一种菊花插穗常温保鲜剂及其应用
阅读说明：本技术 一种菊花插穗常温保鲜剂及其应用 (Normal-temperature preservative for chrysanthemum cutting and application thereof ) 是由 罗红辉 伍青 夏涵涵 谢浩然 林政伟 邱民得 李凌 王凤兰 周厚高 于 2021-08-25 设计创作，主要内容包括：本发明公开了一种菊花插穗常温保鲜剂,该保鲜剂包含如下组分：蔗糖21-40g/L,植酸0.7～2mg/L。本发明还公开了该保鲜剂作为菊花插穗常温保鲜剂的应用。蔗糖和植酸两种成分,既能有效保鲜又能促进菊花插穗在经储藏后扦插的生根能力,大大提高了耐储性,保证了成活率,在保证品质前提下,有效降低种苗储运过程损耗率及降低冷链物流成本,产生更高经济效益。(The invention discloses a normal-temperature preservative for chrysanthemum cutting slips, which comprises the following components: 21-40g/L of sucrose and 0.7-2 mg/L of phytic acid. The invention also discloses an application of the preservative as a normal-temperature preservative for chrysanthemum cutting slips. The two components of the sucrose and the phytic acid can effectively keep freshness and promote the rooting capacity of the chrysanthemum cutting after storage, greatly improve the storage resistance, ensure the survival rate, effectively reduce the loss rate of the seedling storage and transportation process and the cost of cold-chain logistics on the premise of ensuring the quality, and generate higher economic benefit.)
技术领域
本发明属于菊花生产与栽培领域，具体涉及植酸在促进菊花插穗常温储藏后扦插生根中的新应用。
背景技术
菊花(Chrysanthemum morifolium)是世界四大鲜切花之一，主要用于观赏，食用，茶用和药用，销量居世界前列。菊花为菊科菊属多年生宿根草本植物，原产于中国，然后引入日本，欧洲和北美等国家。菊花种苗生产是其产业链中重要环节之一，种苗质量直接影响菊花产业规模和经济效益。扦插是菊花专业化生产中最主要的育苗方式，然而实际生产过程中较难获得大量整齐一致的插穗，如何通过对前期适龄插穗进行保鲜进而获得大批整齐一致的插穗，从而根据定植时期安排扦插(王梅等，2015)，也是菊花生产的重要一环。目前我国菊花种苗生产商多以生产插穗种苗为主，在插穗种苗采收后，需要进行整理包装、预冷处理，其后承接冷链送往客户手中(薛建平等，2013)。中国幅员辽阔，随着菊花产业的蓬勃发展，很多插穗种苗自生产到实际运输到种植地，需经历较长较高温的储运过程，在高温环境下的长途运输过程中，菊花插穗种苗的损耗率较高，且在长途运输之后，菊花插穗种苗的生根能力也会受到不同程度的破坏。
目前国内外对于菊花插穗种苗采后研究极少，菊花种苗从成熟植株的顶芽采收，若不采取任何保鲜措施，种苗持续蒸腾失水，在储藏阶段有明显重量损失，储藏时间越长，呼吸作用消耗体内越多营养物质，细胞膜透性缓慢降低。生产实际中，对插穗预处理多采用多菌灵可湿粉剂的水溶液进行浸泡，储藏于4℃环境中。菊花种苗储藏于4℃环境中时，可保证种苗品质的储存时间为3周。储藏3周后重量损失急剧增大，成活率急剧下降(王梅等，2015)。施用适量氮素可以显著延长菊花种苗冷藏时间，改善种苗品质(刘新春，2013)。以上措施虽起到一定的保鲜、保质效果，但是冷链储运所用的成本大副增加。现有技术中的鲜花保鲜剂一般成分复杂，动辄十几种，二十几种化学试剂，不单操作繁琐，而且会对鲜花活性造成一定的损害。而且，目前国内对菊花插穗种苗进行实际储运时的温度一般都在常温甚至高温地区储运温度可达30度以上，极易表现出萎蔫和黄叶，影响其后续扦插生根及定植成花品质和商品价值。
因此，开发一种成分简单、既能在常温储运中对菊花插穗进行采后有效保鲜，还能保证其在储运后的扦插生根能力跟储运前一样的保鲜剂，具有很高的实用价值及经济价值。
植酸(phytic acid,环己六醇六磷酸二氢酯)是维生素B族的一种肌醇六磷酸酯,呈强酸性,并具有极强的螯合能力,是提取自谷物种子加工副产品中的一种天然物质。其生产成本低,原料资源丰富,安全无毒性、无污染,可用作抗氧化剂、发酵助剂等食品添加剂,并具有良好的保鲜效果,因而被大量用于食品工业,应用前景极为广阔(王健等，2015)。
发明内容
本发明的目的是提供一种常温下有效保鲜菊花插穗的保鲜剂配方，以提高菊花插穗的耐储性，进而保证经过长时间的储藏、运输后仍能保证菊花插穗扦插的高成活率。
本发明旨在解决上述技术问题，提供了一种菊花插穗常温保鲜剂。
本发明还提供了一种菊花插穗常温保鲜剂的用途。
为实现本发明的目的，本发明提供了一种菊花插穗常温保鲜剂，该保鲜剂包含以浓度含量计的如下组分：蔗糖21～40g/L，植酸0.7～2mg/L。
优选地，该保鲜剂包含以浓度含量计的如下组份：蔗糖25～35g/L、植酸1.0～1.5mg/L。
优选地，该保鲜剂包含以浓度含量计的如下组份：蔗糖30g/L、植酸1.5mg/L。
本发明还提供了一种菊花插穗常温保鲜剂作为菊花插穗保鲜的用途。
进一步地，包括将菊花插穗浸泡于权利要求1所述的菊花插穗常温保鲜剂的步骤。
优选地，所述菊花插穗摘取高度6-8cm，叶片5-7片，长势均匀一致。
进一步地，方法为：将菊花插穗浸泡于所述菊花插穗常温保鲜剂中，40～60分钟后取出晾干，简单包装后贮藏即可。
优选地，所述贮藏条件为避光，温度为20-30℃，湿度为80％-93％。
优选地，所述贮藏条件为避光，温度为25℃，湿度为90％
与现有技术相比，本发明的有益效果是：
本发明提供的菊花插穗化学保鲜剂配方，配方简单，只有蔗糖和植酸两种成分，既能有效保鲜又能促进菊花插穗在经储藏后扦插的生根能力，大大提高了耐储性，保证了成活率；而且保鲜处理方法操作简单，只需要短时浸泡、简易包装、80％-93％湿度环境就能实现在常温20-24℃或是高温25-30℃条件下有效保鲜，在保证品质前提下，有效降低种苗储运过程损耗率及降低冷链物流成本，产生更高经济效益。
实际生产过程中通过对前期适龄插穗进行保鲜，获得大批整齐一致的插穗，并用植酸促进和调控插穗生根时间，从而获得大批整齐一致的菊花苗，大大提高菊花产业规模和经济效益。
附图说明
图1为各处理组的菊花插穗保鲜效果外观对比图；
图2为常温储藏8天后菊花插穗的生根情况对比图；
具体实施方式
实施例1
本实施例比较试验的化学保鲜剂配方如表1所示。CK为对照组，即目前大部分菊花插穗在储运前不做任何保鲜处理；A组AgNO3水溶液为最常用的切花保鲜剂成分之一；B组蔗糖的水溶液提供储运期间插穗所需的基本养分；C组和D组均为含植酸成分的试验组；其中所用植酸固体试剂有效成分占90％(CAS:83-86-3)，购自上海麦克林生化科技有限公司(MACKLIN)，易溶于水。
1.保鲜剂配方溶液
表1 对比试验所用保鲜剂配方
2.插穗采后保鲜处理
摘取‘红日’菊花插穗，高度6-8cm，叶片5-7片，长势均匀一致；将插穗分别放入表1所述各种保鲜剂溶液浸泡45min，然后置于吸水纸上晾置，阴凉处晾干至插穗表面无水分残留。
3.储藏
上述处理后插穗置于25℃、90％湿度、黑暗环境的智能人工气候箱进行常温储藏8天，期间定期拍照观察和检测相应生理生化指标。
4.对上述浸泡处理后的菊花插穗进行评价，结果表明，储藏8天试验组C的菊花插穗外观品质依然良好，试验组D的菊花插穗外观品质相对较好，如图1所示。并对浸泡处理后的各组菊花插穗进行黄叶率统计，插穗失重率、插穗叶片相对电导率、叶绿素SPAD值进行检测，统计及检测结果如表2所示。
a.黄叶率(％)＝(有黄化叶子的插穗数×100)/插穗总数
b.插穗失重率
各处理菊花插穗样品各取3组(即3个重复)，每组30株插穗，称量各组插穗在储藏前的鲜重m0及各储藏天数的鲜重，取3个重复的平均值作为鲜重mx。通过公式：失重率(％)＝(m0-mx)×100/m0，计算失重率
c.插穗叶片相对电导率
取发育一致的菊花插穗叶片，定量取3份(即3个重复)，每份2g，剪成碎片，分别放置于3个三角瓶中，向其中各加入20mL去离子水，并让材料完全浸在水中。把三角瓶放在摇床上振荡3h(40～60次/min)后用电导率仪测定电导率，用R1表示；然后，将三角瓶转入沸水浴中煮15min，冷却至室温后测定总的电导率，用R2表示。叶片相对电导率(％)＝(R1×100)/R2。
d.叶绿素SPAD值
菊花插穗储藏第8天，取各组10片插穗植株中部叶片(即10个重复)，使用SPAD-502Plus叶绿素仪(Konica Minolta，日本)测量每片叶片的叶绿素SPAD值，取平均值得叶绿素相对含量。
表2 常温(25℃，湿度90％)储藏8天后相关生理生化指标测定
处理组
黄叶率
失重率
叶片相对电导率
叶绿素SPAD值
CK
90.6％
29.1％
50.3％
42.7
A
70.7％
24.8％
51.5％
46.3
B
68.8％
20.4％
49.7％
48.5
C
58.3％
10.3％
33.1％
49.7
D
63.9％
15.3％
38.2％
45.2
结果分析：从表2数据可知，常温储藏8天后，在5种保鲜剂处理中，含植酸的C和D试验组的插穗黄叶率分别为58.3％和63.9％，均明显低于对照CK组的90.6％黄叶率。C在失重率、叶片相对电导率、叶绿素SPAD值指标明显优于其他处理，说明C的保鲜剂配方浓度更适合‘红日’菊花插穗常温保鲜。此外，插穗外观的保鲜效果见图1。
5.扦插成活率统计
各处理组菊花插穗储藏8天后分别扦插于穴盘中，同时采用未经储藏的新鲜菊花插穗作为对比组，即表3中的CK组，穴盘使用湿润河沙作为基质，统一放置在25℃、16h昼/8h夜的生长环境中，每2天喷施“金雷”牌杀菌剂(成分：精甲霜锰锌)，生长15天后拔出插穗，对其生根情况进行统计，有明显肉眼可见根系即判定为成活。表3结果显示，优选的植酸保鲜剂处理并储藏后的插穗的扦插成活率都达到100％。
表3 常温储藏后插穗的生根情况统计(扦插15天后)
处理组
成活率
出根时间
单株生根数
单株根系总鲜重
单株平均根长
单株最长根长
CK
99.8％
第6天
20
0.0387g
5.05cm
6.97cm
A
88％
第10天
10
0.0115g
1.30cm
3.6cm
B
100％
第7天
22
0.0452g
5.02cm
7.27cm
C
100％
第5天
23
0.0480g
5.09cm
7.92cm
D
100％
第5.5天
22
0.0385g
5.07cm
7.75cm
6.生根情况统计
测量记录单株插穗的出根时间、生根数、根系总鲜重、平均根长和最长根长，每次取6株插穗分别进行测量记录并取平均值。表3结果显示，C组与D组的菊花插穗经常温储运后扦插生根能力与新鲜菊花插穗的扦插生根能力一样，甚至更快生根，生根效果更优。
C处理组插穗在常温储藏8天后进行扦插生根培养15天后的单株生根数、单株根系总鲜重、单株平均根长和单株最长根长均明显高于其他处理组，D处理组的效果次之，而A处理组的生根情况最差，说明Ag+可能对菊花插穗生根有抑制。此外，各处理组插穗的生根情况对比见图2。
实施例2
1.插穗采后保鲜处理
摘取菊花插穗，高度6-8cm，叶片5-7片，长势均匀一致；将插穗放入含21g/L蔗糖、0.7mg/L植酸的所述保鲜剂溶液浸泡40min，然后置于吸水纸上晾置，阴凉处晾干至插穗表面无水分残留。
3.储藏
将上述经保鲜剂溶液浸泡处理后的菊花插穗用多孔塑料袋或打孔自封袋进行简单包装后，置于20℃、90％湿度、黑暗环境的智能人工气候箱进行储藏。
4.对上述浸泡处理后的菊花插穗进行评价，结果表明，储藏8天的菊花插穗外观品质依然良好。并对试验所用的菊花插穗进行黄叶率统计，插穗失重率、插穗叶片相对电导率、叶绿素SPAD值进行检测。
a.黄叶率(％)＝(有黄化叶子的插穗数×100)/插穗总数，57.2％。
b.插穗失重率
取菊花插穗样品3组，每组30株插穗，称量菊花插穗在储藏前的鲜重m0及储藏第8天的鲜重mx。取3组平均值，通过公式：失重率(％)＝(m0-mx)×100/m0，计算得到失重率为12.0％。未经保鲜剂溶液浸泡处理的菊花插穗失重率为25.3％。
c.插穗叶片相对电导率
菊花插穗储藏第8天，取发育一致的菊花插穗叶片2g，剪成碎片，放置三角瓶中，加入20mL去离子水，并让材料完全浸在水中，把三角瓶放在摇床上振荡3h(40～60次/min)后用电导率仪测定电导率，用R1表示；然后，将三角瓶转入沸水浴中煮15min，冷却至室温后测定总的电导率，用R2表示。叶片相对电导率(％)＝(R1×100)/R2，计算得到相对电导率为32.6％。未经保鲜剂溶液浸泡处理的菊花插穗电导率为48.8％。
d.叶绿素SPAD值
菊花插穗储藏第8天，取10片插穗植株中部叶片，使用SPAD-502Plus叶绿素仪(Konica Minolta，日本)测量每片叶片的叶绿素SPAD值，取平均值得叶绿素SPAD值为49.4，未经保鲜剂溶液浸泡处理的菊花插穗叶绿素SPAD值为45.7。
5.扦插成活率统计
菊花插穗储藏8天后扦插于穴盘中，穴盘使用湿润河沙作为基质，统一放置在25℃、16h昼/8h夜的生长环境中，每2天喷施“金雷”牌杀菌剂(成分：精甲霜锰锌)。从第3天开始，每隔12小时随机抽选3株插穗观察是否已经生根，以肉眼可见为即判定为生根；生长15天后拔出全部插穗，对其生根情况进行统计，有明显肉眼可见根系即判定为成活。
本实施例菊花插穗扦插后第5.5天长出肉眼可见根，成活率100％。
实施例3
1.插穗采后保鲜处理
摘取菊花插穗，高度6-8cm，叶片5-7片，长势均匀一致；将插穗放入含40g/L蔗糖、1.8mg/L植酸的所述保鲜剂溶液浸泡40min，然后置于吸水纸上晾置，阴凉处晾干至插穗表面无水分残留。
3.储藏
将上述经保鲜剂溶液浸泡处理后的菊花插穗用多孔塑料袋或打孔自封袋进行简单包装后，置于25℃、80％湿度、黑暗环境的智能人工气候箱进行储藏。
4.对上述浸泡处理后的菊花插穗进行评价，结果表明，储藏8天的菊花插穗外观品质依然良好。并对试验所用的菊花插穗进行黄叶率统计，插穗失重率、插穗叶片相对电导率、叶绿素SPAD值进行检测。
a.黄叶率(％)＝(有黄化叶子的插穗数×100)/插穗总数，59.0％。
b.插穗失重率
取菊花插穗样品3组，每组30株插穗，称量菊花插穗在储藏前的鲜重m0及储藏第8天的鲜重mx。取3组平均值，通过公式：失重率(％)＝(m0-mx)×100/m0，计算得到失重率为16.4％。未经保鲜剂溶液浸泡处理的菊花插穗失重率为31.6％。
c.插穗叶片相对电导率
菊花插穗储藏第8天，取发育一致的菊花插穗叶片2g，剪成碎片，放置三角瓶中，加入20mL去离子水，并让材料完全浸在水中，把三角瓶放在摇床上振荡3h(40～60次/min)后用电导率仪测定电导率，用R1表示；然后，将三角瓶转入沸水浴中煮15min，冷却至室温后测定总的电导率，用R2表示。叶片相对电导率(％)＝(R1×100)/R2，计算得到相对电导率为34％。未经保鲜剂溶液浸泡处理的菊花插穗电导率为52.3％。
d.叶绿素SPAD值
菊花插穗储藏第8天，取10片插穗植株中部叶片，使用SPAD-502Plus叶绿素仪(Konica Minolta，日本)测量每片叶片的叶绿素SPAD值，取平均值得叶绿素SPAD值为48.0，未经保鲜剂溶液浸泡处理的菊花插穗叶绿素SPAD值为45.7。
5.扦插成活率统计
菊花插穗储藏8天后扦插于穴盘中，穴盘使用湿润河沙作为基质，统一放置在25℃、16h昼/8h夜的生长环境中，每2天喷施“金雷”牌杀菌剂(成分：精甲霜锰锌)。从第3天开始，每隔12小时随机抽选3株插穗观察是否已经生根，以肉眼可见为即判定为生根；生长15天后拔出全部插穗，对其生根情况进行统计，有明显肉眼可见根系即判定为成活。
本实施例菊花插穗扦插后第5天长出肉眼可见根，成活率100％。
实施例4
1.插穗采后保鲜处理
摘取菊花插穗，高度6-8cm，叶片5-7片，长势均匀一致；将插穗放入含25g/L蔗糖、2.0mg/L植酸的所述保鲜剂溶液浸泡50min，然后置于吸水纸上晾置，阴凉处晾干至插穗表面无水分残留。
3.储藏
将上述经保鲜剂溶液浸泡处理后的菊花插穗用多孔塑料袋或打孔自封袋进行简单包装后，置于30℃、93％湿度、黑暗环境的智能人工气候箱进行储藏。
4.对上述浸泡处理后的菊花插穗进行评价，结果表明，储藏8天的菊花插穗外观品质依然良好。并对试验所用的菊花插穗进行黄叶率统计，插穗失重率、插穗叶片相对电导率、叶绿素SPAD值进行检测。
a.黄叶率(％)＝(有黄化叶子的插穗数×100)/插穗总数，63.0％。
b.插穗失重率
取菊花插穗样品3组，每组30株插穗，称量菊花插穗在储藏前的鲜重m0及储藏第8天的鲜重mx。取3组平均值，通过公式：失重率(％)＝(m0-mx)×100/m0，计算得到失重率为17.2％。未经保鲜剂溶液浸泡处理的菊花插穗失重率为35.6％。
c.插穗叶片相对电导率
菊花插穗储藏第8天，取发育一致的菊花插穗叶片2g，剪成碎片，放置三角瓶中，加入20mL去离子水，并让材料完全浸在水中，把三角瓶放在摇床上振荡3h(40～60次/min)后用电导率仪测定电导率，用R1表示；然后，将三角瓶转入沸水浴中煮15min，冷却至室温后测定总的电导率，用R2表示。叶片相对电导率(％)＝(R1×100)/R2，计算得到相对电导率为36.5％。未经保鲜剂溶液浸泡处理的菊花插穗电导率为54.5％。
d.叶绿素SPAD值
菊花插穗储藏第8天，取10片插穗植株中部叶片，使用SPAD-502Plus叶绿素仪(Konica Minolta，日本)测量每片叶片的叶绿素SPAD值，取平均值得叶绿素SPAD值为48.8，未经保鲜剂溶液浸泡处理的菊花插穗叶绿素SPAD值为45.2。
5.扦插成活率统计
菊花插穗储藏8天后扦插于穴盘中，穴盘使用湿润河沙作为基质，统一放置在25℃、16h昼/8h夜的生长环境中，每2天喷施“金雷”牌杀菌剂(成分：精甲霜锰锌)。从第3天开始，每隔12小时随机抽选3株插穗观察是否已经生根，以肉眼可见为即判定为生根；生长15天后拔出全部插穗，对其生根情况进行统计，有明显肉眼可见根系即判定为成活。
本实施例菊花插穗扦插后第4.5天长出肉眼可见根，成活率100％。
实施例5
1.插穗采后保鲜处理
摘取菊花插穗，高度6-8cm，叶片5-7片，长势均匀一致；将插穗放入含30g/L蔗糖、1.0mg/L植酸的所述保鲜剂溶液浸泡50min，然后置于吸水纸上晾置，阴凉处晾干至插穗表面无水分残留。
3.储藏
将上述经保鲜剂溶液浸泡处理后的菊花插穗用多孔塑料袋或打孔自封袋进行简单包装后，置于25℃、90％湿度、黑暗环境的智能人工气候箱进行储藏。
4.对上述浸泡处理后的菊花插穗进行评价，结果表明，储藏8天的菊花插穗外观品质依然良好。并对试验所用的菊花插穗进行黄叶率统计，插穗失重率、插穗叶片相对电导率、叶绿素SPAD值进行检测。
a.黄叶率(％)＝(有黄化叶子的插穗数×100)/插穗总数，58.9％。
b.插穗失重率
取菊花插穗样品3组，每组30株插穗，称量菊花插穗在储藏前的鲜重m0及储藏第8天的鲜重mx。取3组平均值，通过公式：失重率(％)＝(m0-mx)×100/m0，计算得到失重率为14.7％。未经保鲜剂溶液浸泡处理的菊花插穗失重率为30.6％。
c.插穗叶片相对电导率
菊花插穗储藏第8天，取发育一致的菊花插穗叶片2g，剪成碎片，放置三角瓶中，加入20mL去离子水，并让材料完全浸在水中，把三角瓶放在摇床上振荡3h(40～60次/min)后用电导率仪测定电导率，用R1表示；然后，将三角瓶转入沸水浴中煮15min，冷却至室温后测定总的电导率，用R2表示。叶片相对电导率(％)＝(R1×100)/R2，计算得到相对电导率为35.7％。未经保鲜剂溶液浸泡处理的菊花插穗电导率为50.5％。
d.叶绿素SPAD值
菊花插穗储藏第8天，取10片插穗植株中部叶片，使用SPAD-502Plus叶绿素仪(Konica Minolta，日本)测量每片叶片的叶绿素SPAD值，取平均值得叶绿素SPAD值为49.2，未经保鲜剂溶液浸泡处理的菊花插穗叶绿素SPAD值为42.4。
5.扦插成活率统计
菊花插穗储藏8天后扦插于穴盘中，穴盘使用湿润河沙作为基质，统一放置在25℃、16h昼/8h夜的生长环境中，每2天喷施“金雷”牌杀菌剂(成分：精甲霜锰锌)。从第3天开始，每隔12小时随机抽选3株插穗观察是否已经生根，以肉眼可见为即判定为生根；生长15天后拔出全部插穗，对其生根情况进行统计，有明显肉眼可见根系即判定为成活。
本实施例菊花插穗扦插后第5.5天长出肉眼可见根，成活率100％。
实施例6
1.插穗采后保鲜处理
摘取菊花插穗，高度6-8cm，叶片5-7片，长势均匀一致；将插穗放入含20g/L蔗糖、2.0mg/L植酸的所述保鲜剂溶液浸泡40min，然后置于吸水纸上晾置，阴凉处晾干至插穗表面无水分残留。
3.储藏
将上述经保鲜剂溶液浸泡处理后的菊花插穗用多孔塑料袋或打孔自封袋进行简单包装后，置于30℃、88％湿度、黑暗环境的智能人工气候箱进行储藏。
4.对上述浸泡处理后的菊花插穗进行评价，结果表明，储藏8天的菊花插穗外观品质依然良好。并对试验所用的菊花插穗进行黄叶率统计，插穗失重率、插穗叶片相对电导率、叶绿素SPAD值进行检测。
a.黄叶率(％)＝(有黄化叶子的插穗数×100)/插穗总数，67.0％
b.插穗失重率
取菊花插穗样品3组，每组30株插穗，称量菊花插穗在储藏前的鲜重m0及储藏第8天的鲜重mx。取3组平均值，通过公式：失重率(％)＝(m0-mx)×100/m0，计算得到失重率为17.7％。未经保鲜剂溶液浸泡处理的菊花插穗失重率为32.8％。
c.插穗叶片相对电导率
菊花插穗储藏第8天，取发育一致的菊花插穗叶片2g，剪成碎片，放置三角瓶中，加入20mL去离子水，并让材料完全浸在水中，把三角瓶放在摇床上振荡3h(40～60次/min)后用电导率仪测定电导率，用R1表示；然后，将三角瓶转入沸水浴中煮15min，冷却至室温后测定总的电导率，用R2表示。叶片相对电导率(％)＝(R1×100)/R2，计算得到相对电导率为37.2％。未经保鲜剂溶液浸泡处理的菊花插穗电导率为54.3％。
d.叶绿素SPAD值
菊花插穗储藏第8天，取10片插穗植株中部叶片，使用SPAD-502Plus叶绿素仪(Konica Minolta，日本)测量每片叶片的叶绿素SPAD值，取平均值得叶绿素SPAD值为48.5，未经保鲜剂溶液浸泡处理的菊花插穗叶绿素SPAD值为41.0。
5.扦插成活率统计
菊花插穗储藏8天后扦插于穴盘中，穴盘使用湿润河沙作为基质，统一放置在25℃、16h昼/8h夜的生长环境中，每2天喷施“金雷”牌杀菌剂(成分：精甲霜锰锌)。从第3天开始，每隔12小时随机抽选3株插穗观察是否已经生根，以肉眼可见为即判定为生根；生长15天后拔出全部插穗，对其生根情况进行统计，有明显肉眼可见根系即判定为成活。
本实施例菊花插穗扦插后第4.5天长出肉眼可见根，成活率100％。
上述实施例为本发明较佳的实施方式，但本发明的实施方式并不受上述实施例的限制，其他的任何未背离本发明的精神实质与原理下所作的改变、修饰、替代、组合、简化，均应为等效的置换方式，都包含在本发明的保护范围之内。
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