具体实施方式

1、病例纳入和家系样本收集

纳入夫妻双方同时携带致病基因突变和染色体结构异常(夫妻双方均为染色体结构异常的概率很低，一般为夫妻一方)携带的病例，病例夫妇双方的父母分别进行致病基因突变和染色体核型分析，以明确该病例夫妇双方致病基因突变和染色体结构异常的来源，即明确为新发变异或家系遗传。收集夫妻双方及夫妻双方各自父母的外周血样本，构建基本家系，为构建分析模型奠定基础。在患者父母样本已经无法获得(如去逝)的情况下，可采集患者兄弟姐妹的外周血替代，但不建议采集除父母和兄弟姐妹以外的亲属样本。

2、胚胎检测分析模型的构建

(1)三种家系单体型分析模型

对家系样本使用全基因组SNP芯片进行SNP分型，定义信息SNP(informative SNP)选择标准，将家系信息SNP遗传标记进行家系单体型连锁分析，通过单体型分析区分患者等位基因或同源染色体的两条单体型，通过连锁分析明确携带致病基因和非携带致病基因的单体型，同时明确结构异常染色体的单体型和结构正常染色体的单体型，构建胚胎检测分析模型。

单体型分析区域大小的选择：在分析断裂点区域时，要满足有足够的遗传标记用于结构异常断裂点区域的连锁分析；在分析整条染色体单体型时，注意识别生殖细胞减数分类过程中发生的同源重组情况，避免由于同源重组引起的误诊。同时注意遗传标记分布的均匀性，保证分析的区域存在有效的遗传标记。

根据不同的参照样本，可以构建不同的分析模型，不同的分析模型对信息SNP选择标准不同，以下提供三种不同的分析模型。基于孟德尔遗传定律判断每个有效信息SNP的染色体来源，并根据参照样本的基因型确定同相(in phase)与异相(out of phase)(在每个有效位点，根据每个胚胎遗传自染色体异常和/或致病基因携带者的染色体是否与参照亲属/子代的染色体相同，如果相同，则为同相；如果不相同，则为异相)。

(1-A)当以携带致病基因或染色体结构异常的父母一方作为参照时，要求同时满 足在患者中为杂合，在患者配偶及参照中为纯合的SNPs；(1-B)当以不携带致病基因或染色 体正常的父母一方作为参照时，要求同时满足在患者中为杂合，在患者配偶及参照中为纯 合的SNPs。如下表所示，男方为携带者，以男方父亲或男方母亲为参照亲属，有效位点信息如下表。(若女方为携带者，以女方父亲或母亲为参考，原理类似。)A代表一条染色体上致病基因或染色体的某SNP型，B代表另外一条同源染色体上A的相对应的等位基因型。

(1-C)当以携带致病基因的子代或染色体异常的胚胎作为参照时，要求同时满足 在患者中为杂合，在患者配偶中为纯合的SNPs；如男方为携带者，以不平衡胚胎或子代为参考，有效位点信息如下表。(若女方为携带者，原理类似。)

(2)单体型辅助CNV分析：分别使用不同的颜色代表不同的单体型

1)重复区段-来自两条染色体：如果重复来自母亲的同源染色体或父亲的同源染色体，则该区段中的有效位点交叉分布在同源染色体上，导致分型结果出现混合的两种颜色。若重复来源于母亲，体现为母亲的分型结果颜色交叉分布；同样，若来源于父亲，体现为父亲的分型结果颜色交叉分布。

2)重复区段-来自一条染色体的两个拷贝：如果重复来自母亲或父亲的一条链的多个拷贝，则该区段中的有效位点不变，颜色分布不变。

3)缺失区段：假设缺失来源于母亲链，若以子代为参考，则该区段中父源有效位点(父亲为AB)不变，父亲链的颜色分布不变；母源有效位点(母亲为AB)无效，体现为母亲链的颜色交叉分布。若以女方父母为参考，由于母源有效位点无效，则该区段中体现为无点。

4)嵌合缺失与嵌合重复：虽然嵌合缺失与嵌合重复导致位点的BAF分布趋势与常规不同，但低比例的嵌合改变不了基因型，所以嵌合区段的单体型颜色分布没有异常。

此外，当父母外周血染色体核型均为正常时，染色体结构异常为新发变异，此时只能选取不平衡胚胎作为参照建立家系(如上述(1-B))；当父母一方外周血染色体核型为相同的结构异常时，染色体结构异常为遗传性，其父母(如上述(1-A))和不平衡胚胎(如上述(1-B))均可作为参照建立家系。

3、胚胎植入前遗传学筛查

(1)通过促排卵，对体外正常授精的胚胎在显微镜下进行活检取得胚胎外胚层细胞，在进行全基因组扩增后使用相同SNP基因芯片对样本进行植入前遗传学检测，通过SNP等位基因频率进行染色体非整倍体的检测，即挑选整倍体胚胎，且该方法可以检测出胚胎的三倍体和单亲二倍体(Uniparental Disomy,UPD)；同时利用胚胎检测分析模型，通过识别胚胎致病基因附近的单体型信息，对待测胚胎致病基因的基因型进行诊断；同时通过识别胚胎重排断裂点附近的单体型信息，对待测胚胎进行染色体结构异常和结构正常的区分。

(2)分别以结构异常染色体的两个断裂点区域的单体型分析胚胎染色体状况，比较两个不同染色体断裂点区域单体型检测结果的一致性。

(3)探讨分别使用(1-A)与病例具有相同携带致病基因或染色体结构异常的父母、(1-B)非携带致病基因或染色体结构异常的父母、(1-C)携带致病基因的子代或染色体异常的胚胎进行分析模型构建时，比较在不同参照样本下构建的模型对胚胎检测结果的一致性。

4、胚胎移植随访、模型有效性的验证

在已经完成检测的胚胎对移植后，进行随访，对孕中期的孕妇进行胎儿羊水穿刺产前诊断，确认胎儿羊水细胞的致病突变基因型和染色体核型，对检测分析模型的有效性进行评估。同时随访至胎儿出生后，对胎儿的重要生理指标进行监测记录。

若无特殊说明，本发明中使用的具体技术手段均为本领域技术人员所能够掌握的常规技术手段。本发明实施例并不作为对本发明实施的具体限制。

实施例1：囊胚培养、活检及全基因组扩增方法

在患者经促排卵、胞浆内单精子注射及囊胚活检后，将活检细胞置于装有碱性变性缓冲液(KOH)的PCR管中进行细胞裂解，然后进行全基因组扩增，囊胚培养、活检采用临床常规方法进行。将由pg级别的基因组DNA至少扩增成为ng级别以进行后续实验。用荧光PCR和毛细管电泳检验DNA扩增效率，流程详见图1。

(一)MDA法单细胞全基因组扩增

1、准备两个0.2mL进口EP管，分别加入2.5μL和4μL水，作为体积对照管备用。

2、将样本离心1min，检查液体体积，与对照管进行比对，拍照保存将比对结果记录在册，做到样本体积可追溯。

3、如果样本体积少于4μL，使用PBS补足到4μL；若样本体积大于4μL，需及时上报，待确认可继续实验后，再进行MDA扩增。

4、准备Buffer D2(下表给出的Buffer D2体积足够12个反应，一次实验未完全用完可储存于-20℃，但储存时间不能超过3个月)。

5、在每个样本管中加入3μL Buffer D2，轻弹管壁混匀并短暂离心收集于管底，离心结束的样品管放入PCR冰盒中。

注意：请确保管内液体没有粘附在管壁上，请勿使用移液器吹打，避免细胞样本粘附到移液器的吸头上。

6、打开PCR仪，设置PCR程序如下：65℃10min；4℃hold(热盖温度：105℃)。

7、把样本管放置在PCR仪中进行裂解反应，PCR反应结束后，迅速加入3μL StopSolution，轻弹管壁混匀并短暂离心。下步反应混合液准备好之前请将样本置于冰盒上。

8、准备反应混合液：

9、立即将40μL反应混合液加入到准备好的10μL DNA样本中(第4.2.7步)，充分振荡混匀并短暂离心收集。

10、把上述样本放入到PCR仪内，进行单细胞扩增反应，PCR程序如下：

30℃59min59s 8cycles；65℃3min；4℃Hold(热盖温度：70℃)

11、扩增产物-20℃保存备用。

(二)扩增产物浓度测定

1、用Qubit定量：MDA扩增产物无核酸酶水稀释10倍后进行浓度测定。

2、浓度质检合格要求：所有样本测定后浓度≥300ng/μL。若浓度低于此范围，则不进行后续实验。

(三)MDA扩增产物质检

1、实验前准备

1)个人防护：根据实验室安全防护相关程序内容，更换实验服、戴帽子、口罩、鞋套进入实验室。

2)紫外消毒：打开超净工作台内的紫外灯，杀菌30min，关闭紫外灯，打开风机，3级风，通风10min。

3)打印相关材料：实验操作记录单、条码等。

4)仪器准备：检查设备是否正常，包括掌上三管离心机，微量台式离心机，qPCR仪等。

5)试剂准备：包括qPCR试剂，无核酸酶水，检查试剂盒中各组分是否齐全完好且在效期内，并放置冰盒上溶解备用。

6)耗材准备：包括各种规格滤芯吸头，1.5mL进口EP管，2mL进口EP管，QPCR专用八连管及管盖，双面板，冰盒。

7)样本准备：核实样本姓名与编号是否一致，核实一致后将样本放置冰盒上备用。

2、引物准备

质检引物设计时，考虑到单细胞扩增产物完整性及不同扩增子扩增效率存在差异，尽量满足扩增产物分布在不同的染色体上，且扩增产物长度有不同。

具体引物对应扩增产物DNA序列如下：

MQ1：

GCCTGCCCAGACCTAGTAATTGCTGTAGTCTTTTCCTTTTGGATTCCTAGCAGTGGATGCTTGAATACAAATACCAAGTGGGCTCCAGCCAGTGAGGGTAATAGTGTACAGCAGTAAACTGTCTGTTAGCTGATGCTTACATTTCAGACAAATTGAGGAGGTTGTCAAAGGCATTAGCTTCTATCCTTTCCAGGGAATCAATCTGAGAGATTTCACTAGGGAAGAGAGGAGGGGGAAAAAGAGAAAGAAACATGAAAGAAATGACCGTGTCTGCATGATTATGAGCTATGTGTGTGACCCAACAACTGGGGACACCACTGTGTCCCCCTGAAAAGAACAAAGATGTGCAAGTTGTCCCCAAATCATACAGTGCTAACATCTCCCTTTAGGAGCACTGATGGGCA

MQ2：

TTGGAGGAAGCAGATAACATTGCTAGTATCCCACTTGAACCTGGAAAAGAGCAGCAACTAAAAGAAAAGCTTGAGCAAGTCAAGGTAATTTTATTTTCTCAAATCCCCCAGGGCCTGCTTGCATAAAGAAGTATATGAATCTATTTTTTAATTCAATCATTGGTTTTCTGCCCATTAGGTTATTCA

MQ3：

TTTCGACATGGAGGCCACTGGCTTGCCCTTCTCCCAGCCCAAGGTCACGGAGCTGTGCCTGCTGGCTGTCCACAGATGTGCCCTGGAGAGCCCCCCCACCTCTCAGGGGCCACCTCCCACAGTTCCTCCACCACCGCGTGTGGTAGACAAGCTCTCCCTGTGTGTGGCTCCGGGGAAGGCCTGCAGCCCTGCAGCCAGCGAGATCACAGGTCTGAGCACAGCTGTGCTGGCAGCGCATGGGCGTCAATGTTTTGATGACAACCTGGCCAACCTGCTCCTAGCCTTCCTGCGGCGCCAGCCACAGCCCTGGTGCCTGGTGGCACACAATGGTGACCGCTACGACTTCCCCCTGCTCCAAGCAGAGCTGGCTATGCTGGGCCTCACCAGTGCTCTGGATGGTGCCTTCTGTGTGGATAGCATCACTGCGCTGAAGGCCCTGGAGCGAGCAAGCAGCCCCTCAGAACACGGCCCAAGGAAGAGCTATAGCCTAGGCAGCATCTACACTCGCCTGTATGGGCAGTCCCCTCCAGACTCGCACACGGCTGAGGGTGATGTCCTGGCCCTGCTCAGCATCTGTCAGTGGAGACCACAGGCCCTGCTGCGGTGGGTGGATGCTCACGCCAGGCCTTTCGGCACCATCAGGCCCATGTATGGGGTCACAGCCTCTGCTAGGACCAAGCCAAGACCATCTGCTGTCACAACCACTGCACACCTGGCCACAACCAGGAACACTAGTCCCAGCCT

MQ4：

GGGTTGTCCCCTGGATATAGGAGGGGTGAGGTGGGTCAGAGGGTGCCGGGAGGGGCCTGGATCAGCACTTCAAAAGGTGGGTGCCCGCCACCCAGGGGTGGCCCCAAGGAGAGGAGAGGAGCTGGCCATGTGCAGAGATGGGGCCCTGTGATGCAGACACACCTCGGTACCAGTTGCGCAGGGAGGTCATGACGAAGAAGCGGATGGCCTGGTTCGAGCCCTGCTTCAGGACAGTGGCTGTGAGGCCCTGGTACGTCCCCTTCAGCCCTGCGGGAAGGCAGGCACGGGGTTACCCTGCAGCCTCTCAGGCCCCGGTTGGGAATTGGTGTGTGTGGGGGGTGGGTGTTGCACAAAGCCCAAGGCAGGATGGGAGGTGCAGGCCCTTCCCACCCTGGCCCAGGTCCCTGAGCCCTATCAGGAAGGTCGAGTGGCTCACCTTGTTCCCGCACAATCTCCCTAACCCCGTGGAAGAATCCTCTGTACTTGGGGTTTGGGGAGGTCTGGTCGTGGATGAACTT

MQ5：

TCAAGTTTCCTCTCACCTTTATTCTACTTCCTCATTAACAAGTCATCGGTTTGATACATTAATCATGGCAAAAAAATCACAGAGGAAGCACTAATCTGTCATTTTTTTCTGTGACCTGCAGACTCTTTGACACCCGGTACAGCATCCGGGAGAATGGGCAGCTCCTCACCATCCTGAGTGTGGAAGACAGTGATGATGGC

MQ6：

GCGATCGATGCAGTGGACATGGTACTCATGGGAACAAGGTAGTTTACGAAGTTTGTTGCCTTCTGTATATTCTGTAATGCAAACACTACAGGTTTTTAATGCATCATTTTCACCAAAACTTCTCATTGCCAAGTTGTCAATCTGTTCTTTGGTGAGTCCTCTAGGTTGGTCATCATCATCCTCATTTAAGAGGAAAAACTGAGCCAGGCTAAGGAAGGGCAAAGAGCCACTTTCATCAAATGTGACTGGGGCCCTATGTCGACCCTCTCGCCTGGCACCTGATGAGCCTGATGATGAGCTTCCTTCATTACTGCCTTCAAATAAATCTGAGCTAGTTTCTGAACTTTCACCACCGGAACTGGAACTAGGACTGGAACTGGAACTTGAACTGGAACTGGAACTCGAACTGGAACTGGAACTCGAACTGGAACCAGAACTACTACCACCACCAGAACCTCCTCTTCCACTCCGTGACTCTGCCCTTTCCATATTTCGATTTGAGACTGAGCCAGTAGGCTCTGAGTCGCTATCACTGTACATAAAATAGCTTAACTCACCAAAACCTGTCATTATCTGCCTTAACATGGTCTGAATTGCAACAGATGTAGTCTCACTTAAACCAGTATTTAAGATTCTACGAATGGGAATTCTGATGGTACT

MQ7：

CTCAAGACGTGGAGGCATCTGGGCTTAGCTGAGGTCACACTACTAGTGGGACCTACAGAAAAACCCAGGTGTGTCACCAGCAGGGCGGGCACCATCTCTGCAGCCGACACCAGCTTCCCCAACCTCCAGACAGGAGAAAGCATGAGGGTCCCCACTGAAATTCTGGCTCACAGAGTCACCTCCTATGCTGTGGCTTTTTTCAATCCCAGAGTTTGTCCAGCGAGGCAAAGACCTGGTCACGGCGTCTCTGGCTCACCAGGTGGAGGGAACGGCAAAACTCACGCTGGCCCAAGAGGAGGAACAGAGAAGCTTCCTGGCTGAGGCCCAGCCGACTGCTGACCCGGAAAAGTTTCTCGAGGTGACTCACATCCCCAGCCTCTGCACATGTGGGTGAGCCAGTTGTAGCTCTGTTCCCGTGACTGAGCACGGGACGCCGGAGGTATTCATCAGGCATGAGGTTATCTGCCTACTTCCCATGTGTCAG

MQ8：

GTGCTCCAGATCTGATGGAACTGAGCCGGCCTGGGGCTGGGTGGGCCTGAGGGGTGGTGGGGCTCACCGGATGGTGCCGCTGAAGAGGACGGGGTCCTGCAGGATGATGGAGAGGCGTGAGCGCAGGGTGTGCAGCGGCAGTTTGGCGATGTCAATGCCATCAATGATGATGTGCCCTGCATGG

1)将8对引物干粉12,000rpm离心1min，加无核酸酶水稀释至100μM母液，-20℃长期保存；使用时取少量母液稀释至2μM的工作液，-20℃保存备用。

2)引物选择：一般情况下使用全部8对或部分引物进行MDA扩增产物进行质检验证，验证覆盖全面、可信度高。

3、模板准备

1)MDA扩增产物：将定量后符合要求的MDA扩增产物用无核酸酶水稀释10倍，作为QPCR反应模板。

2)阳性质控：混合的人外周血或人细胞系基因组DNA，浓度≈50ng/μL。

3)阴性质控：无核酸酶水。

4、配置PCR反应体系

下表为qPCR反应体系。

5、PCR循环参数如下表所示

6、结果分析

1)判断标注：

a.阳性结果：扩增产物熔解峰单一尖锐，Tm值预期范围固定；扩增曲线成典型S型，且一般Ct值≤28(不能>30)。

即同时满足4个条件(熔解峰单一尖锐、Tm值范围固定、S型曲线、Ct值≤28)则为阳性；若其中有条件不满足(尤其Ct值和熔解峰型)，则为阴性或弱阳性。

b.阴性结果：扩增产物熔解峰多个，或无单一尖锐主峰，Tm值不在预期范围；扩增曲线不成典型S型，一般Ct值>30。

即上述4个条件存在任何一个，则为阴性或弱阳性；尤其是Ct值>30必为阴性、熔解峰多个且无主峰必为阴性。

2)结果分析流程：

a.按照“判定标准”原则，首先分析阳性质控和阴性质控，确保阳性质控结果为阳性，阴性质控结果为阴性。若阴阳性质控结果不正确，说明操作不当或试剂质量有问题，需排除原因重新验证。

b.在阴阳性质控结果正确无误后分析MDA扩增产物，按照“判定标准”原则，对比阳性、阴性结果，逐一分析每个MDA扩增产物。

c.分析结果整理汇总，保留质检记录。

实施例2：构建检测分析模型

对家系样本进行全基因组SNP分型，定义信息SNP选择标准，将信息SNP遗传标记进行单体型连锁分析，通过单体型分析区分患者致病基因等位基因和同源染色体的不同单体型，通过连锁分析明确携带致病基因和非携带致病基因的单体型，明确结构异常染色体的单体型和结构正常染色体的单体型，构建胚胎检测分析模型。

将待测胚胎全基因组SNP数据代入检测分析模型，通过SNP等位基因频率(BAllele Frequency)对胚胎染色体非整倍体进行分析，通过检测分析模型确定胚胎的单体型，通过分析胚胎是否携带致病基因和结构异常染色体断裂点的单体型及断裂点区域是否发生了同源重组，对胚胎致病基因和染色体携带状态进行检测。详见检测分析模型图图2(以男方为携带者为例)。

1)当以染色体结构异常和/或致病基因携带者夫妇双方，和，与携带者具有相同染 色体结构异常和/或致病基因的亲属为参照样本时：

a.若待定样本的致病基因或染色体结构异常断裂点区域没有发生同源重组，当待定样本致病基因或染色体结构异常断裂点区域单体型信息和携带者以及与携带者具有相同染色体结构异常和/或致病基因的亲属的单体型信息一致时，则待定样本判断为致病基因携带或染色体结构异常携带胚胎；当待定样本致病基因或染色体结构异常断裂点区域单体型信息与参照样本中结构异常和/或致病基因携带者单体型信息一致，但和与携带者具有相同染色体结构异常和/或致病基因的亲属的单体型信息不一致时，则待定样本判断为非致病基因携带或非染色体结构异常携带胚胎；

b.若待定样本的致病基因或染色体结构异常断裂点区域发生了同源重组：

i.若染色体结构异常为染色体平衡易位，则判断标准与a相反；

ii.若染色体结构异常为染色体倒位，则判断标准为，当只有其中1个断裂点区域的一端或两端发生同源重组，则判断规则与a相同；当2个断裂点区域中均仅有一端发生同源重组，则判断规则与a相同；当2个断裂点区域的两端均发生同源重组，则判断结果与a相反；

2)当以染色体结构异常和/或致病基因携带者夫妇双方，和，染色体正常的亲属为 参照时：

a.若待定样本的致病基因或染色体结构异常断裂点区域没有发生同源重组，当待定样本致病基因或染色体结构异常断裂点区域单体型信息，与携带者及与携带者的染色体正常的亲属的单体型信息一致时，则待定样本判断为非致病基因携带或非染色体结构异常携带胚胎；当待定样本致病基因或染色体结构异常断裂点区域单体型信息与参照样本中结构异常和/或致病基因携带者单体型信息一致，但和与携带者具有相同染色体结构异常和/或致病基因的亲属的单体型信息不一致时，则待定样本判断为致病基因携带或染色体结构异常携带胚胎；

b.若待定样本的致病基因或染色体结构异常断裂点区域发生了同源重组：

i.若染色体结构异常为染色体平衡易位，则判断标准与a相反；

ii.若染色体结构异常为染色体倒位，则判断标准为，当只有其中1个断裂点区域的一端或两端发生同源重组，则判断规则与a相同；当2个断裂点区域中均仅有一端发生同源重组，则判断规则与a相同；当2个断裂点区域的两端均发生同源重组，则判断结果与a相反；

3)当以携带致病基因的子代或染色体异常的胚胎为参照样本时：

a.若待定样本的致病基因或染色体结构异常断裂点区域没有发生同源重组，当待定样本致病基因或染色体结构异常断裂点区域单体型信息，与携带致病基因的子代或染色体异常的胚胎的单体型信息一致时，则待定样本判断为致病基因携带或染色体结构异常携带胚胎；当不一致时，则待定样本判断为非致病基因携带或非染色体结构异常携带胚胎；

b.若待定样本的致病基因或染色体结构异常断裂点区域发生了同源重组：

i.若染色体结构异常为染色体平衡易位，则判断标准与a相反；

ii.若染色体结构异常为染色体倒位，则判断标准为，当只有其中1个断裂点区域的一端或两端发生同源重组，则判断规则与a相同；当2个断裂点区域中均仅有一端发生同源重组，则判断规则与a相同；当2个断裂点区域的两端均发生同源重组，则判断结果与a相反。

实施例3：胚胎检测及妊娠结局随访

通过检测分析模型分析后，对胚胎进行诊断：

(1)对于只携带夫妇双方一方致病基因单体型的胚胎，诊断为该致病基因携带胚胎；

(2)对于同时携带夫妇双方致病基因单体型的胚胎，诊断为异常患病胚胎；

(3)对于不携带夫妇双方致病基因单体型的胚胎，诊断为该致病基因正常胚胎；

(4)对于不携带夫妇染色体结构异常单体型的胚胎，诊断为染色体结构正常胚胎；

(5)对于携带夫妇染色体结构异常单体型的胚胎，诊断为染色体结构异常胚胎；

(6)对于染色体不平衡易位或染色体非整倍体胚胎，直接诊断为异常胚胎。

综合考虑胚胎的致病基因、染色体结构和非整倍体检测结果，根据检测结果胚胎可分为三类，分别为不可移植(例如上述(2)、和/或(6))、可移植和可优先移植，优先考虑移植均不携带的胚胎(例如上述(3)、和/或(4))。对移植后成功妊娠的家系，随访妊娠中期胎儿的羊水细胞致病基因基因型和染色体核型结果，与检测分析模型结果进行比对，分析本检测方法的有效性(或称为“效度”)，具体方法详见流程图图2。

羊水细胞染色体制备方法(原位法)

A.细胞培养

1).将羊水(约20ml)转移到无菌的离心管中，1000rpm离心10分钟；

2).去除上清液，用于其它分析，保留细胞悬液约0.5～1ml，用培养基混匀到2～2.5ml左右；

3).将细胞悬液平分到2～4只Chromslide培养皿中；

4).培养24/48小时后，向每只Chromslide培养皿中加入约2.5ml羊水培养基；

5).培养第5～6天后，对细胞生长状况进行观察，更换新的培养基；

6).1～2天后观察细胞的生长状况，如果细胞克隆数足够，向培养皿中加入秋水仙素，收获细胞，处理时间根据秋水溶液浓度确定。

B.染色体制备

1).倾斜Chromslide细胞培养皿，完全去除培养基；

2).加入3～4ml低渗液到每个培养皿中，室温处理10分钟；

3).直接向低渗液中加入0.5～0.7ml固定液，室温处理5分钟；

4).去除上清液，加入3～4ml新鲜的固定液，室温处理；

5).重复第四步1～2次；

6).去除固定液，在Maxchrome染色体分散仪(设定适当的参数)中进行染色体分散过程；

7).玻片干燥后，老化，显带。

外周血染色体制备方法如下：

1、细胞培养

1).采血：酒精消毒皮肤，肘静脉采血，将注射针直接穿过培养瓶的橡胶塞，向10ml培养基中注入30-40滴全血，轻摇匀后置37℃恒温箱培养。

2).培养：时间为68小时。培养期间，定期轻摇匀，使细胞充分接触培养基。

3).秋水仙素处理：终止培养前2-4小时，在培养液中加入秋水仙碱(用1ml注射器5号针尖滴加2滴，使终浓度为0.07μg/ml)。

以上步骤均需无菌操作。

2、染色体制备

1).收集细胞：将培养物全部转入洁净离心管中，以1000rpm离心8-10分钟，弃上清液。

2).低渗处理：向刻度离心管中加入预温37℃的低渗液8ml，用滴管混匀，置37℃恒温水浴中低渗15-25分钟。

3).预固定：低渗后加入0.5ml固定液，轻轻混匀后1000rpm离心8-10分钟。

4).一固定：弃上清液，加入5ml固定液，轻轻混匀，静置20分钟。1000rpm离心，弃上清液。

5).二固定、三固定：同一固定。

6).制悬液：弃上清液后，视细胞数量多少加入适量固定液制成细胞悬液。

7).滴片：吸取细胞悬液自10-20cm高滴在一张干燥洁净的载玻片上，轻吹散，气干。

8).染色：1:10Giemsa染色5-10分钟，细水洗去多余染液，气干。

9).镜检：低倍镜下寻找分散良好、染色适中的分裂相，油镜下观察染色体形态并计数。

实施例4：6个实际病例的分析结果

1、该研究已经通过复旦大学附属妇产科医院伦理委员会审核通过，已经纳入6例符合纳入标准的病例家系。纳入标准为：需满足夫妇双方同时携带有某致病基因和夫妇一方携带染色体结构异常(夫妇双方均为染色体结构异常的概率很低，一般为夫妇一方)的病例。所述6例符合纳入标准的家系所涉及的染色体结构异常和致病基因分别为：

目前均已经完成促排卵、受精及囊胚细胞活检，并均顺利完成了单细胞扩增。胚胎活检细胞全基因组扩增后的DNA产物进行qPCR质控位点结果如图4所示，结果判断标准为：

(1)阳性结果：扩增产物熔解峰单一尖锐，Tm值预期范围固定；扩增曲线呈典型S型，且一般Ct值≤25。上述条件有任一不符合，则为阴性或弱阳性(Ct值在25～30之间，则为弱阳性)。

(2)阴性结果：扩增产物熔解峰多个，或无单一尖锐主峰，Tm值不在预期范围；扩增曲线不呈典型S型，一般Ct值>30。

2、已经完成促排卵6个病例的家系图，如图5所示：

3、6个病例均成功构建了检测分析模型，并完成了胚胎检测。分析结果中检测分析模型和胚胎单体型结果如图6所示(以病例-6为例)，其中图3左侧表示患者家系胚胎单基因遗传病致病基因单体型结果，右侧表示患者家系胚胎结构异常染色体的单体型结果。

4、以病例-6为例，图7表示胚胎非整倍体检测结果，1号胚胎的结果为4p16.3q24*3；4q24q35.2*1；12*1；16p13.3q12.2*1；16q12.2q24.3*3，4号胚胎的结果为整倍体，9号胚胎的结果为4p16.3q24*1；16p13.3q12.2*3，10号胚胎的结果为整倍体。

综合胚胎的非整倍体检测和单体型检测结果可以判断，1号胚胎和9号胚胎为不平衡易位的非整倍体胚胎，4号胚胎和9号胚胎均为染色体结构异常携带胚胎。

5、该6个病例已经完成移植及成功妊娠，经过随访，这6个病例的胚胎检测分析结果与产前诊断结果一致，如表1所示，证实本发明所述分析方法结果准确，适于临床应用。

表1.胚胎检测结果及移植后产前诊断结果比较