一种镉离子全细胞生物传感器电路放大的构建方法

文档序号:675152 发布日期:2021-04-30 浏览:52次 >En<

阅读说明:本技术 一种镉离子全细胞生物传感器电路放大的构建方法 (Construction method for amplifying cadmium ion whole-cell biosensor circuit ) 是由 贾晓强 刘腾 马玉冰 于 2020-12-04 设计创作,主要内容包括:本发明涉及一种镉离子全细胞生物传感器电路放大的构建方法;本研究首次通过添加T7RNAPmut(第40位氨基酸突变成终止密码子)放大模块的方式构建镉全细胞生物传感器p2T7RNAPmut-68。通过对T7RNAPmut(第40位氨基酸突变成终止密码子)放大模块对电路进行放大来实现生物传感器灵敏度与特异性的提高,以弥补传统的镉离子生物传感器在检测上的不足。以质粒pCDFDuet-2、pGN68为载体,利用镉特异性结合蛋白CadR、报告元件mCherry、cadO操纵子以及T7RNAPmut放大模块,得到镉离子全细胞生物传感器。本发明提供一种对镉离子敏感的全细胞生物传感器的构建方法,具有广泛适应性。(The invention relates to a construction method for amplifying a cadmium ion whole-cell biosensor circuit; the research firstly constructs the cadmium whole cell biosensor p2T7RNAPMut-68 by adding a T7RNAPMut (the 40 th amino acid is mutated into a stop codon) amplification module. The sensitivity and specificity of the biosensor are improved by amplifying a circuit through a T7RNAPMut (40 th amino acid mutation is a stop codon) amplification module, so that the defect of the traditional cadmium ion biosensor in detection is overcome. The plasmids pCDFDuet-2 and pGN68 are used as vectors, and the cadmium ion whole-cell biosensor is obtained by utilizing cadmium specific binding protein CadR, reporter elements mCherry, cadO operon and a T7RNApMut amplification module. The invention provides a construction method of a whole-cell biosensor sensitive to cadmium ions, and the construction method has wide adaptability.)

一种镉离子全细胞生物传感器电路放大的构建方法

技术领域

本发明涉及一种镉离子全细胞生物传感器电路放大的构建方法;一种利用T7RNAPmut(第 40位氨基酸突变成终止密码子)对镉离子全细胞生物传感器进行电路放大的方法,用于对水样中镉离子进行定量分析。

背景技术

截至到2020年,全球人口已增至75亿,与此对应的是,工业化的快速推进。快速工业化在不断提高人民生活质量的同时,也造成了严重的重金属污染。由于重金属的毒性、难降解特性、且易于通过食物链在人体积累导致一系列的健康问题。2019年7月23日,镉及镉化物被列入《有毒有害水污染物名录(第一批)》。镉污染已越来越受到人们重视,因此,建立重金属镉离子高效快速的检测手段变得尤为重要。

由于重金属毒性高、难降解且易于通过食物链在人体积累,因此容易引发一系列的健康问 题。镉的摄入会导致骨软化和骨质疏松。除此之外,镉作为一种内分泌干扰物,可对人类生殖 系统产生影响。镉作为一种诱变剂,尽管诱变性很弱,仍有致畸致癌作用和遗传毒素,还会干 扰主要的DNA修复途径。镉致癌的目标器官是胰腺、垂体、肝脏、肾上腺、前列腺和造血系。

全细胞生物传感器的生物识别元件为微生物细胞,可响应来自环境的输入并产生可测量的输出。目前,随着测序技术的发展,我们获得了大量关于环境元基因组的序列信息,从中我们可以选择合适的元件及模块。基因合成和基因组编辑技术又大大促进了定制生物系统的构建,以用于检测特定分子或合成生物化学物质。近年来,基于模块化的概念,合成生物学已使多种全细胞生物传感器的设计成为可能。对于重金属离子全细胞生物传感器来说,检测模块由能够与金属离子特异性结合的转录因子(激活物/阻遏物)或双组分系统的传感激酶等元件与调控元件(如启动子,操纵子和核糖体结合位点)构成。报告模块由受到启动子/操纵子表达调控的报告基因构成,通常报告基因由编码可催化形成可测产物的酶(如β-半乳糖苷酶和荧光素酶等)或者编码本身就是可被测量的蛋白质(如绿色荧光蛋白EGFP,红色荧光蛋白mCherry等荧光蛋白)组成。全细胞生物传感器本质上是基于细胞通过金属响应转录或双组分信号转导来对有害重金属做出特异性反应,因此具有灵敏、简便、快速、选择性及抗干扰能力强等优点,在环境监测中有着广泛的应用潜力。目前,特异性不佳、灵敏度不高一直是限制重金属微生物传感器应用的瓶颈问题。

发明内容

为了解决现有技术的问题;我们研究可以通过与放大器耦联来优化全细胞生物传感器基因电路,放大荧光响应信号,进而获得高灵敏度、高特异性的生物传感器。

本研究首次通过添加T7RNAPmut(第40位氨基酸突变成终止密码子)放大模块的方式构建镉全细胞生物传感器p2T7RNAPmut-68。通过对T7RNAPmut(第40位氨基酸突变成终止密码子)放大模块对电路进行放大来实现生物传感器灵敏度与特异性的提高,以弥补传统的镉离子生物传感器在检测上的不足。

本发明是以质粒pCDFDuet-2、pGN68为载体,利用镉特异性结合蛋白CadR、报告元件 mCherry、cadO操纵子以及T7RNAPmut放大模块,得到镉离子全细胞生物传感器。

所述的全细胞是指转化有镉离子检测包含检测元件和报告元件、具有生命代谢活性的重组细菌。传感器p2T7RNAPmut-68包括一个由镉特异性蛋白调控启动子PcadSEQ IDNo.1、镉特异性结合蛋白CadR基因SEQ ID No.2及T7RNAP第40位氨基酸由谷氨酸(GAG)突变为终止子(TAG)的T7RNAmutSEQ ID No.4为核心元件组成的检测质粒;

一个由T7启动子PT7SEQ ID No.5、cadO操纵子SEQ ID No.6及红色荧光蛋白mCherry基因SEQ ID No.3为核心元件组成的报告质粒。

此发明所用的宿主菌为恶臭假单胞菌P.putida KT2440,通过对底盘细胞的生长曲线、时间-荧光响应、浓度-荧光响应及特异性的四项性能进行检测,得到传感器对镉离子检测的性能。

本发明的技术方案如下:

一种镉离子全细胞生物传感器构建及其电路优化放大的方法;通过添加T7RNAPmut(第 40位氨基酸突变成终止密码子)放大模块的方式优化镉离子全细胞生物传感器的检测性能。

所述的传感器构建方法;包括如下步骤:

(1)镉离子全细胞生物传感器片p2T7RNAmut-68的构建:是一个由镉特异性蛋白调控启动子PcadSEQ ID No.1、镉特异性结合蛋白CadR基因SEQ ID No.2及T7RNAP第40位氨基酸由谷氨酸(GAG)突变为终止子(TAG)的T7RNAmutSEQ ID No.4为核心元件组成的检测质粒及一个由T7启动子PT7SEQ ID No.5、cadO操纵子SEQ ID No.6及红色荧光蛋白mCherry 基因SEQ ID No.3为核心元件组成的报告质粒。

(2)利用恶臭假单胞菌P.putida KT2440作为宿主,将重组质粒转入宿主中,得到镉离子全细胞生物传感器底盘细胞及经电路放大的镉离子全细胞生物传感器底盘细胞。

对本发明的镉离子全细胞生物传感器进行性能检测,通过底盘细胞生长曲线、时间-荧光响应、镉离子浓度-荧光响应及特异性实验探究传感器对镉离子的检测限、灵敏度及特异性。

所述的对镉离子全细胞生物传感器的性能检测方法,包括如下步骤:

(1)试管种子液培养:将含有传感器质粒的P.putida KT2440的单个菌落在含有抗生素的LB培养基中于30℃220rpm摇床过夜培养。然后用LB培养基稀释至OD600为1,按1%的比例接种至没有抗性的LB液体培养基的试管内;当菌液的吸光度OD600为0.6-0.8时,添加镉离子溶液。

(2)镉离子生物传感器的生长曲线:向试管中加入终浓度为0、0.1、1、10、100、200、300、400、500、600μM的Cd2+,于30℃220rpm摇床培养。未添加Cd2+前,每隔1个小时取一次样;添加Cd2+后,每隔2个小时取一次样,测定吸光度OD600

(3)镉离子生物传感器的时间-荧光响应:向试管中加入终浓度为0、0.01、0.02、0.04、 0.05、0.1、1、10μM的Cd2+,于30℃220rpm摇床培养,每隔2个小时取菌液200μL于96 孔板中,用酶标仪测定样品的相对荧光值(RFU)与吸光度OD600

(4)镉离子生物传感器的浓度-荧光响应:向试管中加入终浓度为0、0.01、0.02、0.04、 0.05、0.1、0.5、1、5、10、50、100μM的Cd2+,于30℃220rpm摇床培养,8h后取菌液200 μL于96孔板中,用酶标仪测定样品的相对荧光值(RFU)与吸光度OD600

(5)镉离子生物传感器的特异性实验:向试管中加入终浓度为0.01、0.1、1、10μM的Cd2+、Pd2+、Zn2+、Cu2+、As3+,于30℃220rpm摇床培养,8h后取菌液200μL于96孔板中,用酶标仪测定样品的相对荧光值(RFU)与吸光度OD600

(6)对镉离子全细胞生物传感器的荧光检测:取200μl菌液于干净的酶标板中,于酶标仪中测定600nm波长下的吸光度以及相应的荧光信号强度;红色荧光测量条件为:激发波长 580nm,激发波长610nm。

(7)数据处理:使用公式FIR=AFU/BFU计算荧光相对值(FIR),其中FIR样品检测荧光值(AFU)定义为相对荧光值(RFU)除以样品吸光度;将对照检测荧光值(BFU)定义为P.putida KT2440细胞(阴性对照)中检测到的相对荧光值(RFU)除以对照吸光度。将对照检测荧光值(BFU)设定为1.0,其他样品归一化至对照检测荧光值(BFU)。

本发明的优点:

本发明构建的可检测镉离子浓度的全细胞生物传感器以及经电路放大的全细胞生物传感器,以P.putida KT2440为宿主菌,通过对底盘细胞的生长曲线、时间-荧光响应、浓度-荧光响应及特异性等四项性能进行检测,探究各传感器对镉离子检测的性能。

本发明利用镉结合蛋白CadR及其特异性启动子Pcad作为检测元件,红色荧光蛋白基因 mcherry作为报告元件,然后添加T7RNAPmut放大模块构建了可以对镉离子进行检测的生物传感器底盘细胞p2T7RNAPmut-68,提供一种对镉离子敏感的全细胞生物传感器的构建方法,使得传感器对镉离子有较好的灵敏度和特异性。

所述的镉离子生物传感器以恶臭假单胞菌P.putida KT2440为宿主细胞,对镉离子检测具有高灵敏度与特异性,不受其他金属离子的干扰,具有广泛适应性。

附图说明

图1是镉离子全细胞生物传感器电路放大的设计。

图2是传感器p2T7RNAPmut-68生长曲线图。

图3是传感器p2T7RNAPmut-68时间-荧光响应图。

图4是传感器p2T7RNAPmut-68浓度-荧光响应图。其中包括镉离子生物传感器镉离子浓度-荧光响应拟合曲线。

图5是传感器p2T7RNAPmut-68的特异性。

具体实施方式

下面结合附图及具体实施例对本发明做进一步的详细说明:

利用P.putida KT2440基因组中的cadR基因SEQ ID No.1、启动子PcadSEQ ID No.1以及 cadO操纵子SEQ ID No.6;大肠杆菌(Escherichia coli)pGN68的带有红色荧光蛋白基因 mcherrySEQ ID No.3、T7RNAPmutSEQ ID No.4和启动子PT7SEQ ID No.5,其中红色荧光蛋白基因mcherrySEQ ID No.3经过恶臭假单胞菌密码子优化。在P.putida KT2440中实现了对镉离子全细胞生物传感器的构建。

本发明所用pCDFDuet-2、pGN68质粒作为构建镉离子生物传感器的检测与荧光蛋白的表达载体。其中,质粒pCDFDuet-2为商业化质粒,质粒pGN68序列如SEQ ID No.7所示。

LB培养基组成为:10g/L NaCl、10g/L蛋白胨和5g/L酵母粉,余量为蒸馏水,0.1Mpa压力121℃下灭菌20min。

下面结合具体实施例对本发明作进一步的说明。

实施例1一种可检测镉离子含量全细胞生物传感器p2T7RNAPmut-68的构建

1.质粒的构建(如图1所示)

通过PCR扩增得到的镉特异性启动子PcadSEQ ID No.1和特异性结合蛋白基因cadR序列 SEQ ID No.2以及T7RNAPmutSEQ ID No.4(部分氨基酸序列如图2所示)。在片段cadR-Pcad两端分别加上XhoⅠ和EcoRⅠ酶切位点,在片段RBS-T7RNAPmut两端分别加上XhoⅠ和 EcoRⅠ酶切位点。通过PCR扩增得到的T7启动子PT7SEQ ID No.5、cadO序列SEQ ID No.6 以及红色荧光蛋白基因mcherrySEQ ID No.3。在片段-PT7-cadO-RBS-mcherry-两端分别加上 BamHI和EcoRⅠ酶切位点。使用FastDigest内切酶进行酶切,反应体系1)为:5μL 10*FD buffer、2.5μL XhoI、2.5μL EcoRⅠ、30μL加酶切位点的cadR-Pcad片段和10μL超纯水;反应体系2)为:5μL10*FD buffer、2.5μL XhoI、2.5μL EcoRⅠ、30μL加酶切位点的-RBS-T7RNAPmut- 片段和10μL超纯水。反应体系3)为:5μL 10*FD buffer、2.5μL BamHI、2.5μL EcoRⅠ、30μL 加酶切位点的-PT7-cadO-RBS-mcherry-片段和10μL超纯水。反应条件为:37℃,2h。使用PCR 纯化试剂盒,将50μL酶切产物中,加入250μL Bingding Buffer溶液,混匀后加入吸附柱中,静置一分钟,10,000xg离心1分钟,弃出流出液。加入650μL Wash Buffer,10,000g离心1 分钟,弃出流出液。10,000xg离心2分钟,去除残留的Wash Buffer。将吸附柱置于一个干净的离心管中,在柱的中央加入30μL Elution Buffer(Elution Buffer提前在65℃水浴锅中预热),室温静置1分钟,10,000xg离心1分钟,洗脱酶切后的-cadR-Pcad-、RBS-T7RNAPmut以及PT7-cadO-RBS-mcherry。将酶切后-cadR-Pcad-和RBS-T7RNAPmut进行连接反应。反应体系为:1μL10*T4 DNA Ligase Buffer,1μL T4 DNA Ligase,4μL酶切后的-cadR-Pcad-片段和4μL酶切后的-RBS-T7RNAPmut-片段。反应条件为:22℃,10min。以酶切连接后的产物为模板PCR扩增得到-cadR-Pcad-RBS-T7RNAPmut-片段,使用FastDigest内切酶进行酶切,反应体系为:5 μL 10*FD buffer,5.0μL EcoRI、30μL加酶切位点的-cadR-Pcad-RBS-T7RNAPmut-片段和10μL 超纯水;同样将pCDFDuet-2质粒用FastDigest内切酶EcoRI进行酶切,pGN68质粒用FastDigest 内切酶BamHI和EcoRI进行酶切,PCR纯化试剂盒纯化回收。

将酶切后核苷酸和质粒进行连接反应。反应体系为:1μL 10*T4 DNA LigaseBuffer,1μL T4 DNA Ligase,6μL酶切后的核苷酸片段和2μL酶切后质粒。反应条件为:22℃,10min。酶切连接后转化感受态细胞P.putida KT2440,菌落PCR筛选阳性克隆提质粒,测序验证。

2.质粒转化到恶臭假单胞菌底盘菌株P.putida KT2440

重组表达载体转化到底盘菌株P.putida KT2440中的详细构建步骤如下:

1)将活化的P.putida KT2440 100μL,接种于10ml LB培养基中,30℃,220rpm,培养至OD600为0.6时,转入10ml离心管中,在预冷的4℃离心机中,4500rpm/min,离心5min,去上清,收集菌体;

2)用5ml预冷的灭过菌的0.1mol/L氯化钙洗涤菌体,在预冷的4℃离心机中,4500rpm/min离心5min,去上清,收集菌体,重复洗涤两次;

3)尽量将上清倒尽,加入50μL 0.1mol/L氯化钙,50μL 30%甘油重悬菌体,制成E.coli DH5α感受态细胞;

4)将实施例1中构建的质粒10μL,加入到100μL电转感受态细胞中,轻轻旋转混匀。冰上防止半小时后,热击45s并迅速冰浴2min,加入1mL LB培养基,30℃复苏1h后涂布在含有卡那霉素抗性的平板上,过夜培养;

5)挑选菌落PCR验证的阳性转化子到5ml LB培养基中过夜培养,得到对镉离子全细胞生物传感器底盘细胞。

实施例2目标全细胞生物传感器的性能检测

1.目标全细胞生物传感器的生长曲线

1.1目标全细胞生物传感器底盘细胞的生长曲线

将含有传感器质粒的P.putida KT2440的单个菌落在含有抗生素的LB培养基中于30℃ 220rpm摇床过夜培养。然后用LB培养基稀释至OD600为1,按1%的比例接种至没有抗性的 LB液体培养基的试管内;当菌液的吸光度OD600为0.6-0.8时,向试管中加入终浓度为0、0.1、 1、10、100、200、300、400、500、600μM的Cd2+,于30℃220rpm摇床培养。未添加Cd2+前,每隔1个小时取一次样;添加Cd2+后,每隔2个小时取一次样,测定吸光度OD600。其中,吸光度在600nm波长下进行测量。

数据处理:使用公式FIR=AFU/BFU计算荧光相对值(FIR),其中FIR样品检测荧光值(AFU) 定义为相对荧光值(RFU)除以样品吸光度;将对照检测荧光值(BFU)定义为P.putida KT2440 细胞(阴性对照)中检测到的相对荧光值(RFU)除以对照吸光度。将对照检测荧光值(BFU) 设定为1.0,其他样品归一化至对照检测荧光值(BFU)。

1.2实验结果

本发明中构建的镉离子全细胞生物传感器p2T7RNAPmut-68在加入不同浓度镉离子后,所测得生长变化曲线如图2所示。

当添加Cd2+浓度小于1μM时,当Cd2+浓度小于400μM时,传感器p2T7RNAPmut-68的生长状况与不添加Cd2+时基本一致,说明添加0-400μM的Cd2+对细胞生长几乎没有影响,传感器p2T7RNAPmut-68增加了细胞对Cd2+的耐受性。

2.目标全细胞生物传感器的时间-荧光响应

2.1目标全细胞生物传感器的时间-荧光响应

将含有传感器质粒的P.putida KT2440的单个菌落在含有抗生素的LB培养基中于30℃ 220rpm摇床过夜培养。然后用LB培养基稀释至OD600为1,按1%的比例接种至没有抗性的LB液体培养基的试管内;当菌液的吸光度OD600为0.6-0.8时,向试管中加入终浓度为0、0.01、 0.02、0.04、0.05、0.1、1、10μM的Cd2+,于30℃220rpm摇床培养,每隔2h取菌液200μL于96孔板中,用酶标仪测定样品的相对荧光值(RFU)与吸光度OD600

数据处理:使用公式FIR=AFU/BFU计算荧光相对值(FIR),其中FIR样品检测荧光值(AFU) 定义为相对荧光值(RFU)除以样品吸光度;将对照检测荧光值(BFU)定义为P.putida KT2440 细胞(阴性对照)中检测到的相对荧光值(RFU)除以对照吸光度。将对照检测荧光值(BFU) 设定为1.0,其他样品归一化至对照检测荧光值(BFU)。

2.2实验结果

本发明中构建的镉离子全细胞生物传感器p2T7RNAPmut-68在加入不同浓度镉离子后,所测得时间-荧光响应曲线如图3所示。

传感器p2T7RNAPmut-68的荧光响应随时间的增加而逐渐增大。在加Cd2+培养4h后,传感器p2T7RNAPmut-68的检测限由2h的1μM降至0.05μM;加Cd2+培养6h后,传感器p2T7RNAPmut-68的检测限降为0.01μM(低于WHO饮用水中的镉检测限值0.027μM)。

3.目标全细胞生物传感器的浓度-荧光响应

3.1目标全细胞生物传感器的浓度-荧光响应

将含有传感器质粒的P.putida KT2440的单个菌落在含有抗生素的LB培养基中于30℃ 220rpm摇床过夜培养。然后用LB培养基稀释至OD600为1,按1%的比例接种至没有抗性的 LB液体培养基的试管内;当菌液的吸光度OD600为0.6-0.8时,向试管中加入终浓度为0、0.01、 0.02、0.04、0.05、0.1、0.5、1、5、10、50、100μM的Cd2+,于30℃220rpm摇床培养,8h 后取菌液200μL于96孔板中,用酶标仪测定样品的相对荧光值(RFU)与吸光度OD600。吸光度在600nm波长下进行测量,红色荧光测量条件为:激发波长580nm,激发波长610nm。

数据处理:使用公式FIR=AFU/BFU计算荧光相对值(FIR),其中FIR样品检测荧光值(AFU) 定义为相对荧光值(RFU)除以样品吸光度;将对照检测荧光值(BFU)定义为P.putida KT2440 细胞(阴性对照)中检测到的相对荧光值(RFU)除以对照吸光度。将对照检测荧光值(BFU) 设定为1.0,其他样品归一化至对照检测荧光值(BFU)。

3.2实验结果

本发明中构建的镉离子全细胞生物传感器p2T7RNAPmut-68在加入不同浓度镉离子后,所测得浓度-荧光响应曲线如图4所示。

传感器p2T7RNAPmut-68在5μM的Cd2+存在下荧光响应最好,对镉离子浓度-荧光响应曲线进行线性拟合,p2T7RNAPmut-68的线性响应范围为0.01-0.5μM,灵敏度为388.74。

4.目标全细胞生物传感器的特异性

4.1目标全细胞生物传感器的特异性

将含有传感器质粒的P.putida KT2440的单个菌落在含有抗生素的LB培养基中于30℃ 220rpm摇床过夜培养。然后用LB培养基稀释至OD600为1,按1%的比例接种至没有抗性的 LB液体培养基的试管内;当菌液的吸光度OD600为0.6-0.8时,向试管中加入终浓度为0.01、 0.1、1、10μM的Cd2+、Pd2+、Zn2+、Cu2+、As3+,于30℃220rpm摇床培养,8h后取菌液200 μL于96孔板中,用酶标仪测定样品的相对荧光值(RFU)与吸光度OD600。吸光度在600nm 波长下进行测量,红色荧光测量条件为:激发波长580nm,激发波长610nm。

数据处理:使用公式FIR=AFU/BFU计算荧光相对值(FIR),其中FIR样品检测荧光值(AFU) 定义为相对荧光值(RFU)除以样品吸光度;将对照检测荧光值(BFU)定义为P.putida KT2440 细胞(阴性对照)中检测到的相对荧光值(RFU)除以对照吸光度。将对照检测荧光值(BFU) 设定为1.0,其他样品归一化至对照检测荧光值(BFU)。

4.2实验结果

本发明中构建的镉离子全细胞生物传感器p2T7RNAPmut-68在加入不同浓度镉离子后,其特异性分析如图5所示。

Cd2+浓度为0.01μM、0.1μM、1μM和10μM时,传感器p2T7RNAPmut-68的荧光响应明显高于其他重金属离子产生的荧光响应。p2T7RNAPmut-68在Cd2+浓度为0.1μM时的荧光响应是10μM Pd2+、Zn2+、Cu2+、As3+时的7.6-17.8倍,则p2T7RNAPmut-68的特异性为7.6,。

其中,Zn2+浓度为10μM时,传感器的荧光响应均高于其他Zn2+浓度的荧光响应。这是由于镉响应转录因子CadR蛋白的特殊结构造成的,CadR蛋白具有2种不同类型的功能位点:金属结合位点I(S1和S1′)与金属结合位点II(S2和S2′)。金属结合位点II(S2和S2′)位于分子的中间,由2个组氨酸残基(α5螺旋中的His87和His90)、1个谷氨酸残基(α4螺旋中的Glu62)和来自His尾区的可变配体形成,3个组氨酸残基和1个谷氨酸残基呈四面体结构排列,能与Cd2+和Zn2+结合。

本发明公开和提出的技术方案,本领域技术人员可通过借鉴本文内容,适当改变条件路线等环节实现,尽管本发明的方法和制备技术已通过较佳实施例子进行了描述,相关技术人员明显能在不脱离本发明内容、精神和范围内对本文所述的方法和技术路线进行改动或重新组合,来实现最终的制备技术。特别需要指出的是,所有相类似的替换和改动对本领域技术人员来说是显而易见的,他们都被视为包括在本发明精神、范围和内容中。

序列表

<110> 天津大学

<120> 一种镉离子全细胞生物传感器电路放大的构建方法

<160> 7

<170> SIPOSequenceListing 1.0

<210> 1

<211> 83

<212> DNA

<213> 人工序列(Artificial Sequence)

<400> 1

cacgaaatct ccagcaagtg gcttgaccct atagtggcta cagggtgttc acttggcaac 60

aggctcaatt taaggatgac ccc 83

<210> 2

<211> 444

<212> DNA

<213> 人工序列(Artificial Sequence)

<400> 2

atgaagatcg gagaactggc caaagccacc gactgcgcgg tggaaaccat ccgctactac 60

gagcgtgaaa acctgctgcc agagccggcg cgcagcgagg gcaactaccg gttgtacacc 120

caggcccatg tggagcggct gaccttcatc cgcaactgcc gcacgctgga catgaccctg 180

gacgaaattc gcagcctgct acgcctgcgc gacagccccg acgacgcgtg cggcagcgtc 240

aatgcgctga tcgacgagca tatcgagcat gttcaggcgc ggatcgatgg cttggtggca 300

ttgcaggagc agctggtgga gctgcggcgg cgctgcaacg cgcaggggag tgaatgcgcg 360

atcttgcagc aactggagac aaacggggcg gtatcggtac cggataccga acattcccat 420

gtggggcgga gtcacgggca ttga 444

<210> 3

<211> 605

<212> DNA

<213> 人工序列(Artificial Sequence)

<400> 3

gcgaaggcga gggtcgtccg tacgagggca cccagaccgc caagctgaag gtgaccaaag 60

gcggtccgct gccgttcgcc tgggacatcc tgtcgccaca gttcatgtac ggcagcaagg 120

cctacgtgaa gcacccagcg gacatcccgg actacctgaa gctgagcttc ccggaaggct 180

tcaagtggga gcgcgtgatg aacttcgagg acggtggcgt ggtgaccgtg acccaggaca 240

gcagcctgca ggacggcgag ttcatctaca aggtgaagct gcgtggcacc aacttcccga 300

gcgacggtcc ggtgatgcag aaaaagacca tgggctggga agccagcagc gagcgcatgt 360

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agtga 605

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<212> DNA

<213> 人工序列(Artificial Sequence)

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