是进行处理使得通过基因操纵或蛋白质/肽处理赋予多能性的体细胞。

在发育生物学中，细胞分化是较不专门的细胞通过其变为更专门的细胞类型的过程。如本文所用，术语“定向分化”描述了较不专门的细胞通过其变成特定的专门靶细胞类型的过程。可以通过可用于定义或改变初始细胞命运的任何适用方法确定专门靶细胞类型的特殊性。示例性方法包括但不限于基因操纵，化学处理，蛋白质处理和核酸处理。

如本文所用，术语“细胞成分”是个体基因，蛋白质，mRNA表达基因，和/或任何其他可变细胞组分或蛋白质活性，例如蛋白质修饰(例如，磷酸化)的程度，例如，其通常由本领域技术人员在生物学实验中(例如，通过微阵列或免疫组织化学)测量。与生命系统，常见人类疾病，和基因发现和结构确定下面的生物化学过程的复杂网络相关的重大发现现在可以归因于作为研究过程的一部分的细胞成分丰度数据的应用。细胞成分丰度数据可帮助识别生物标志物，区分疾病亚型，和识别毒性机制。

衍生自胚胎细胞的多能干细胞

在一些实施方式中，重要的步骤是获得多能的或可被诱导成为多能的干细胞。在一些实施方式中，多能干细胞衍生自胚胎干细胞，其又衍生自早期哺乳动物胚胎的全能细胞，并且能够体外无限地、未分化地增殖。胚胎干细胞是衍生自胚细胞的内部细胞团(早期胚胎)的多能干细胞。从胚细胞衍生胚胎干细胞的方法是本领域众所周知的。人胚胎干细胞H9(H9-hESC)用于本申请中描述的示例性实施方式中，但是本领域技术人员将理解，本文描述的方法和系统可应用于任何干细胞。

可以在根据本发明的实施方式中使用的另外的干细胞包括但不限于由国家干细胞银行(NSCB)，加利福尼亚大学旧金山分校(UCSF)的人类胚胎干细胞研究中心；Wi Cell研究所的WISC细胞库；威斯康星大学干细胞与再生医学中心(UW-SCRMC)；Novocell,Inc.(加利福尼亚州圣地亚哥)；Cellartis AB(瑞典哥德堡)；ES Cell International Pte Ltd(新加坡)；以色列理工学院的Technion(以色列海法)托管的数据库；以及普林斯顿大学和宾夕法尼亚大学托管的干细胞数据库中提供或描述的那些。可以在根据本发明的实施方式中使用的示例性胚胎干细胞包括但不限于SA01(SA001)；SA02(SA002)；ES01(HES-1)；ES02(HES-2)；ES03(HES-3)；ES04(HES-4)；ES05(HES-5)；ES06(HES-6)；BG01(BGN-01)；BG02(BGN-02)；BG03(BGN-03)；TE03(13)；TE04(14)；TE06(16)；UC01(HSF1)；UC06(HSF6)；WA01(H1)；WA07(H7)；WA09(H9)；WA13(H13)；WA14(H14)。

关于胚胎干细胞的更多细节可见于，例如，Thomson等,1998,“Embryonic StemCell Lines Derived from Human Blastocysts,”Science282(5391):1145-1147；Andrews等,2005,“Embryonic stem(ES)cells and embryonal carcinoma(EC)cells:oppositesides of the same coin,”Biochem Soc Trans 33:1526-1530；Martin 1980,“Teratocarcinomas and mammalian embryogenesis,”.Science 209(4458):768-776；Evans and Kaufman,1981,“Establishment in culture of pluripotent cells frommouse embryos,”Nature 292(5819):154-156；Klimanskaya等,2005,“Human embryonicstem cells derived without feeder cells,”Lancet 365(9471):1636-1641；其各自全文并入本文。

诱导多能干细胞(iPSC)

在一些实施方式中，通过将某些干细胞相关基因转染到非多能细胞(例如成年成纤维细胞中)来衍生iPSC。转染通常通过病毒载体(例如逆转录病毒)来实现。被转染的基因包括主要转录调节因子Oct-3/4(Pouf51)和Sox2，尽管提出其他基因增强诱导效率。3-4周后，少量转染细胞在形态和生化上开始变得与多能干细胞相似，并且通常通过形态选择，倍增时间，或通过报告基因和抗生素选择来分离。如本文所用，iPSC包括但不限于小鼠中的第一代iPSC，第二代iPSC，和人诱导多能干细胞。在一些实施方式中，使用四个关键基因：Oct3/4，Sox2，Klf4和c-Myc，将逆转录病毒系统用于将人成纤维细胞转化为多能干细胞。在替代实施方式中，慢病毒系统用于用OCT4，SOX2，NANOG和LIN28转化体细胞。其表达在iPSC中诱导的基因包括但不限于Oct-3/4(例如，Pou5f1)；Sox基因家族的某些成员(例如，Sox1，Sox2，Sox3和Sox15)；Klf家族的某些成员(例如Klf1，Klf2，Klf4和Klf5)，Myc家族的某些成员(例如C-myc，L-myc和N-myc)，Nanog，和LIN28。

在一些实施方式中，采用基于非病毒的技术来产生iPSC。在一些实施方式中，腺病毒可用于将必需的四个基因转运到小鼠的皮肤和肝细胞的DNA中，产生与胚胎干细胞相同的细胞。由于腺病毒不会将其自身的任何基因与靶向的宿主结合，因此消除了产生肿瘤的危险。在一些实施方式中，尽管效率非常低，但是可以通过根本不具有任何病毒转染系统的质粒来完成重编程。在其他实施方式中，蛋白质的直接递送用于产生iPSC，因此消除了对病毒或基因修饰的需要。在一些实施方式中，使用相似的方法学产生小鼠iPSC是可能的：用通过聚精氨酸锚输送到细胞中的某些蛋白质来重复处理细胞足以诱导多能性。在一些实施方式中，多能诱导基因的表达也可以通过在低氧条件下用FGF2处理体细胞来增加。

关于胚胎干细胞的更多细节可见于，例如，Kaji等,2009,“Virus free inductionof pluripotency and subsequent excision of reprogramming factors,”Nature 458:771-775；Woltjen等,2009,“piggyBac transposition reprograms fibroblasts toinduced pluripotent stem cells,”Nature458:766-770；Okita等,2008,“Generation ofMouse Induced Pluripotent Stem Cells Without Viral Vectors,”Science 322(5903):949-953；Stadtfeld等,2008,“Induced Pluripotent Stem Cells Generatedwithout Viral Integration,”Science 322(5903):945-949；and Zhou等,2009,“Generation of Induced Pluripotent Stem Cells Using Recombinant Proteins,”Cell Stem Cell 4(5):381-384；其各自全文并入本文。

在一些实施方式中，示例性iPS细胞系包括但不限于iPS-DF19-9；iPS-DF19-9；iPS-DF4-3；iPS-DF6-9；iPS(Foreskin)；iPS(IMR90)；和iPS(IMR90)。

关于与DE发育有关的信号传导通路的功能的更多细节可见于，例如，Zorn andWells,2009,“Vertebrate endoderm development and organ formation,”Annu RevCell Dev Biol 25:221-251；Dessimoz等,2006,“FGF signaling is necessary forestablishing gut tube domains along the anterior-posterior axis in vivo,”MechDev 123:42-55；McLin等,2007,“Repression of Wnt/β-catenin signaling in theanterior endoderm is essential for liver and pancreasdevelopment.Development,”134:2207-2217；Wells and Melton,2000,Development 127:1563-1572；de Santa Barbara等,2003,“Development and differentiation of theintestinal epithelium,”Cell Mol Life Sci 60(7):1322-1332；其各自全文并入本文。

从多能细胞(例如，iPSC或ESC)产生定形内胚层的任何方法均适用于本文所述的方法。在一些实施方式中，多能细胞衍生自桑椹胚。在一些实施方式中，多能干细胞是干细胞。这些方法中使用的干细胞可以包括但不限于胚胎干细胞。胚胎干细胞可衍生自胚胎内部细胞团或衍生自胚胎生殖嵴。胚胎干细胞或生殖细胞可源自多种多样的动物种，包括但不限于多种多样的哺乳动物种，包括人类。在一些实施方式中，人类胚胎干细胞用于产生定形内胚层。在一些实施方式中，人类胚胎生殖细胞用于产生定形内胚层。在一些实施方式中，iPSC用于产生定形内胚层。

气管和食道疾病在人类中普遍存在，并且难以在小鼠中准确地建模。因此，申请人通过人多能干细胞的定向分化建立了食道发育的三维类器官模型。对BMP、WNT和RA信号传导通路的相继操纵允许将定型内胚层模式化为前肠、前段前肠(AFG)和背侧AFG球体。在3D基质中生长的背侧AFG球体形成了人食道类器官(HEO)，HEO细胞可以转变为二维培养物并生长为食道器官型筏。在这两种构型中，食道组织具有增殖性基底祖细胞和分化的复层鳞状上皮。使用HEO培养物对人食道出生缺陷建模，申请人确定，Sox2部分地通过抑制背侧AFG中的Wnt信号传导和促进生存，促进食道规格(specification)。一致地，Sox2消融在小鼠中引起食道发育不全。因此，HEO提供了对人体病理和组织工程进行建模的强大平台。

从多能干细胞(PSC)分化或直接从器官获得的人组织类器官已经证明是组织生理学和病理学的极佳模型(McCauley and Wells，2017)。通常，将PSC转换为器官细胞类型的过程依赖于重述器官发生的逐步分化，包括定形内胚层(DE)的形成，前后模式化成前肠，中肠和后肠，器官规格，以及分化成器官特异性谱系。该方法已用于生成人前段和后段内胚层类器官，包括呼吸道，胃，小肠和结肠(Chen等，2017；Dye等，2015，2016；McCracken等，2014，2017；Múnera等，2017；Spence等，2011)。然而，人PSC衍生食道组织尚未见报道。DE诱导后对BMP和TGFβ的双重抑制产生了前段前肠(AFG)；然而，这产生了包括咽，食道和呼吸内胚层的组织的混合物(Green等，2011；Kearns等，2013；Longmire等，2012)。这表明需要基于控制食道发育的通路的更精细的模式化方法，以指导PSC特异性地分化为食道。

多种信号传导通路指导发育中的食道的分化和形态发生。食道上皮来源于定形内胚层(DE)，定形内胚层是在原肠胚形成过程中形成的二维细胞片(Zorn and Wells，2007)。然后DE通过Wnt，BMP和FGF信号传导沿前后轴模式化并形成原始肠管，大致分为前肠，中肠和后肠(Dessimoz等，2006；McLin等，2007；Stevens等，2017；Zorn and Wells，2009)。前肠通过视黄酸(RA)进一步模式化为后段前肠(Bayha等，2009；Niederruth等，1999；Wang等，2006)。前段前肠(AFG)产生食道和呼吸道。响应Wnt和BMP激活的呼吸规范导致转录因子Nkx2-1的表达，而BMP在背侧前肠中的抑制则促进了表达Sox2的食道上皮的发育(Domyan等，2011；Goss等，2009；Harris-Johnson等，2009；Que等，2006；Rankin等，2016)。食道始于简单立方上皮，但发育成表达多种角蛋白的复层鳞状上皮和表达Sox2和p63的基底层(Rosekrans等，2015；Zhang等，2016)。

本文公开的是对上述信号传导通路在时间上的操纵，以将人PSC分化为食道类器官。在DE形成后，申请人确定，对BMP、WNT和RA通路的精确时间操纵指导AFG球体的形成。与体内数据一致，AFG球体通过激活WNT和BMP通路获得呼吸命运，而BMP抑制促进了背侧前肠球体的形成，其在持续生长1-2个月后形成人食道类器官(HEO)。HEO含有复层鳞状上皮，具有不同的基底和腔细胞层，并带有可在器官型筏培养物中扩增并分化为食道上皮的增殖性食道祖细胞。与小鼠胚胎平行使用的HEO可用于识别被SOX2功能丧失影响的分子通路，SOX2功能丧失是在人类和小鼠中的食道闭锁的原因之一(Domyan等，2011；Que等，2007)。虽然Sox2功能减少导致小鼠食道闭锁，但小鼠前肠内胚层中的Sox2的完全丧失导致食道发育不全。SOX2功能的丧失以及人和小鼠前肠的转录谱分析确定，SOX2调节Wnt拮抗剂(如SFRP2)的背侧表达，表明SOX2抑制Wnt诱导背侧前肠中的呼吸命运的能力。接下来，申请人已经发现，所公开的HEO提供了互补平台来研究人食道器官发生、先天缺陷和疾病。

在一个方面，公开了一种制造食道类器官(EO)的方法。该方法可以包括使定形内胚层与BMP抑制剂，Wnt激活剂，FGF激活剂和视黄酸(RA)接触的步骤。该接触步骤可以持续足以形成前段前肠培养物的第一时间段。在一个方面，前段前肠培养物在这样的第一时间段之后表达SOX2和HNF1B，并且基本上不表达PROX1和HNF6。该方法还可以包括使前段前肠培养物与BMP抑制剂(Noggin)和EGF激活剂接触足以形成背侧前段前肠(“dAFG”)球体的第二时间段，其中所述dAFG可表达SOX2和TP63，但不表达PDX1，PAX9或NKX2.1。该方法可以进一步包括以下步骤：培养dAFG足以允许形成食道类器官(EO)的第三时间段，其中所述培养是在EGF存在下进行，进一步任选地包括FGF信号传导通路激活剂，优选FGF10。在一个方面，EO是人食道类器官(HEO)。

示例性的基因(或当基因不可用时的mRNA)登录号被提供如下：SOX2(NG_009080.1)；HNF1B(NG_013019.2)，PROX1(NC_000001.11)；HNF6(NM_214659.1)；TP63(NG_007550.1)；PDX1(NG_008183.1)，PAX9(NG_013357.1)；和NKX2.1(NG_013365.1)。要注意的是，上面列出的基因名称(即，SOX2，HNF1B等)足以使本领域普通技术人员识别所记载的基因。提到的基因旨在包含基因的变化，而不旨在受限于所提供的示例性登录号的命名。也就是说，提供的登录号并非旨在限制基因和/或权利要求的范围，而是是这些基因/mRNA/蛋白质的许多标识符之一，并且本质上仅是示例性的。即，标识符可以仅指代可以是许多之一的特定同种型/变体。本领域普通技术人员将容易理解这种区别，并且本领域普通技术人员将理解，所记载的基因涵盖了具有与上述登录号相关的序列不同的序列的变体和基因。

在一个方面，定形内胚层可衍生自前体细胞，所述前体细胞选自胚胎干细胞，胚胎生殖细胞，诱导多能干细胞，中胚层细胞，定形内胚层细胞，后内胚层细胞，后内胚层细胞和后肠细胞。在一个方面，定形内胚层可衍生自多能干细胞。在一个方面，定形内胚层可衍生自多能干细胞，所述多能干细胞选自胚胎干细胞，成体干细胞或诱导多能干细胞。在一个方面，DE可以是DE单层，其中DE单层中大于90％的细胞共表达FOXA2和SOX17。

在一个方面，定形内胚层可通过使多能干细胞与选自Activin，生长因子的TGF-β超家族的BMP亚组；Nodal，Activin A，Activin B，BMP4，Wnt3a及其组合的一种或多种分子接触而衍生。

在一个方面，BMP信号传导通路抑制剂可以选自Noggin，Dorsomorphin，LDN189，DMH-1及其组合。在一个方面，BMP信号传导通路抑制剂是Noggin。BMP抑制剂可以是以约50至约1500ng/ml的浓度存在。

在一个方面，WNT激活剂可以选自一种或多种分子，所述分子选自：Wnt1，Wnt2，Wnt2b，Wnt3，Wnt3a，Wnt4，Wnt5a，Wnt5b，Wnt6，Wnt7a，Wnt7b，Wnt8a，Wnt8b，Wnt9a，Wnt9b，Wnt10a，Wnt10b，Wnt11，Wnt16，GSKβ抑制剂(例如CHIR99021，即“CHIRON”)，BIO，LY2090314，SB-216763，锂，豪猪抑制剂(porcupine inhibitor)IWP，LGK974，C59，SFRP抑制剂WAY-316606，β-连环蛋白激活剂DCA。Wnt通路激活剂的浓度可以，例如，以约50至约1500ng/ml的浓度使用。有许多激活Wnt/β-连环蛋白通路的方法(参见http://web.stanford.edu/group/nusselab/cgi-bin/wnt/)。合适的一些现有的wnt信号传导通路激活剂包括但不限于基于蛋白质的激活剂，其可以包括Wnt配体，其包括但不限于Wnt1，Wnt2，Wnt2b，Wnt3，Wnt3a，Wnt8等；Wnt配体活性的改变剂，包括但不限于活化的Wnt卷曲受体，(LRP)共受体，R-spondin蛋白，Dkk蛋白，Wnt配体分泌和运输的调节剂(Wntless，Porcupine)，抑制β-连环蛋白降解APC和GSK3β抑制，活化的β-连环蛋白，组成型活性TCF/Lef蛋白和化学激活剂，其可包括超过28种已知的激活或抑制Wnt/β-连环蛋白信号传导的化学物质。一些激活剂包括但不限于GSK3-β抑制剂CHIR99021(CHIRON)，BIO，LY2090314，SB-216763，锂，豪猪抑制剂IWP，LGK974，C59，SFRP抑制剂WAY-316606，β-连环蛋白激活剂DCA。

在一个方面，FGF激活剂可以是一种或多种分子，所述分子选自：FGF1，FGF2，FGF3，FGF4，FGF10，FGF11，FGF12，FGF13，FGF14，FGF15，FGF16，FGF17，FGF18，FGF19，FGF20，FGF21，FGF22，FGF23及其组合，优选FGF4或FGF10，或其组合。在一个方面，FGF通路激活剂的浓度可以以约50至约1500ng/ml的浓度使用。刺激FGF受体和受体下游信号传导组分的蛋白质和化学物质，包括MAPK，MEK，ERK蛋白质和调节其活性的化学物质。FGF信号传导可通过抑制FGF信号传导通路的抑制剂来激活，所述抑制剂包括但不限于Sprouty蛋白家族成员。

在一个方面，步骤a的视黄酸可以与DE接触约12小时至约48小时，或约20小时至约40小时，或约24小时的一段时间，或直到处理导致PDX表达以及P63表达丧失。

在一个方面，所述步骤c可以进行足以形成缺乏KRT8的复层上皮的一段时间。在一个方面，步骤c可以进行足以形成表达区域角蛋白的复层鳞状上皮的一段时间。在一个方面，步骤c可以进行足以使所述HEO表达INV的一段时间。

在一个方面，第一时间段可以是约三天±24小时的时间段。在一个方面，第二时间段可以是约三天±24小时的时间段。在一个方面，第三时间段可以是约28天±48小时，或约21天至约90天，或约30天至约60天的时间段。在一个方面，步骤a至c可以体外进行。

在一个方面，该方法可以还包括使步骤a)的前段前肠培养物或步骤b)的球体与选自胶原，基底膜基质(基质胶(Matrigel))或其组合的基质接触的步骤。

在一个方面，本文所述的食道组合物的特征可以在于没有神经分布和/或血管。在一个方面，该组合物是人食道类器官(HEO)组合物，其中该HEO组合物基本上不含粘膜下腺，过渡区，脉管系统，免疫细胞或粘膜下层中的一种或多种。

在一个方面，公开了一种能够组织化成器官型培养物的食道祖细胞。该食道祖细胞可以衍生自本文公开的方法。

在一个方面，公开了一种制造复层鳞状上皮的方法。该方法可以包括酶促解离本文所述的HEO以释放祖细胞，其中所述HEO为约3周至约10周龄，或约4周至约8周龄，或约5周龄；扩增所述祖细胞为单层；将所述解离的HEO在胶原蛋白包被的膜上在足以产生非角质化复层鳞状上皮的一段时间再分化为复层鳞状上皮，其中所述非角质化复层鳞状上皮表达角蛋白和选自IVL，CRNN和FLG的一种或多种标志物。在一个方面，复层鳞状上皮可包含基本上以薄片形式组织化的食道细胞。

在一个方面，公开了一种在有需要的个体中治疗食道疾病的方法。所述疾病可以选自先天性疾病(闭锁)，功能性疾病(失弛缓症和其他运动障碍)，免疫性疾病(嗜酸性食道炎)，病理性疾病(巴雷特食道和食道癌)及其组合，所述方法包括使本文公开的食道组合物(例如HEO或食道薄片)与所述个体接触的步骤。

在一个方面，该疾病可以包括食道的溃疡或溃疡组织，并且所公开的食道组合物可以用于接触和修复该溃疡组织。例如，在一个方面，该食道组合物可以包含基本上以薄片形式组织化的食道细胞，其可以与患者接触。

在一个方面，公开了一种识别用于嗜酸性食道炎的治疗的方法。在这个方面，所述方法可以包括使感兴趣的潜在治疗剂与本文所述的类器官或食道组织接触，检测嗜酸性食道炎活性的量度，和确定所述感兴趣的潜在治疗剂是否改善所述嗜酸性食道炎活性的量度。

在一个方面，公开了一种制造范科尼贫血疾病模型的方法。在这个方面，所公开的制备HEO或食道薄片的方法如本文所述进行，其中所述DE是从FANCA缺陷型前体细胞获得。

在一个方面，公开了一种制造巴雷特化生疾病模型的方法。在这个方面，该方法可以包括在根据本文公开的方法制备的HEO或食道薄片中诱导CDX2并激活BMP的步骤。

在一个方面，公开了一种制造嗜酸性食道炎疾病模型的方法。在这个方面，所述方法可以包括将根据本文公开的方法制备的HEO或食道薄片与IL-13接触足以增加CCL26和CAPN14的表达并减少CRNN和IVL的表达的一段时间。

在一个方面，公开了一种识别能够治疗食道疾病状态的活性剂的方法，其包括以下步骤：使测试试剂与根据本文公开的方法制造的HEO或食道薄片接触足以引起所述疾病模型中的生理变化的一段时间；和检测EoE中的CCL26和CAPN14的表达的减少和CRNN和IVL的表达的增加；或检测食道基因表达例如SOX2，p63，KRT13，CRNN，IVL的增加，以及巴雷特的肠道基因的丧失。

实施例

提供以下非限制性实施例以进一步说明本文公开的本发明的实施方式。本领域技术人员应理解，以下实施例中公开的技术代表已发现在本发明的实施中良好发挥功能的方法，因此可认为构成用于其实践的模式的实例。然而，根据本公开，本领域技术人员应当理解，可以在所公开的特定实施方式中进行许多改变，并且仍然获得相似或相似的结果，而不脱离本发明的精神和范围。

Wnt和视黄酸信号传导控制前段相比于后段前肠命运

为了产生前肠衍生物，首先如先前所述(图1)将hPSC诱导成DE，然后是三维(3D)的表达SOX2的前肠球体(D'Amour等，2005；Dye等，2016)；McCracken等，2014，2017)。在尝试产生食道类器官时，主要挑战是产生具有正确区域身份的前肠组织。内胚层模式化是由有区别的BMP、WNT和RA信号传导来调节，其中这些通路的最高激活水平促进中肠和后肠命运，较低水平促进前肠命运(Bayha等，2009；Davenport等，2016；Matt等，2003；McLin等，2007；Tiso等，2002；Wang等，2006)。基于我们表明信号传导的持续时间对于分化重要的先前研究，申请人测试了前肠球体形成过程中Wnt激活的持续时间对前后身份的影响(Spence等，2011)。申请人发现，经典Wnt通路激活剂chiron(通过GSK3β抑制)的较短持续时间，或DE形成之后的Wnt3a处理，导致形成表达HNF1β和SOX2的前段前肠(AFG)球体，具有低水平的后段前肠标志物PROX1和HNF6(图1A-1E，8A-8G)。HNF1β不在咽内胚层中表达，表示AFG球体不是咽的(图1C-1E，8B)。中/后肠标志物CDX2不表达(图1B，1D，1E)。由此，申请人得出结论，这些前肠球体的区域身份(HNF1B+/SOX2+，PROX1-/HNF6-)是远离咽部而靠近后段前肠。

还已知四天的RA处理使前肠球体变后(posteriorize)(McCracken等，2014)，并且RA信号传导的丧失导致后段前肠器官的异常发育(Bayha等，2009；Wang等，2006)。因此，申请人研究了缩短前肠培养物中RA信号传导的持续时间是否会促进更加前段的命运。用RA处理4天的前肠培养物表达后段前肠标志物GATA4和PDX1，而用RA处理1天导致表达TP63的球体，TP63是在发育中的食道中表达的标志物(图1F-K，8O-8R)。缺乏RA或含有醛脱氢酶抑制剂DEAB(阻断RA合成)的培养物产生了具有很低的TP63表达和增加的水平的咽标志物PAX9和OTX2的球体(图1G-1K，8F-8G，8S-8V)。这些数据在一起，表明RA的短暂激活促进了与推定食道域一致的前肠区域身份。

前段前肠球体有能力形成食道或呼吸谱系

前肠的推定食道/呼吸区域沿着背-腹(D-V)轴被模式化，导致分别规范了食道和呼吸道命运。申请人预测，AFG球体会响应于D-V模式化提示以获得食道或呼吸命运。在脊椎动物胚胎中的研究证明，BMP和Wnt信号传导促进呼吸命运(NKX2-1+SOX2-)，而背侧前肠管中的BMP信号传导的Noggin介导抑制是食道发育所需的(Domyan等，2011；Fausett等，2014；Goss等，2009；Harris-Johnson等，2009；Que等，2006)。因此，申请人用3天的chiron和BMP4或替代地用Noggin(以抑制BMP信号传导)处理第6天的AFG球体(图2A-2B)。chiron+BMP4的处理导致NKX2-1的诱导和SOX2的抑制，而Noggin的处理使球体背侧化(dorsalize)，如通过SOX2，MNX1，KRT4和TP63的升高的水平标记的(图2C-I)(Daniely等，2004；Sherwood等，2009)。总的来说，AFG球体的培养物中BMP信号传导的抑制促进了背侧前段前肠身份。

具有复层鳞状上皮的食道类器官的形成

为了确定背侧模式化的AFG球体是否有能力生长成食道类器官，申请人将悬浮于基质胶中的它们与单独的EGF一起培养，或在预测促进食道发育的其他通路(包括Wnt激活(chiron)，长期BMP抑制(Noggin)，刺猬的激活(平和激动剂SAG)，和FGF10)的操纵的背景中培养它们。尽管这些操纵中的大多数对生长没有影响(数据未显示)，但申请人发现，从第6天到第13天向培养物中添加FGF10导致球体向类器官生长的效率改善(图11A-11E)，并且确实不影响模式化和分化成食道类器官(数据未显示)。

接下来，申请人将推定的人食道类器官(HEO)的形态和分子发育与胚胎小鼠食道的正常发育进行了比较。在胚胎生长和发育期间，食道从E12.5时的简单立方上皮转变到E14.5和E17.5之间的多层/复层上皮(图3G，3J，3M，3P，11F-11O，11R)(Chen等，2012)。类似地，在一个月的过程中，HEO的尺寸从直径为大约50μm扩张至200-400μm(图3B-3F)。而且，类器官上皮从主要为SOX2，p63双阳性的简单上皮转变到表达食道复层鳞状上皮的标志物的多层上皮(图11H-11Q，11S)。在一个月时，HEO表达基底标志物p63和KRT14以及上基底标志物KRT13(图3H，3K，3N，3Q)。这种表达模式类似于包含多层上皮的E17.5食道(图3G，3J，3M，3P)。

一个月的HEO仍然相对不成熟，如通过广泛的SOX2上皮表达和未成熟食道标志物KRT8的表达证明的(图3J，11L-11M)。因此，申请人将培养期延长至2个月，这导致缺乏KRT8的复层上皮的额外生长和形成。申请人观察到KRT14在整个基底层和KRT13和IVL在整个分化的上基底层的稳健表达，证明存在复层鳞状上皮(图3I，3L，3O，3R)。从组织学上讲，两个月的HEO的基底层以及鳞状细胞都更加上基底地明确，没有任何角质化的迹象(图4A)。HEO的上皮形态很容易与包括胃(HGO)，肠(HIO)或结肠类器官的其他类器官区别开来，每种类器官的上皮形态对于该器官类型都是独特的(McCracken等，2014，2017；Múnera等，2017；Spence等，2011)。

为了显示HEO是人食道上皮，申请人通过qPCR比较1和2个月的HEO与人食道活检以及1个月的HGO和HIO。关键复层鳞状上皮标志物p63，KRT5，KRT13，IVL，和CRNN分别在人食道活检和2个月HEO中最高地表达，而HGO和HIO可忽略不计地表达这些转录物(图3S-3V)。另外，申请人将HEO的整个转录组与从食道，肺，皮肤，胃，小肠，结肠，HGO和HIO分离的其他人上皮组织的转录组进行了比较。RNA测序数据的聚类分析揭示，与胃，小肠和结肠相反，HEO与人食道和食道角质形成细胞系EPC2最密切相关(图3W)。申请人使用主成分分析来将HEO与HIO和HGO进行比较，发现甚至一个月的HEO也完全不同于其他胃肠道类器官(图3X)。食道、皮肤、胃和结肠的标志物的比较揭示，HEO与人食道高度相似，再次肯定了qPCR分析。尽管皮肤和食道之间存在显著的重叠，但也存在明显的差异，包括皮肤中的KRT1和食道中的KRT4和13。值得注意的是，HEO不表达胃或肠标志物TFF2，CLDN18，GATA4，PDX1，CDX2和CDH17(图3Y)。

鉴于已显示PSC衍生类器官的体内生长促进进一步的成熟和功能，申请人利用三种不同的基于移植的方法体内研究HEO。申请人首先将1月龄的HEO移植到免疫缺陷(NSG)小鼠的肾囊中，并使它们生长8周，这导致所移植的类器官的子集的成熟(2/5)(图12A-12F)。申请人使用了另外两种不成功的移植方法：将HEO接种到可生物降解的PEG支架上，然后将它们移植到小鼠的脂肪垫中；或将HEO植入NSG小鼠的前胃中(数据未显示)(Dye等，2016)。总体而言，球体和类器官长出的生长在各种ES和iPS系中稳健，每一代产生表达复层鳞状标志物的绝大多数的类器官(图T-11CC)。这些数据在一起，证明PSC衍生背侧前肠球体形成具有良好分化的、非角化的复层鳞状上皮的食道类器官。

HEO含有能够重构复层鳞状上皮的祖细胞

食道含有基底祖细胞，其可引起所有的分化的复层层(DeWard等，2014；Doupe等，2012；Kalabis等，2008)。这种特性允许食道细胞被分离，在培养物中扩增，然后再分化为复层鳞状上皮。申请人首先通过将第5周的HEO酶促解离成单细胞，在单层培养中扩增它们，然后使用器官型筏培养法测试它们再分化为复层鳞状上皮的能力，来测试HEO是否含有食道祖细胞(Hoskins等，2009)。在器官型培养物的14天后，HEO衍生角质形成细胞产生未角化的复层鳞状上皮，其表达适当的角蛋白和分化标志物IVL，CRNN，FLG(图4A-4N)。HEO、HEO衍生角质形成细胞和器官型筏培养物均表达高水平的基底标志物p63，KRT5和KRT14(图4O-Q)，而器官型筏是最分化的，其以与人食道活检相当的水平表达CRNN，IVL，KRT13，TMPRSS11A和D(图4R-4U)。然而，在3D类器官培养物中长期扩增这些祖细胞的努力并未成功。在3D基质胶中再铺板的解离的类器官在数周内生长，保持了模式化(SOX2+p63+)，并多次传代(再解离)(图12G-12H，12O，12Q-12R)。然而，传代效率随时间减少，并且申请人无法在这些传代的类器官中诱导分化或复层(图12I-N，12P)。该结果类似于衍生自人食道的食道祖细胞，证明一般无法长期培养这些细胞(Kasagi等，2018)。

研究基底祖细胞分化的另一种方法是通过对增殖中的基底祖细胞进行脉冲追踪标记，并在它们随时间分化成复层层时跟踪标记的细胞。申请人通过一天的EdU处理标记了第40天的HEO中的增殖中的细胞，并立即(第0天)，或在标记后的2、6和13天的追踪期之后对它们进行了分析(图4V-4BB)。EdU标记的细胞最初出现在表达p63的基底细胞中，但随着时间，这些细胞移动到上基底区室中，失去p63表达，并最终在标记后13天脱落到管腔中(图4W-4BB)。因此，据信HEO含有分化和迁移到复层层中的基底祖细胞，与食道上皮相似。

使用HEO和小鼠遗传学以确定食道发育的机制

虽然建立PSC衍生HEO模型系统是一个重要的进步，但需要证明HEO可以用于研究人类发育和疾病。申请人选择使用HEO与两种完善的脊椎动物模型系统(小鼠和非洲爪蟾)并行，通过研究SOX2的功能丧失来对食道出生缺陷进行建模。首先，申请人确定Sox2的完全丧失的后果，因为在人类和小鼠中SOX2功能的部分丧失导致食道的部分损失(闭锁)(OMIM206900，Fantes等，2003；Que等，2007；Williamson等，2006)。申请人生成了两种小鼠模型以在食道发育开始前使前肠内胚层中的Sox2诱导地缺失(FoxA2^CreER；Sox2^fl/fl和Sox2^CreER/fl)(Arnold等，2011；Park等，2008；Shaham等，2009)。在这两种模型中，前肠中Sox2的早期缺失导致彻底的食道发育不全，咽和胃之间的前肠区域保留为一根缺少p63的管，并广泛表达呼吸标志物Nkx2-1(图5C-5F，13A-13D)。肺芽在很大程度上类似于对照胚胎，并且细胞极性不受影响(图13E-F)。食道发育开始后Sox2的缺失导致食道组织部分丧失，食道的区域在E11.5时严重发育不全。在某些区域中，食道只有2-3个细胞宽，仍然是简单立方上皮，缺乏p63表达，并在某些细胞中表达Nkx2-1(图5I-5L)。这些数据表明，Sox2功能是启动食道发育所需的，而失去Sox2在一天后导致减少的食道组织和身份。

为了研究食道发育不全是由细胞死亡和增殖的变化引起，还是仅由于不存在与普通前肠的分隔，申请人在分隔开始时分析了E10.5胚胎。Sox2^CreER/f1胚胎在分隔正常会发生的水平的背侧前肠中具有增加的切割Caspase3染色，表明推定食道的细胞经历细胞死亡(图5G-5H，13U)。由Ki67+细胞标志的增殖没有变化(图13V)。在对照和Sox2敲除前肠两者中，看起来存在一个点，在那里上皮沿背腹轴中途变窄，这表明不管是否存在Sox2蛋白，上皮都试图分成两个管(图6M-T)。小鼠中的结果证明，Sox2是前肠中的食道发育、存活和将Nkx2-1限制在腹侧/呼吸域中所需的。

Sox2在抑制Nkx2-1表达中的与BMP无关的作用

申请人接下来想要利用人类和非洲爪蟾前肠培养物的体外优势，以机械方式探索Sox2如何引发食道发育。从以前的研究中，Sox2据信抑制呼吸(腹侧)发育并促进食道(背侧)发育。为了促进腹侧身份，BMP信号传导据信抑制腹侧前肠中的Sox2，从而允许Nkx2-1表达的Wnt介导诱导(Domyan等，2011)。申请人测试了BMP的唯一功能是否是通过抑制Sox2，然后激活Wnt来抑制Sox2，这被预测足以在不存在BMP的情况下激活Nkx2-1。在爪蟾内胚层外植体中使用吗啉注射敲低sox2和用Bio激活经典Wnt信号传导没有在不存在BMP4的情况下激活nkx2-1表达(图6A-B，6E-6F)。然而，用Bio和BMP4进行的处理与在小鼠Sox2基因敲除中一样，在sox2敲低后扩展了nkx2-1域(图6C-6D)。这些数据表明两件事：一，BMP信号传导是与Sox2抑制无关的Nkx2-1表达所需的；二，Sox2是抑制呼吸域外的异位Nkx2-1表达所需的。

为了确定人SOX2是否是阻止NKX2-1的异位表达所需的，申请人使用了iPSC系来诱导地表达CRISPR蛋白的阻遏物形式，其抑制SOX2基因座(CRISPRi-SOX2)处的转录(Mandegar等，2016)。人背侧前段前肠培养物(dAFG)中的SOX2敲低导致NKX2-1 mRNA和蛋白质的异位表达(图6G-6J，6L-6M)。腹侧前段前肠(vAFG)中的最佳NKX2-1诱导仍依赖于BMP的存在(图6K-6N)。为了确定SOX2表达是否足以抑制NKX2-1，申请人产生了在呼吸诱导过程中在腹侧前肠中表达HA标记的SOX2的稳定tet诱导型hPSC系。腹侧前肠中SOX2的表达导致NKX2-1 mRNA和蛋白的显著下调(图6Q-6T)。这些数据在一起，表明BMP具有用于呼吸诱导的额外功能，并证实在所有情况下Wnt信号传导是NKX2-1表达所需的。此外，SOX2表达足以通过未知机制抑制NKX2-1表达。

Sox2在背-腹模式化过程中调节Wnt拮抗剂的表达

前肠培养物的易于操纵和可扩展性理想地适用于“组学”方法。因此，申请人采用基于RNA测序的方法来识别在背-腹(食道-呼吸)模式化过程中受SOX2和/或BMP信号传导调节的基因。主成分分析(PCA)确定，最大组的受调节基因是用于背腹模式化(±BMP4或Noggin)和用于SOX2调节基因(±dox-SOX2 CRISPRi)(图14A)。此外，与腹侧(BMP4)培养物相比，SOX2在背侧(Noggin)培养物中调节不同组的基因，如簇热图和PCA中沿主成分轴1所示(图7A，14A)。BMP4或Noggin的使用导致背腹模式化标志物的预期变化，例如腹侧(BMP高)培养物中NKX2-1的上调和SOX2，MNX1，KRT4，PAX9的抑制。SOX2的丧失然而导致在背侧前肠中的许多转录变化和在腹侧前肠中相对较少的变化，包括NKX2-1表达增加和FOXE1，NTN1，和GDNF表达减少(图7A-7B，7D，14B)。

在背侧和腹侧基因中，有响应于CRISPRi-SOX2改变(升高或降低)的转录物和不这样的基因(与SOX2无关)。例如，在背侧富集的542个基因中，有75.6％(410个基因)依赖于SOX2。在背侧前肠中有17.2％(93个基因)在SOX2敲低后下调，申请人称其为“由SOX2正向调控”。有39个转录物响应于SOX2敲低而升高，表明它们“由SOX2反向调控”。在腹侧培养物中，通过BMP处理上调了374个基因，其中响应于SOX2的丧失，38个减少，5个增加(图7D)。并不出人意料，更多基因在背侧前肠中由SOX2调控，因为腹侧SOX2表达已经响应于BMP而显著下调。申请人使用交叉分析识别了BMP可能通过抑制SOX2而调控的基因，发现46个基因(12.3％)被BMP处理和SOX2敲低两者上调(“由SOX2反向调控的基因”)。申请人还发现了81个基因(14.9％)被BMP处理和SOX2敲低两者下调(“由SOX2正向调控的基因”)(图7B)。此外，>80％的BMP调节的转录物并不响应于SOX2敲低而发生变化，这与BMP在腹侧前肠规范中具有独立于SOX2抑制的角色的结论相一致。

对其表达响应于SOX2敲低而在dAFG中减少的所有404个独特基因进行基因本体论分析，产生了许多重要的基因本体论术语，包括涉及Wnt信号传导通路的两个术语(图7C)。基因集富集分析还发现，响应于SOX2敲低，若干Wnt信号传导组分显著改变(图7E)。分泌的经典Wnt信号传导抑制剂SFRP1，SFRP2，DKK1均在SOX2丧失后下调(图7E，7K)。此外，腹侧培养物中SOX2的过表达上调了SFRP2，这与hPSC衍生中内胚层和内胚层中已发表的ChIP-seq数据一致，显示在SFRP2位点处的SOX2结合峰(图14C-14D)(Tsankov等，2015)。

由于SOX2正向调控Wnt拮抗剂的表达，因此申请人假设SOX2可以抑制背侧前肠中的经典Wnt信号传导。为了对此进行研究，申请人使用两种遗传模型Foxa2^CreER；Sox2^fl/fl和Sox2^CreER/fl从小鼠前肠中使Sox2缺失，并通过分析Wnt靶基因Axin2的表达来测量经典Wnt/β-连环蛋白活性(Jho等，2002；Lustig等，2002)。原位杂交揭示了对照胚胎的腹侧前肠内胚层中Axin2 mRNA的高水平和背侧前肠内胚层中的低水平。相比之下，当Sox2被缺失时，背侧前肠具有增加的Axin2染色(图7F-7I)。类似地，在具有外源表达的SOX2的人腹侧前肠培养物中，AXIN2转录物水平减少(图6G，7J)。除了增加经典Wnt基因的表达外，Nkx2-1表达域还扩展到背侧前肠中(图5E，13C-13D)。与来自人前肠培养物的数据一起，申请人提出一个模型，其中Sox2正向调控背侧前肠中的分泌型Wnt拮抗剂的表达，其抑制背侧前肠中的经典Wnt信号传导，并将Nkx2-1的表达限制在腹侧前肠。

讨论

已经描述了从原代食道细胞和细胞系产生HEO和器官型筏培养物(Andl等，2003；Kalabis等，2012；Kasagi等，2018)。此外，人PSC衍生前段前肠(AFG)内胚层培养物产生多种AFG衍生物的异质混合物(Green等，2011；Kearns等，2013；Longmire等，2012)。为了通过这种方法富集食道内胚层，必须依靠细胞分选和随后的培养，如Zhang等所实现的。或者，定向分化成特定的前肠衍生物，如食道，得益于早期器官发育的更细微的重述。在这里，申请人已使用近似于DE形成、前肠模式化和形态发生、AFG模式化成推定食道-呼吸域，和最后的背侧前肠模式化的逐步方式，将人PSC特定地分化成HEO。这种方法逐渐限制了内胚层分化潜能，使得留下生长成食道类器官的背侧AFG内胚层。

一项挑战是找到产生前肠的呼吸-食道前段区域但不是最前段咽部区域的条件。BMP抑制对于前肠规范是必要的，并且申请人发现，短暂Wnt和RA激活使前肠模式化成食道-呼吸内胚层而不是咽内胚层。而且，申请人发现1天的RA促进了TP63和KRT4而不是后段前肠标志物GATA4和PDX1的表达。不旨在受到理论的限制，RA的这种作用可以是直接的，因为RA促进了角质形成细胞中KRT4和TP63的表达(Bamberger等，2002)。由于缺乏特定食道标志物，申请人依靠区域表达标志物的存在与否来确定早期前段前肠内胚层身份，并排除咽，呼吸，肝，胰和胃内胚层。

申请人还使用功能测定法来显示前肠的食道-呼吸区已经产生。前肠的这种前-后水平应有能力产生食道和呼吸谱系。申请人显示，AFG球体可以通过上调NKX2-1而响应于呼吸诱导信号(通过chiron进行的BMP4和Wnt激活)。相反，BMP信号传导的抑制基于SOX2，TP63和MNX1的表达而使球体变得背侧。有趣的是，在申请人的培养条件下，与其他方案形成对比，在前肠诱导过程中添加TGFβ抑制剂导致后段前肠标志物增加，并减少NKX2-1的上调(图10A-J)，这示例了时机和组合信号传导通路操纵如何可以导致不同结果。

来自背侧前肠球体的食道谱系承诺的最终证据是它们生长成具有表达区域角蛋白的复层鳞状上皮的三维HEO。在长期培养或体内移植后，HEO在形态学方面和通过对后期食道标志物(IVL，CRNN，FLG)的分析，成熟度显著增加。此外，HEO可以在器官型筏培养中解离，扩增为角质形成细胞，并分化为复层鳞状上皮，证明HEO具有与人食道相似的基底祖细胞(Doupe等，2012；Kalabis等，2008)。实际上，在器官型筏培养物中的分化标志物的表达水平接近在人食道中的表达水平。从人PSC产生完全分化和成熟的细胞类型是跨器官系统的挑战，我们的数据表明，PSC衍生食道上皮是在迄今为止衍生的最高度分化的组织中。

HEO无疑将促进人类食道疾病的研究。作为一个例子，申请人展示了HEO如何对人食道出生缺陷建模。由于SOX2突变可导致小鼠和人类食道闭锁，因此申请人使用HEO来确定SOX2如何控制人类食道发育，因为其作用机理尚不清楚(Fantes等，2003；Que等，2007；Williamson等，2006)。申请人首先确定了丧失SOX2后发生的转录变化。当前模型表明BMP信号传导的主要作用是抑制Sox2，其抑制Nkx2-1。然而，申请人已经确定，BMP信号传导独立于SOX2调节许多转录变化，这表明当前模型过于简化(Domyan等，2011；Rankin等，2012)(图2B)。此外，该数据表明SOX2抑制经典Wnt信号传导并促进背侧内胚层存活。在其他情况下，Sox2可以通过多种多样的机制抑制和促进Wnt信号传导，包括直接与TCF/LEF结合以及调节分泌型Wnt拮抗剂(Chen等，2008；Kormish等，2010；Li等，2016；Sinner等，2007；Zhou等，2016)。使用Barx1敲除小鼠已显示分泌型Wnt拮抗剂Sfrp1和Sfrp2在气管食道分隔中的作用(Woo等，2011)。在人类前肠培养物中，SOX2还调节SFRP2的转录水平，而SOX2的丧失导致背侧前肠中Wnt活性增加。由此申请人得出结论：SOX2限制了来自背侧前肠内胚层的呼吸谱系，可能是通过抑制经典Wnt信号传导。

总之，申请人已经开发了一种基于使早期内胚层和前肠模式化的信号的时间操纵来产生人PSC衍生HEO的方法。HEO发育与小鼠食道发育极为相似，并导致模式化复层鳞状上皮。申请人在小鼠和青蛙中使用了人类前肠培养物和遗传方法来识别在背腹模式化和食道规范过程中受Sox2调控的分子通路。申请人确定在人类和小鼠两者中SOX2抑制Wnt活性，而未能做到这一点导致呼吸程序的不当背侧激活。因此，HEO为研究食道发育和疾病提供了强大的模型。

实验模型和主题细节

动物

根据《NIH实验动物的护理和使用指南》，所有小鼠和青蛙都被安置在辛辛那提儿童医院医学中心(CCHMC)的动物设施中。将动物维持在12小时的明暗循环中，可以随意饮水和标准饲料。野生型和突变型小鼠和非洲爪蟾被用于前肠和食道胚胎发育的研究。胚胎的性别未确定。8-16周龄的雄性免疫缺陷NSG(NOD.Cg-Prkdc^-scidIl2rg^tm1Wjl/SzJ)小鼠用于移植实验。健康动物用于所有实验。所有实验均在CCHMC的机构动物护理和使用委员会(协议IACUC2016-0004和IACUC2016-0059)的批准下进行。

人类ESC/IPSC

人胚胎干细胞(ESC)系H1(WA01)购自WiCell。未经修饰的iPSC系65.8、72.3和263.10从CCHMC多能干细胞设施产生并获得，并由CCHMC的机构审查委员会批准。CRISPR干扰iPSC系(WTC11遗传背景)是从加利福尼亚大学旧金山分校的Conklin实验室生成并获得(Mandegar等，2016)。H1系是雄性，iPSC65.8系是雌性，iPSC72.3系是雄性，iPSC263.10系是雄性，而SOX2 CRISPR干扰系(CRISPRi-SOX2)是雄性。检查所有iPSC系并确定其具有正常核型，已经使用体内畸胎瘤测定法测试iPSC65.8和iPSC72.3。

人活检组织

在内窥镜检查时，在同意为研究目的提供食道活检标本的儿科患者(均为男性，年龄3至13岁)中收集人类食道组织，该研究得到辛辛那提儿童医院医疗中心的机构审查委员会的批准(协议2008-0090)。通过RNA定量将样品用作食道组织身份的阳性对照。

方法细节：

实验设计

多能干细胞系和维持

人类胚胎干细胞和诱导多能干细胞(hESC和hiPSC)均保持在无饲养层的培养物中。将细胞铺板于hESC适格基质胶(BD Biosciences，圣何塞，加利福尼亚州)上，并保持在37℃、5％CO₂与每日更换的mTeSR1培养基(STEMCELL，温哥华，加拿大)；使用Dispase(STEMCELL Technologies)每4天常规传代细胞。通过将人类SOX2 ORF克隆到pINDUCER20(Addgene#44012，Meerbrey等，2011)中，在CCHMC的病毒载体核心实验室的帮助下产生慢病毒，并用2μL病毒转导hESC，产生H1 HA标记的SOX2 dox诱导型系。；在使用mTeSR1和G418(500μg mL-1，ThermoFisher Scientific)进行选择时维持该系。

前段前肠培养物和球体的分化

用Acutase(STEMCELL Technologies)处理汇聚的hPSC培养物以作为单细胞重悬于mTeSR1和Y-27632(10μM，Tocris)中，并铺板在基质胶上。第二天，如先前所述进行分化为定形内胚层(McCracken等，2014)。简而言之，第一天在RPMI 1640培养基(LifeTechnologies)中用Activin A(100ng mL-1，R&D systems，明尼阿波利斯，明尼苏达州)和BMP4(50ng mL-1，R&D systems)处理细胞。随后两天的细胞仅在RPMI 1640中用Activin A(100ng mL-1)处理，伴随0.2％和2％的渐增浓度的HyClone限定胎牛血清(dFBS，GEHealthcare Life Sciences)。

对于前段前肠单层培养物，将细胞在含有2％dFBS的RPMI 1640中的Noggin(200ngmL-1)中处理3天，第3天用全反式视黄酸(2μM，Sigma，圣路易斯，密苏里州)。

或者，为了从定形内胚层产生前段前肠球体，将细胞用FGF4(500ng mL-1，R&Dsystems)，Noggin(200ng mL-1)在含有2％dFBS的RPMI 1640中处理3天。另外的因素在此期间(在结果中描述)进行了测试，如CHIR99021(“chiron”或“chr”，2μM，Tocris)，Wnt3a(500ng mL-1，R&D systems)，SB431542(10μM，Tocris)，DEAB(10μM，Sigma)和视黄酸(2μM)。

三维培养物和前段前肠球体分化为人食道类器官

将前段前肠球体转移到50μL液滴的基质胶中，并在补充有B27补充剂(1X，ThermoFisher Scientific)，N2补充剂(1X，ThermoFisher Scientific)，HEPES(13mM，ThermoFisher Scientific)，L-谷氨酰胺(2mM，ThermoFisher Scientific)，青霉素/链霉素(1X，ThermoFisher Scientific)和EGF(100ng mL^-1，R&D systems)的Advanced DMEM/F12(ThermoFisher Scientific)基础(“Gut”)培养基中培养3-58天。除此基础培养基外，前三天还补充了Noggin(200ng mL^-1)，FGF10(50ng mL^-1)和CultureOne补充剂(1X，ThermoFisher Scientific)。继续进行FGF10和CultureOne的补充，直到三维培养物中的第一周结束为止。每3-4天更换一次培养基。对于EdU标记，向培养基补充限定时间段的EdU(10μM，Invitrogen)，并在用不含EdU的培养基更换之前用无菌PBS洗涤两次以除去。

角质形成细胞和器官型筏培养物

在37℃下使用TrypLE Select(Gibco)解离第41天的HEO 30-40分钟，在此期间用22¹/₂&27¹/₂计量针磨碎它们。在解离之后，将细胞在补充有Y-27632(10μM)，EGF(10ng mL-1)和青霉素/链霉素(1X)的完全角质形成细胞无血清培养基(K-SFM，Gibco)中重构，然后以1.5×10⁴细胞cm^-2铺板在胶原蛋白IV(Sigma)包被的板(1.5μg cm^-2)上。达到90％汇合后，使用TrypLE Select将HEO衍生角质形成细胞解离为单细胞，并转移至器官型筏培养物中。如前所述产生略有改动的器官型筏(Hoskins等，2009)。简而言之，将1.2×10⁶个HEO衍生角质形成细胞铺板在24mm胶原基质(大鼠尾巴，EMD Millipore)上，该基质带有嵌入的小鼠成纤维细胞(J2-3T3细胞)。首先将筏在暴露于液-气界面之前在Y-27632(10μM)的加入下培养4天以生成复层上皮。14天后，将筏固定在4％PFA中并包埋在石蜡中。将切片用H&E染色，并通过常规显微镜检查组织病理学。

小鼠模型

进行的所有动物实验均得到辛辛那提儿童医院医学中心(CCHMC)的机构动物护理和使用委员会(IACUC)的批准。FoxA2^CreER小鼠获自Anne Moon的实验室(Park等，2008)，Sox2^fl/fl小鼠获自Richard Lang的实验室(Shaham等，2009)，以及Sox2^CreER(库存号017593，Arnold等，2011)获自The Jackson Laboratory。将小鼠饲养在CCHMC动物设施中，并在相关阶段使用定时交配获得胚胎。在不同阶段用0.12mg/g小鼠的他莫昔芬对怀孕母畜进行强饲，以在适当的阶段激活CreER。具体而言，FOXA2^CreER实验中的怀孕母畜以6.5dpc强饲以实现有效重组。在Sox2^CreER实验中，怀孕母畜在气管食道分隔之前以8.5dpc强饲以敲除Sox2，在气管食道分隔期间/之后以9.5dpc强饲以敲除Sox2。

非洲爪蟾实验

非洲爪蟾成体购自Nasco(威斯康星州阿特金森堡)，并根据CCMCC IACUC方案收容。如所述进行排卵，体外受精和使胚胎脱胶(Sive等，2000)。在8细胞阶段将之前验证过的靶向5'UTR(Sox2-UTR MO)和ATG起始密码子(Sox2-ATG MO)的Sox2吗啉(MO；VanRaay等，2005)的混合物注射到每个植物性卵裂球中(2ng总MO每卵裂球，总8ng每胚胎)以靶向内胚层。MO是合成并购自GeneTools。在对照注射中使用等量的对照MO。

对于非洲爪蟾外植体研究，将NF20阶段前肠内胚层组织在1X MBS(改良Barth盐水；Sive等，2000)+50μg/mL硫酸庆大霉素(MP Biochemicals)，+4％Ficoll-400(Sigma)和外植体中显微切割，然后在0.5X MBS+0.1％无脂肪酸BSA(Fisher)+50ug/mL硫酸庆大霉素中培养，有或没有以下浓度的来自NF25-NF38阶段(约48小时)的小分子或重组蛋白：3.5μMBio(Tocris)，50ng/mL重组人BMP4(R&D systems)。

原位杂交

通过从线性化小鼠cDNA质粒产生DIG标记的探针，对小鼠切片进行原位杂交。使探针在65℃下杂交过夜，第二天，彻底清洗探针，然后与抗DIG碱性磷酸酶抗体(Sigma)在MAB缓冲液(马来酸缓冲液，100mM马来酸，150mM NaCl，pH7.5)+10％热灭活羔羊血清(Gibco)+2％封闭试剂(Sigma))中的1:5,000稀释一起4℃培养过夜。在用BM紫使载玻片显影之前进行多次洗涤。非洲爪蟾外植体的原位杂交主要如(Sive等，2000)中所述进行。简言之，将胚胎和外植体在MEMFA(0.1M MOPS，2mM EGTA，1mM MgSO₄，3.7％甲醛)中40℃固定过夜，在100％乙醇中直接脱水，并在-20℃储存。对原位方案使用以下小修改：在第1天以2ug/mL对外植体使用蛋白酶K(ThermoFisher)10分钟；在第2天省略RNAse A步骤；和最后在第2/3天使用抗DIG碱性磷酸酶抗体在MAB缓冲液+10％热灭活羔羊血清+2％封闭试剂中的1:5000稀释。

根据制造商说明书，整装爪蟾胚胎的原位杂交是通过产生反义DIG标记的nkx2-1原位探针进行，探针是使用线性化质粒全长nkx2-1cDNA模板(Small等，2000；XbaI用于线性化，T7用于合成反义RNA)与10X DIG RNA标记混合物(Sigma)产生。

免疫荧光分析

组织培养物在室温下用4％多聚甲醛固定15分钟，对于冷冻切片在4℃下用4％多聚甲醛固定2小时，或对于石蜡包埋/切片和小鼠胚胎在4℃下用4％多聚甲醛固定过夜。对于石蜡包埋和切片，在固定后，将组织脱水并包埋在石蜡块中。然后，将石蜡切片的玻片去石蜡，并在染色前在10mM柠檬酸钠中进行30分钟抗原恢复。对于冷冻切片，将组织在PBS中彻底清洗，在30％蔗糖中放置过夜，包埋在OCT化合物(VWR)中，以8μm的厚度切片。通常，然后将载玻片用0.5％TritonX-100的PBS溶液渗透10分钟，在5％正常驴血清(JacksonImmunoResearch)中封闭1小时，然后在一抗中4℃孵育过夜。第二天，载玻片在PBS中彻底洗涤，在二抗(1:500)中孵育1小时，然后再次彻底洗涤。对于EdU可视化，申请人在封闭之前使用Click-iT EdU Alexa Fluor 488成像试剂盒(Invitrogen)。对于整装免疫荧光染色，固定后立即将胚胎置于100％甲醇中。胚胎然后用Dent’s Bleach(4:1:1的MeOH:DMSO:30％H₂O₂)在室温下渗透2小时，用甲醇洗涤再水化，并在室温下封闭几个小时至4℃过夜。施加一抗并4℃孵育胚胎过夜。然后将胚胎在0.1％TritonX-100的PBS溶液中彻底洗涤，之后在二抗中4℃孵育过夜。最后，胚胎再次洗涤，用甲醇洗涤脱水，并在成像前至少15分钟用Murray'sClear(2:1苯甲酸苄酯:苄醇，Sigma)清洁。所用抗体和稀释液的列表参见表2。

RNA分离和qPCR

整体收获球体和类器官，包括包埋基质胶。来自器官型筏培养物的胶原蛋白栓塞首先在第14天从transwell中移出，然后整体收获。使用NucleoSpin RNA试剂盒(Macherey-Nagel)分离总RNA，并使用SuperScript VILO cDNA合成试剂盒(ThermoFisherScientific)反转录为cDNA。对于qRT-PCR，申请人使用Quantitect SYBR-Green预混液(Qiagen)，并将反应在QuantStudio 6机器(ThermoFisher Scientific)上运行。所用引物列表参见表1。

表1：用于qPCR分析的引物列表。与图1-7有关。

表2：用于免疫荧光染色的抗体列表。与图1-7有关。

来源表

RNA测序和分析

前段前肠培养物和HEO的全转录组RNA测序(每个条件或时间点n＝3)是通过DNA测序和基因分型核心工具在Illumina Hi-Seq 2500平台上从分离的总RNA产生的Poly(A)和TruSeq文库进行。RNA测序参数是75bp单端测序，每个样品的深度为10M读取结果。获取每个样品的Fastq读取文件，然后使用2.1版的Computational Suite for Bioinformaticiansand Biologists(CSBB-v2.1，https://sourceforge.net/projects/csbb-v2-1/)进行比对。获得原始转录物计数和标准化转录物每百万分之一(TPM)值，并使用CSBB-v2.1分析差异表达和基因集富集分析(GSEA，Subramanian等，2005)。对于差异表达，统计学和生物学显著性设置为P<0.05，FDR<0.05，对数倍数变化>1，在6个样品中的3个中最少3个转录物计数。对于热图可视化和层次聚类分析，使用Morpheus(https://software.broadinstitute.org/morpheus/)。

使用HOMER，前段前肠转录组分析与来自GEO集的SOX2和SMAD1 ChIP-seq峰(GSE61475，Tsankov等，2015；GSE47058，Watanabe等，2014)进行相互对照，以获得其表达潜在地受到这些转录因子调控的基因的列表。距离任何特定基因的转录起始位点的峰截止距离设置为50kb。

将HEO分析与先前发表的关于体外产生的类器官(肠和胃)，EPC2培养物和来自ENCODE路线图项目的活检的RNA-seq样品进行比较，活检包括以下组织：皮肤，食道，小肠，胃，结肠和肺。为了将内部数据与公共数据进行比较，申请人使用了来自EDASEQ[http://bioconductor.org/packages/release/bioc/vignettes/EDAS eq/inst/doc/EDASeq.pdf]的Upper Quantile[泳道间标准化]。申请人使用了CSBB的[Computational Suite forBioinformaticians and Biologists]第3.0版[https://github.com/csbbcompbio/CSBB-v3.0]UpperQuantile模块。申请人生成了穿越内部和公共样品中的基因的表达矩阵，并使用CSBB-v3.0的UpperQuantile模块进行分位数标准化。然后，申请人log2转换R.Log2中的分位数标准化矩阵。

转化的矩阵用于所有下游分析。

申请人还对log2转换的分位数标准化矩阵使用SVA[https://bioconductor.org/packages/release/bioc/vignettes/sva/inst/do c/sva.pdf]，以检查是否存在任何潜在变量/替代变量以更正。申请人未找到要更正的替代变量。这种方法给予申请人信心，UpperQuantile标准化和之后的Log2转换足够稳健以从数据除去批次和测序影响。

定量和统计学分析

对于涉及球体模式化，类器官生长和筏实验的实验，“n”代表在每个实验中进行的重复的次数(在基质胶培养中，对每个重复收集1孔3-7个类器官或30-50个球体，来自1个孔的有机型筏培养物的所有样品被视为一次重复)。对于动物实验，“n”代表分析的胚胎数。所有数据定量均表示为平均值±SD。为了比较在球体模式化和类器官生长中测试的各种条件，在Microsoft Excel中使用具有不假设相等(即，不相等)的两尾分布的t检验，其中*p≤0.05，**p≤0.01，***p≤0.001，并且****p≤0.0001。

图1-7的定量和统计分析的细节

图1：对于1H，评估了来自两个实验的最少20个球体。对于所有qPCR结果，数据代表对于每个实验，n＝3个孔(每个孔中50-100个球体)的最少2个独立实验。在H1和iPS263.10细胞系中均重复RA实验。

图2：数据代表利用H1 hESC系的每个实验中，n＝3个孔(每孔平均30-50个球体)的2个独立实验。

图3：类器官的产生代表跨越4种hES和iPS细胞系的40+实验：H1，iPS65.8，iPS72.3，iPS263.10。qPCR数据代表n＝3个孔(每孔3-12个类器官)的2个独立实验，并与n＝5个患者活检样品进行了比较。

图4：对于HEO至器官型筏培养物实验，n＝2-4个孔；对于EdU实验，每个时间点为n＝6-10个类器官。n＝5个患者食道活检样品。实验在H1 hESC系中进行。

图5：对于Sox2-DE-LOF胚胎，在E9.5时每种基因型为n＝3个胚胎，在E11.5时每种基因型的每种分析类型为n＝2个胚胎。对于Sox2驱动的Sox2 cKO胚胎，分析了n＝3个胚胎的他莫昔芬给药的各个阶段和相应阶段收获的IF。

图6：来自人PSC衍生培养物的所有数据代表每个实验每个条件n＝3个孔的3个单独的实验。

数据和软件可用性

用于产生的数据的登录号是Gene Expression Omnibus(GEO)：GSE112886。这包括类器官生长比较(1个月相比于2个月的人食道类器官，图3)，以及背侧和腹侧前段前肠培养物中的SOX2敲低实验(图7和图14A-14D)。

SOX2和SMAD1 ChIP-seq峰的ChIP-seq数据下载自公众数据库GEO，登录号分别为GSE61475(Tsankov等，2015)和GSE47058(Watanabe等，2014)。活检和EPC2培养物的RNA-seq数据下载自公共数据库GEO。样品的登录号为：GSM1120313和GSM1120314(小肠)，GSM1010946和GSM1120308(肺)，GSM1120307和GSM11010960(胃)，GSM1120315和GSM1010974(大肠)，GSM1010956和GSM1120303(食道)，GSM2343841和GSM234564(小腿皮肤)，以及GSM1592609-GSM1592611(EPC2第0天培养物)。完整RNA-seq处理流程是使用ComputationalSuite for Bioinformaticians and Biologists第2.1版(CSBB-v2.1)完成，可从https://sourceforge.net/projects/csbb-v2-1/获得。

疾病状态

随着本文所述的人食道类器官模型的出现，申请人寻求将该系统应用于研究影响食道的各种疾病。申请人检查了Sox2在前段前肠的模式化和分离以及食道形成中的作用。尽管食道闭锁主要集中在食道和呼吸道的正确解决上，但其在人类患者中的后遗症远远超出了这个主要问题。这是因为食道闭锁的治疗方法是修复解剖缺陷的外科手术。然而，导致主要缺陷的潜在机制以及它们如何损害食道(和呼吸道)的正常发育尚未得到解决。在与食道闭锁相关的许多基因中，Sox2和范科尼贫血基因(FANCA)这两个基因在食道发育中的角色在本文中讨论。

先前的研究已经检查了Sox2在食道发育和体内稳态中的作用。在Sox2亚等位基因胚胎中，发生前肠分离的突变胚胎的食道具有改变的特性，包括复层鳞状上皮标志物p63和Krt14的表达的缺乏，以及胃和肠标志物的表达(Que等，2007)。然而，用Sox2在早期相比于晚期食道发育中的作用来解释这些结果具有挑战性，因为这些变化可能是突变前肠中的早期错误模式化的结果，而不是对Sox2驱动食道生长和成熟的持续要求。对成人食道的研究确实表明，Sox2在发育阶段后仍继续发挥作用。食道中表达Sox2的细胞对于维持体内稳态至关重要，在消融时，这导致食道中驻留的基底层和非典型细胞完全丧失(Arnold等，2011)。除了在成年食道中充当基底细胞的标志物外，食道中的Sox2过表达还导致了基底区室的扩大和上基底层的分化减少(Liu等，2013)。除食道外，Sox2在其他内胚层器官中也具有内稳态作用。在气管中，出生后Sox2的丧失导致增殖减少，基底(较少的p63+)、纤毛和Clara细胞的比例减少(Que等，2009)。然而，在成年胃中，尽管Sox2可具有肿瘤抑制作用，但它看起来对组织的内稳态是可有可无的(Sarkar等，2016)。尽管如此，Sox2在正在发育的食道中(前肠分离后)的作用尚待仔细检查，这可以为食道闭锁患者的其他问题提供洞见。

范科尼贫血是隐性疾病(对于任何特定的FANC互补组基因)，并且除其他GI缺陷外，还与食道闭锁有关，尽管这些GI问题仅在患者亚组中发生(即低渗透率)(Fausett和Klingensmith，2012)。一些患者没有严重的先天性缺陷，尽管许多患者具有跨多个器官系统的缺陷。在各种患者中，除了血液学问题外，出现的缺陷还与症状的VACTERL联合具有相似性，包括椎体，肛门，心脏，气管-食道，肾和四肢缺损(Auerbach，2009)。在所有导致范科尼贫血的FANC互补组基因中，最常见的是FANCA，FANCC和FANCG(Auerbach，2009；Nebert等，2016)。根据Shh突变体和Fanconi贫血的症状的相似性，有人认为Shh信号传导通路可能与Fanconi贫血有关(Lubinsky，2015)。然而，在范科尼贫血的某些病例中，对食道闭锁如何发展几乎一无所知。理解食道闭锁如何在范科尼贫血患者中发展的一个障碍是，范科尼贫血的小鼠模型并不重述大多数发育异常(Bakker等，2013)。因此，使用人类器官发育模型可以为理解范科尼贫血中各种GI畸形的发病机理提供突破。

除先天性疾病食道闭锁外，申请人还对影响食道的后期疾病感兴趣，例如巴雷特食道。巴雷特食道(或巴雷特化生)是食道的复层鳞状上皮转化为柱状(肠样)上皮的病状，其使患者容易患食道腺癌(DeJonge等，2014)。正在积极研究这种转化的基础机制，并且存在关于该异位柱状上皮的起源细胞的多种假设。其中更可能的模型包括食道细胞转化为肠样细胞，胃食道连接处的转变上皮的转化，以及粘膜下腺的转化(Jiang等，2017；Leedham等，2008；Wang等，2010)。

先前测试该假设的研究已经发现，酸和胆汁盐可能通过调节Cdx2启动子来上调培养的食道细胞中的Cdx1和Cdx2(Huo等，2010；Kazumori等，2006，2009；Liu等，2007)。此外，在培养物中，酸和胆汁盐导致复层鳞状上皮基因下调(Ghatak等，2013)。然而，单独的Cdx2诱导看起来不能完全转化食道细胞，尽管它可以导致某些复层鳞状上皮基因轻度下调，上调某些肠道基因(Muc2，Villin)，并轻度改变上皮形态(Kong等，2011；Liu等，2007)。单独或与Cdx2结合的BMP激活看起来对下调小鼠食道和培养的人食道细胞中的复层鳞状上皮基因具有更强的作用，尽管通过形态学或基因表达，这些改变距离完全转化为柱状上皮还很远(Mari等，2014)。其他信号传导通路，例如Wnt和Notch，可在暴露于胆汁酸的食道细胞中发生改变(Chen等，2012)。Notch抑制导致培养的食道细胞中的某些变化，包括复层鳞状上皮基因下调，柱状上皮基因上调，以及基底区室中的细胞间空间增加(Kasagi等，2018；Vega等，2014)。然而，从这些研究中，不清楚哪些信号传导通路对巴雷特化生的发病机理作出贡献，而不仅仅是作为所有其他形态学改变的结果而改变。因此，HEO可以允许在生物学上更相关的模型中对这些可疑信号传导通路进行快速组合筛选。

影响小儿和成年食道的另一种疾病是嗜酸性食道炎，它是一种慢性免疫介导疾病，其引起喂养困难或食物撞击，呕吐和腹痛。患病的食道发生了一些变化，包括由于纤维化和肌肉壁增厚而引起的食道狭窄，基底细胞增生，和上皮中的细胞间空间扩大，以及在食道上皮中高水平嗜酸性粒细胞的标志性发现(Furuta和Katzka，2015)。传统上认为，由于发炎的食道招募免疫细胞并进一步维持受损的屏障，因此受损的屏障和暴露于某些抗原引发和然后维持该疾病(Caldwell等，2017；Furuta和Katzka，2015)。

募集的2型辅助T细胞(和其他免疫细胞)分泌多种细胞因子，其引起在食道上皮和周围层中的广泛变化。在上皮中，IL-13上调eotaxin-3(或CCL26)，其是吸引嗜酸性粒细胞的趋化因子。除了CCL26和其他靶标炎症基因外，IL-13暴露还导致小鼠食道中的基底细胞增生，并下调分化的复层鳞状上皮标志物(例如FLG，IVL，SPRR蛋白家族)(Blanchard等，2010；Jiang等，2015；KC等，2015；Rochman等，2017)。用IL-13处理的食道角质形成细胞的气液界面培养物也显示出减少的上皮电阻(TEER)，证明屏障功能障碍(D'Mello等，2016；Davis等，2016；Wu等，2018)。

结果

Sox2在后期食道发育中的作用

为了检查Sox2在食道发育和成熟中的作用(食道与呼吸道分离后)，申请人利用与上一章相同的小鼠模型在Sox2表达细胞中有条件地敲除Sox2。申请人将雌性Sox2^fl/f小鼠与雄性Sox2^CreERT2/+小鼠交配，并在E11.5和E14.5时用他莫昔芬对母畜进行强饲，或在P1时给幼仔注射他莫昔芬，然后在强饲后几天将其收获以研究Sox2丧失在各个发育阶段的食道中的影响(图1A)。Sox2的早期丧失(在E11.5时强饲)导致在E14.5时延迟的分层，如通过条件型敲除的食道中最简单的柱状上皮与野生型相比所证实的，野生型在此阶段已分层为2层(图1B)。后期敲除Sox2(E14.5强饲)导致略微更小的食道，尽管分层看起来是正常的。最后，出生后早期敲除Sox2(P1)看起来对食道没有明显改变(图1B)。在前段前肠分离后敲除Sox2的这些胚胎中，食道中没有立即再表达Nkx2-1，尽管E11.5强饲的胚胎在E17.5时具有表达Nkx2-1的食道中的一些细胞(图1B，1E)。

因为最明显的变化仅发生在E11.5强饲胚胎中，因此申请人在E17.5时更仔细地观察了这些食道中的各种模式化和分化标志物。总体而言，食道上皮看起来较少折叠(在其自身)，并且具有较大的平均腔直径。除了Sox2的确证性丧失外，Sox2敲除食道的基底层看起来正常，其表达p63和Krt14而缺乏Krt8表达(图1C)。然而，上基底层明显改变：Krt13不存在而Krt8稳健表达。存在增殖性(Ki67+)阳性细胞，其在野生型食道中不存在；并且，上皮形态持续为柱状上皮(图1C-D)。然而，申请人没有发现Muc2或Muc5ac产生的证据，尽管进一步的未来分析(例如阿尔辛蓝染色)可揭示粘液产生(数据未显示)。除了在Sox2敲除食道中表达Nkx2-1的少数细胞外，其他关键肠和胃标志物不在野生型或Sox2敲除食道中表达(图1E)。除了Sox2在早期模式化中起到的关键作用外，这些数据还直接证明Sox2对于在食道与呼吸道分离后的恰当食道发育和成熟的必要性。

范科尼贫血和早期食道发育

除Sox2外，各种各样其他基因与食道闭锁相关，由这些基因中的一些的突变导致的前肠缺陷的机制尚不清楚。范科尼贫血互补组基因的丧失可导致具有可变外显率的多个问题，包括GI问题如闭锁(食道，十二指肠，肛门)，CNS缺陷，肾缺陷，和生长发育异常(Auerbach，2009；De Jong等，2010)。为了开始理解这些基因如何导致食道闭锁，申请人寻求使用HEO来对FANCA缺陷在食道发育中的作用建模。

申请人使用了从缺乏FANCA的患者产生的iPSC系，其可以使用dox诱导型FANCA构建体维护/拯救。该系可以如本文所述用或不用强力霉素处理成功地生成HEO(图2A)。在FANCA的低表达或缺失表达中，前肠模式化看起来没有改变(图2B)。在背侧前段前肠球体长出(2-4周)成HEO时，FANCA缺陷型类器官看起来始终小于“对照”/拯救的(+dox)类器官(图2C，2F)。然而，在1个月时，与对照HEO相比，FANCA缺陷型HEO具有增加的数量的KI67+细胞(图2D，2G)。在两种情况下，细胞死亡(通过切割Caspase 3染色)看起来没有差异(数据未显示)。另外，申请人在两种情况之间未发现复层鳞状上皮标志物的表达有显著差异(数据未显示)。为了确认类器官响应强力霉素处理并表达FANCA，当FANCA存在时，申请人探查了FANCA和FANCD2对羟基脲处理的响应。蛋白质印迹清楚地显示了在分别有或没有强力霉素处理下，FANCA的敲除和拯救，以及在强力霉素和羟基脲处理后FANCD2蛋白大小的变化(图2E)。

使用HEO对巴雷特食道建模

除了研究前肠和食道发育中的早期缺陷外，申请人还想将HEO应用于模拟影响食道的后期疾病，例如巴雷特化生。已经进行了许多工作来试图识别起源细胞并理解导致复层鳞状上皮转化为肠(柱状)上皮的机制。然而，由于在小鼠中精确建模人类病理过程方面的挑战，据信使用HEO模型可以作为理解巴雷特食道如何发育的补充方法。

申请人开始于聚焦前肠和食道的早期发育。申请人使用了在hPSC中稳定转导的dox诱导型CDX2构建体，其然后用于生成HEO(图3A-3B)。首先，以不同剂量用强力霉素处理前段前肠(AFG)培养物1天以计量在大多数细胞中诱导CDX2所需的浓度，其看起来在约100-500ng/mL饱和(图3C-3E)。有趣的是，SOX2表达没有被前段前肠细胞中CDX2的短暂(24小时)诱导抑制，这表明CDX2(单独)不直接抑制SOX2转录(图3C-3D)。

在HEO生长中第一个月的持续强力霉素处理导致HEO上调一些肠标志物，例如CDX1和CDH17，而MUC2保持不变(图3G-3J)。复层鳞状标志物p63被抑制，SOX2出现适度下调，这与第6天的前段前肠培养物的早期结果一致(图3D，3K-3L)。另外，复层鳞状标志物KRT5和KRT13在发育中的HEO中通过CDX2诱导未曾改变(数据未显示)。为了进一步检查这两个主要转录因子(前肠中的SOX2和后肠中的CDX2)之间的调控相互作用，申请人在人肠类器官(HIO)中诱导SOX2(图8A-8B)。在这些培养物中，申请人发现用SOX2处理HIO导致复层鳞状标志物p63和KRT13(轻度)上调，以及CDH17和CDX2下调(图8C-E，8G-8H)。在SOX2诱导的HIO中，还存在CLDN18(一种在胃中表达的标志物)的上调，尽管重要的是注意对照HIO中存在一些可变性(图8C，数据未显示)。PDX1是远端胃或近端肠标志物，趋向于被SOX2诱导下调，尽管其表达在对照HIO中也常常是可变的(图8F)。这些数据在一起，表明尽管SOX2发挥了较强的抑制中/后肠命运的作用，但单独的CDX2无法在早期发育过程中稳健地抑制前肠/食道命运。

为了确定当经典地认为可塑性逐渐受到限制时，CDX2的调节作用是否在以后的发育中(或在HEO方案中)持续存在，申请人将HEO生长至6周龄并用强力霉素处理8天(图4A)。在这种情况下，SOX2和p63响应于CDX2诱导而下调，尽管有一些HEO很低地响应和/或具有很低的CDX2诱导(图4B-4E，数据未显示)。由于CDX2诱导型系统的可变性，申请人选择了在细胞分辨率下的分析。申请人计数并将细胞分为3类：未诱导的，CDX2低(诱导的)，和CDX2高(诱导的)(图4F-4G)。将分析限制于基底细胞，SOX2和p63两者在CDX2高基底细胞中均被强烈抑制，而许多细胞可以共表达SOX2或在CDX2低基底细胞中p63与CDX2(图4H-4I)。这表明，如果所有细胞都以高水平表达CDX2，则这些关键食道转录因子会被有效抑制。

为了进一步检查CDX2在抑制食道(复层鳞状)上皮身份中的作用，申请人检查了具有CDX2诱导以及与Notch(γ-分泌酶)抑制剂DAPT联合的食道分化标志物(图5A)。食道中Notch信号传导的靶基因HES5在添加DAPT后下调(图5F)。KRT5被CDX2诱导下调，并被DAPT添加进一步下调，如通过一些完全丧失KRT5表达的类器官所证明(图5B，5H)。KRT13也被下调，尽管看起来没有与DAPT处理产生协同作用(图5C)。在有或没有DAPT处理的CDX2诱导的HEO中更多分化标志物IVL和CRNN被下调(图5D，5H)。最后，CDH17看起来被CDX2诱导适度上调，尽管很少发现具有可见CDH17蛋白表达的类器官(图5E，5H)。这表明CDX2能够抑制复层鳞状上皮标志物，而Notch抑制很少增加该作用。

因为BMP信号传导已经与食道向肠细胞的转化有关，所以申请人还检查了BMP信号传导在HEO中的作用(图9A)(Mari等，2014)。用BMP4处理6周龄HEO额外2周导致分化标志物的分层和表达的丧失(图9B，9G-9J)。其余基底细胞具有活跃的BMP信号传导(pSMAD1/5/9+)并表达p63，但丧失SOX2表达(图9B，9D-9E)。另外，有很少的EdU引入经BMP4处理的HEO中，意味着细胞更新速度显著减慢(图9B-9C)。尽管CDX2诱导导致BMP靶标ID1的下调，但在经BMP4处理的HEO中CDX2表达没有变化(图5G，数据未显示)。在一起，这表明BMP信号传导可通过抵消CDX2被诱导时BMP信号传导的减弱来增强复层鳞状上皮的下调。

使用HEO对嗜酸性食道炎建模

最后，申请人测试了HEO是否可用于对嗜酸性食道炎(影响食道的炎症性疾病)建模。申请人聚焦于对已知是在食道中引起广泛变化的细胞因子IL-13的上皮应答，以验证对嗜酸性食道炎建模中的HEO。申请人用IL-13处理6-8周龄HEO不同持续时间，并检查了HEO的多种性质(图6A)。首先，申请人验证了靶基因CCL26，CDH26，CAPN14和SERPINB4对短持续时间的IL-13处理的响应(图6B-6E)。IL-13的长期处理维持了某些靶基因SERPINB13和CDH26的上调(图6F)。除了这些靶基因的上调，EdU引入在最基底p63+细胞中增加，表明基底细胞在长期暴露于IL-13时更加增殖(图6G-6H)。

申请人随后观察了用IL-13处理后复层鳞状上皮的形态和分化。用IL-13处理过的HEO下调晚期分化和结构蛋白DSG1，IVL，和CRNN，虽然对照类器官在通过RNA表达这些分化标志物方面具有显著可变性(图7A-7D)。另外，上皮上基底地具有扩张的细胞间空间，并且使用电子显微镜观察，个体细胞之间的空间增加并且细胞与细胞的接触减少(图7A，7G)。这些数据表明，与其他模型系统相比，大多数情况下，HEO如所预期地响应IL-13处理。

最后，由于BMP信号传导也已经与嗜酸性食道炎有关，特别是在患病食道中BMP拮抗剂卵泡抑素被下调，因此申请人检查了BMP激活是否可以逆转该疾病过程的某些方面(Jiang等，2015)。然而，与IL-13诱导的小鼠食道不同，HEO不上调BMP拮抗剂NOG和FST(图7E-F)(Jiang等，2015)。这通过BMP靶基因ID3对IL-13(和BMP4)处理的温和增加而反映(图7L)。尽管如此，与仅IL-13相比，用IL-13和BMP4处理HEO后，SOX2和PTCH1的表达正常化回到对照(图7H，7K)。IL-13靶标CCL26和CDH26也在BMP4添加下下调(图7I-7J)。然而，复层鳞状标志物KRT5，KRT13，IVL，和CRNN没有在BMP4和IL-13的添加下与单独的IL-13处理相比一致地改变(数据未显示)。因此，BMP信号传导激活可以逆转或对抗由IL-13诱导的该疾病过程的某些方面。

该结果与先前公布的实验分享一些相似之处。与亚等位基因Sox2模型(其在整个胚胎发育中具有较低Sox2水平)形成对比，申请人能够仔细检查Sox2在食道发育中何时和对于哪些过程是必要的。因此申请人能够通过Krt14和p63的表达区分食道的基底层在敲除Sox2的中期胚胎(E11.5)中看起来是完整的，而在更早敲除(E8.5)或在亚等位基因Sox2胚胎中的食道具有这些蛋白的减少的表达/表达不存在(Que等，2007)。该结果可以是由于到后期Sox2敲除时，食道中p63表达的建立，然后单独的p63可以能够维持基底发育。全局Sox2亚等位基因与中期胚胎Sox2敲除之间的另一个区别是，后来的Sox2敲除食道看起来没有获得不同的组织身份(肠，胃，呼吸)，这表明食道命运到E11.5为止已经确定。有趣的是，该结果还表明，E11.5时的Sox2丧失导致基底层分化的丧失和增加的上基底增殖，其类似于Sox2如何可以抑制胃发育期间的增殖(Hagey等，2018)。Sox2的晚期胚胎或出生后早期敲除看起来对食道具有很小的影响，这表明Sox2可以不在成体食道中起主要作用，与气管相比更密切地类似于胃(Que等，2009；Sarkar等，2016)。因此，尽管食道命运可以通过中期胚胎发育设定，但结果证明，在前段前肠的初始模式化后持续的Sox2表达是恰当的食道分化和成熟所需的。然而，对更多小鼠以及损伤模型进行的长期研究可发现Sox2在晚期胚胎和出生后食道中的后期作用。

对于其他疾病：范科尼贫血，巴雷特食道和嗜酸性食道炎，申请人尝试使用HEO来对食道中的变化建模。在试图用HEO对范科尼贫血中的食道闭锁建模时，主要障碍是只有少数范科尼贫血患者有GI畸形。用于产生本研究中的iPS系的特定患者没有食道闭锁，虽然FANCA突变已经被关联到食道闭锁(Feng等，2018)。由于FANCA的丧失导致对DNA损伤的敏感性增加，因此申请人检查了细胞死亡(通过切割Caspase 3染色)，但没有发现差异(或更确切地说，在两种情况下均没有显著量的细胞死亡)，其可以被预期，因为申请人没有添加任何化疗剂。有趣的是，尽管FANCA缺陷型HEO的尺寸较小，但与对照HEO相比有更多的增殖性细胞，这与在培养物中的FANCA缺陷型皮肤角质形成细胞中发现的结果相似(Hoskins等，2009)。除了这种差异之外，申请人没有发现分化的变化。使用HEO建模食道闭锁的一个警告是，培养条件可以弥补或补充该缺陷，这可以绕过大多数疾病过程。此外，在1个月时间点的分析可能过晚，因为该缺陷可能在方案的更早阶段具有其大部分影响。

申请人接下来寻求使用HEO对巴雷特食道建模。在较老的HEO中，申请人发现CDX2诱导导致某些复层鳞状标志物下调，这与在食道角质形成细胞系(EPC2)中进行的类似实验中产生的很小变化(Mari等，2014)形成了对比。申请人的结果与CDX2诱导不能稳健上调肠基因相吻合，表明需要额外的因素，如通过在其他模型中使用DNA-甲基转移酶抑制剂所示(Kong等，2009，2011；Mari等，2014)。与以前使用器官型筏培养物的研究不同(Vega等，2014)，，Notch抑制看起来只是轻微地(或可忽略不计地)增加HEO中的这种转化。申请人类似地发现，BMP激活还下调了复层鳞状基因，尽管在我们的案例中，这可以是由干/祖细胞的细胞周期阻滞所介导(Mari等，2014)。

申请人还(分别)在HEO或HIO分化方案中诱导CDX2和SOX2，以检查调节命运之间的这种转换的转录网络。与小鼠中的研究一致，HIO中的SOX2诱导下调CDX2并上调各种各样前肠谱系的基因：p63，KRT13和CLDN18，尽管上皮仍然主要是柱状的(Kuzmichev等，2012)。有趣的是，在早期前肠培养物中的短暂CDX2诱导并不能直接调节/抑制SOX2表达，已经显示在早期内胚层中存在一些SOX2+CDX2+双阳性细胞(Sherwood等，2009)。然而，将培养物和CDX2诱导扩展到早期(或晚期)HEO导致SOX2和p63的抑制，这表明CDX2可改变下游靶标，其然后调节SOX2和p63。而且，与后来的CDX2诱导不同，早期开始CDX2诱导导致CDH17显著上调，这表明早期的一些可塑性在类器官成熟时丧失。因此，这表明食道上皮完全转化为肠上皮需要多种变化，反之亦然。或者，引起巴雷特食道中的化生的细胞可以不是复层鳞状上皮。

最后，可以使用HEO对嗜酸性食道炎的上皮变化进行建模。用IL-13处理HEO导致与使用IL-13处理的气液界面(ALI)食道培养物相似的响应，例如分化的复层鳞状上皮基因的下调(Blanchard等，2010；KC等，2015)。此外，在IL-13处理的HEO中增加的增殖可表明基底细胞增生的开始，尽管在HEO中，基底层的实际增厚难以评估且可不发生，因为在三维培养物中悬浮的类器官会能够自由扩展。与其他研究相似，尽管没有像在ALI培养物中那样通过测量跨上皮电阻(TEER)直接评估屏障功能，但可以观察到屏障功能障碍的迹象，包括细胞间空间增加和DSG1下调(D'Mello等，2016；Davis等，2016；Kasagi等，2018)。因此，看起来HEO预期地响应于IL-13处理。

对可能在嗜酸性食道炎中被误调节的各种各样信号传导通路进行了调查。在嗜酸性食道炎的人活检和IL-13在小鼠食道中表达异常的实验中，BMP信号传导减少，BMP拮抗剂卵泡抑素被上调(Jiang等，2015)。然而，申请人发现在用IL-13处理的HEO中，BMP拮抗剂和BMP激活有轻微但相反的变化。然而，有趣的是，IL-13处理的HEO中的BMP激活逆转了用单独IL-13处理的HEO中发生的一些变化，如通过SOX2下调和某些IL-13靶基因证明的。此外，使用PTCH1作为刺猬信号传导活性的读出，IL-13处理上调了PTCH1(Robbins等，2012)。刺猬信号传导的这种潜在增加可以与上皮的增殖增加和分化减少有关，这类似于对Ptch1突变型小鼠食道和食道鳞状细胞癌的研究(van Dop等，2012)。通过对这些选择的食道病理进行建模，申请人已证明，HEO可以用作补充模型以更好地理解这些以及，希望地，影响食道的其他疾病的机制。

材料和方法

小鼠

野生型和突变型小鼠用于前肠和食道发育的研究。Sox2^fl/fl小鼠从Richard Land的实验室获得(Shaham等，2009)，和Sox2^CreER(存储号#017593，Arnold等，2011)从TheJackson Labtory获得。在不同阶段用0.12mg/g小鼠的他莫昔芬对怀孕母畜进行强饲，以在适当的阶段激活CreER。根据美国国家卫生研究院关于实验动物的护理和使用指南，将小鼠安置在辛辛那提儿童医院医学中心(CCHMC)的动物设施中。将动物维持在12小时的明暗循环中，自由饮水和标准饲料。健康动物用于所有实验。所有实验均在CCHMC的机构动物护理和使用委员会(协议IACUC2016-0004)的批准下进行。

人ESC/IPSC和维护

人胚胎干细胞(hESC)系H1(WA01，雄性)购自WiCell。iPSC系iPS106是内部产生，并由CCHMC的机构审查委员会批准。所有hPSC维持在无饲养层培养基上：细胞铺板在hESC适格基质胶(BD Biosciences，圣何塞，加利福尼亚州)上，并维持在37℃、5％CO₂，每日更换mTeSR1培养基(STEMCELL Technologies，温哥华，加拿大)；使用Dispase(STEMCELLTechnologies)每4天常规传代细胞。通过首先将人SOX2 ORF，CDX2 ORF或FANCA ORF(分别)克隆到pINDUCER20中来生成HA标记的SOX2，CDX2或FANCA dox诱导型系(Addgene#44012，Meerbrey等，2011)。接下来，慢病毒是在CCHMC的病毒载体核心设施的帮助下产生。将用于HA-SOX2和CDX2的慢病毒与2μL病毒一起转入hESC；在选择mTeSR1和G418(500μg mL^-1，ThermoFisher Scientific)时维持这些系。用于FANCA的慢病毒是在iPS106系生成之前转导，因为维持hPSC特性需要FANCA。hESC H1系(和转导的衍生物)用于所有实验，除了在HEO中的范科尼贫血建模，其使用iPS106系。

前段前肠培养物和球体的分化

将融合的hPSC培养物用Acutase(STEMCELL Technologies)处理以作为单细胞重悬于mTeSR1和Y-27632(10μM，Tocris)中，并铺板在基质胶上。第二天，如先前所述进行分化为定形内胚层(McCracken等，2014)。简而言之，第一天在RPMI 1640培养基(LifeTechnologies)中用Activin A(100ng mL-1，R&D systems，明尼阿波利斯，明尼苏达州)和BMP4(50ng mL-1，R&D systems)处理细胞。随后两天的细胞仅用RPMI 1640中的Activin A(100ng mL-1)处理，伴随0.2％和2％的渐增浓度的HyClone限定胎牛血清(dFBS，GEHealthcare Life Sciences)。

对于从定形内胚层产生前段前肠球体，将细胞用Wnt3a(500ng mL-1，R&Dsystems)处理2天，并用在含有2％dFBS的RPMI 1640中的FGF4(500ng mL-1，R&D systems)，Noggin(200ng mL-1)处理3天。如上所述获得前段前肠球体的三维培养物和分化为人食道类器官。

免疫荧光分析

将组织培养物在室温下用4％多聚甲醛固定15分钟(对于单层培养物)，或在4℃下用4％多聚甲醛固定过夜(对于类器官)。将组织在PBS中彻底清洗并针对单层培养物染色，同时彻底清洗类器官，然后在30％的蔗糖中放置过夜，包埋在OCT化合物(VWR)中，并切片成8μm的厚度。然后将玻片用0.5％TritonX-100的PBS溶液渗透10分钟，在5％正常驴血清(Jackson ImmunoResearch)中封闭最少1小时，并在4℃下于一抗中孵育过夜。第二天，将载玻片在PBS中彻底清洗，在二抗(1:500)中孵育1小时，然后再次彻底清洗。对于EdU可视化，在封闭之前使用Click-iT EdU Alexa Fluor 488成像试剂盒(Invitrogen)。表1显示了所用的抗体和稀释液。

RNA分离和qPCR

整体收获单层培养物和类器官，包括铺板/嵌入基质胶。使用NucleoSpin RNA试剂盒(Macherey-Nagel)分离总RNA，并使用SuperScript VILO cDNA合成试剂盒(ThermoFisherScientific)反转录为cDNA。对于qRT-PCR，申请人使用Quantitect SYBR-Green预混液(Qiagen)，并将反应在QuantStudio 6机器(ThermoFisher Scientific)上运行。所用引物示于表2中。

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除非另有说明，所有百分比和比率均以重量计算。

除非另有说明，所有百分比和比率均基于总组合物计算。

应该理解的是，本说明书各处给出的每个最大数值限制包括每个较低的数值限制，如同这些较低的数值限制在本文中明确写出。本说明书各处给出的每个最小数值限制将包括每个更高的数值限制，如同这些更高的数值限制在本文中明确地写出。本说明书各处给出的每个数值范围将包括落入该较宽数值范围内的每个较窄数值范围，如同这些较窄数值范围均在本文中明确写出。

本文公开的尺寸和值不应理解为严格地限于所记载的精确数值。相反，除非另有说明，否则每个这样的尺寸旨在表示所记载的值和围绕该值的功能上等效的范围。例如，公开为“20mm”的尺寸旨在表示“约20mm”。

除非明确排除或以其他方式限制，否则本文引用的每个文件，包括任何交叉引用的或相关的专利或申请，均通过引用全文并入本文。引用任何文件并不意味着承认其是本文公开或要求保护的任何发明的现有技术，或者单独或与任何其他参考文献组合教导、启示或公开了任何这样的发明。此外，在本文档中术语的任何含义或定义与通过引用并入的文档中相同术语的任何含义或定义冲突的程度上，以在本文档中分配给该术语的含义或定义为准。

尽管已经示出和描述本发明的特定实施方式，但对于本领域技术人员显而易见的是，各种其它变化和修改可以在不脱离本发明的精神和范围的情况下做出。因此，意图在所附权利要求书中涵盖在本发明的范围内的所有这样的改变和修改。