阅读说明：本技术 一种鲨肌醇的制备方法 (Preparation method of scyllo-inositol ) 是由 游淳 李元 刘珊 于 2018-08-24 设计创作，主要内容包括：本发明公开了一种利用微生物全细胞和/或其裂解液催化肌肉肌醇制备鲨肌醇的方法,包括构建表达耐热肌肉肌醇脱氢酶和/或耐热鲨肌醇脱氢酶基因的工程菌,并将工程菌进行细胞膜通透性处理和/或破碎,然后利用透性工程菌或其裂解液将肌肉肌醇转化为鲨肌醇。本发明的方法与现有生产鲨肌醇的方法相比,具有生产工艺简单、生产成本低、产率高等优点。(The invention discloses a method for preparing scyllo-inositol by catalyzing myoinositol with whole cells of microorganisms and/or lysate thereof, which comprises the steps of constructing engineering bacteria for expressing thermotolerant myoinositol dehydrogenase and/or thermotolerant scyllo-inositol dehydrogenase genes, carrying out cell membrane permeability treatment and/or disruption on the engineering bacteria, and then converting the myoinositol into the scyllo-inositol by utilizing the permeable engineering bacteria or the lysate thereof. Compared with the existing method for producing scyllo-inositol, the method of the invention has the advantages of simple production process, low production cost, high yield and the like.)

一种鲨肌醇的制备方法

技术领域

本发明涉及生物工程技术领域，尤其涉及一种鲨肌醇的制备方法，具体涉及一种利用微生物全细胞和/或其裂解液催化肌肉肌醇将其转化为鲨肌醇的方法。

背景技术

鲨肌醇(scyllo-inositol，简称SI)是肌肉肌醇(myo-inositol，MI)的一种差向异构体(图1)，存在于植物、动物和一些细菌中，但其在自然界中的含量远远低于肌肉肌醇。研究表明，鲨肌醇具有淀粉样β蛋白聚集抑制作用，可调节肌肉肌醇依赖的中枢神经信号，是治疗阿兹海默氏病的一种潜在的药物，目前已由Transition Therapeutics IrelandLimited公司进行临床试验；同时可以改善唐氏综合征人群的认知水平。此外，鲨肌醇可以降低尿酸水平，用来治疗高尿酸血症。

在传统的合成方法中，鲨肌醇主要是通过以肌肉肌醇为原料经过复杂的步骤采用化学方法合成，然而该方法需要羟基的保护和脱保护，步骤繁琐，不利于规模化生产。近年来，随着生物工程技术的发展，生物法制备鲨肌醇成为新的发展趋势。目前已报道了利用枯草芽孢杆菌(Bacillus subtilis)的细胞工厂来生产鲨肌醇(Yamaoka M,Osawa S,Morinaga T,Takenaka S,Yoshida K-i(2011)A cell factory of Bacillus subtilisengineered for the simple bioconversion of myo-inositol to scyllo-inositol,apotential therapeutic agent for Alzheimer's disease.Microbial Cell Factories10；Tanaka K,Tajima S,Takenaka S,Yoshida K-i(2013)An improved Bacillussubtilis cell factory for producing scyllo-inositol,a promising therapeuticagent for Alzheimer's disease.Microbial Cell Factories 12；Tanaka K,TakanakaS,Yoshida K-i(2014)A second-generation Bacillus cell factory for rareinositol production.Bioengineered 5(5):331-334；Tanaka K,Natsume A,Ishikawa S,Takenaka S,Yoshida K-i(2017)A new-generation of Bacillus subtilis cellfactory for further elevated scyllo-inositol production.Microbial CellFactories 16)。该方法需要复杂的代谢流控制，同时鲨肌醇的产率依赖于培养基的营养物质，无疑增加了工艺的复杂性。

因此，亟待开发一种生产工艺简单、产率高、低成本地制备鲨肌醇的新方法。

发明内容

针对现有的制备鲨肌醇的方法所存在的问题，本发明提供一种利用表达肌肉肌醇脱氢酶(myo-inositol 2-dehydrogenase，EC 1.1.1.18，简称IDH)和鲨肌醇脱氢酶(scyllo-inositol2-dehydrogenase，EC 1.1.1.370，简称SIDH)的全细胞和/或其裂解液催化肌肉肌醇生产鲨肌醇的方法。该方法具有生产工艺简单、生产成本低、产率高等优点。

为解决上述技术问题，本发明采用以下技术方案：

根据本发明的一个方面，本发明涉及一种制备鲨肌醇的方法，其特征在于，所述方法包括下述步骤：

(1)构建共表达耐热肌肉肌醇脱氢酶和耐热鲨肌醇脱氢酶的工程菌、和/或分别表达耐热肌肉肌醇脱氢酶和耐热鲨肌醇脱氢酶的工程菌；

(2)将步骤(1)构建的工程菌进行发酵获得全细胞；

(3)将步骤(2)获得的全细胞进行细胞膜通透性处理和/或破碎，获得透性全细胞和/或裂解液；

(4)利用步骤(3)获得的共表达耐热肌肉肌醇脱氢酶和耐热鲨肌醇脱氢酶的透性全细胞，表达耐热肌肉肌醇脱氢酶的透性全细胞和表达耐热鲨肌醇脱氢酶的透性全细胞的混合物，共表达耐热肌肉肌醇脱氢酶和耐热鲨肌醇脱氢酶的透性全细胞、表达耐热肌肉肌醇脱氢酶的透性全细胞和表达耐热鲨肌醇脱氢酶的透性全细胞的混合物，共表达耐热肌肉肌醇脱氢酶和耐热鲨肌醇脱氢酶的全细胞裂解液，表达耐热肌肉肌醇脱氢酶的全细胞裂解液和表达耐热鲨肌醇脱氢酶的全细胞裂解液的混合物，和/或共表达耐热肌肉肌醇脱氢酶和耐热鲨肌醇脱氢酶的全细胞裂解液、表达耐热肌肉肌醇脱氢酶的全细胞裂解液和表达耐热鲨肌醇脱氢酶的全细胞裂解液的混合物催化肌肉肌醇制备鲨肌醇。

根据本发明，所述催化途径包括：由耐热肌肉肌醇脱氢酶在NAD⁺存在下将底物肌肉肌醇氧化为中间体肌醇单酮；由耐热鲨肌醇脱氢酶在NADH存在下将中间体肌醇单酮还原为产物鲨肌醇，如图2所示。在本发明的催化途径中，所需NAD⁺来自于所述工程菌细胞，即，本发明的方法不包括额外添加NAD⁺的步骤。

优选地，根据本发明，步骤(1)中，所述工程菌包含共表达耐热肌肉肌醇脱氢酶和耐热鲨肌醇脱氢酶的载体、或者同时包含表达耐热肌肉肌醇脱氢酶的载体和表达耐热鲨肌醇脱氢酶的载体、或者包含表达耐热肌肉肌醇脱氢酶的载体、或者包含表达耐热鲨肌醇脱氢酶的载体。本领域技术人员可以理解，本发明所涉及的载体和工程菌可以通过本领域已知的常规方法制备，例如，通过重组DNA技术构建，获取肌肉肌醇脱氢酶的编码基因iolG和鲨肌醇脱氢酶的编码基因iolX，构建重组表达载体，转入宿主菌获得基因工程菌。

优选地，根据本发明，步骤(1)中，“耐热肌肉肌醇脱氢酶”指在50℃以上、55℃以上、60℃以上、65℃以上、70℃以上、75℃以上、或80℃以上具有将肌肉肌醇氧化为肌醇单酮功能的酶。

进一步优选地，所述耐热肌肉肌醇脱氢酶来源于嗜热微生物，例如嗜热地芽孢杆菌(Geobacillus kaustophilus)、嗜热脂肪地芽胞杆菌(Geobacillusstearothermophilus)、海栖热袍菌(Thermotoga maritima)、Pseudothermotogathermarum等；或所述耐热肌肉肌醇脱氢酶的氨基酸序列与来源于所述嗜热微生物的耐热肌肉肌醇脱氢酶具有至少70％，优选至少80％，更优选至少90％，最优选至少95％的同一性。

更优选地，所述耐热肌肉肌醇脱氢酶来源于Geobacillus kaustophilus；或所述耐热肌肉肌醇脱氢酶的氨基酸序列与来源于Geobacillus kaustophilus的耐热肌肉肌醇脱氢酶具有至少70％，优选至少80％，更优选至少90％，最优选至少95％的同一性。

优选地，根据本发明，步骤(1)中，“耐热鲨肌醇脱氢酶”指在50℃以上、55℃以上、60℃以上、65℃以上、70℃以上、75℃以上、或80℃以上具有将肌醇单酮还原化为鲨肌醇功能的酶。

进一步优选地，所述耐热鲨肌醇脱氢酶来源于嗜热微生物，例如嗜热地芽孢杆菌(Geobacillus kaustophilus)、嗜热脂肪地芽胞杆菌(Geobacillusstearothermophilus)、Geobacillus thermoleovorans、海栖热袍菌(Thermotogamaritima)等；或所述耐热鲨肌醇脱氢酶的氨基酸序列与来源于所述嗜热微生物的耐热鲨肌醇脱氢酶具有至少70％，优选至少80％，更优选至少90％，最优选至少95％的同一性。

更优选地，所述耐热鲨肌醇脱氢酶来源于Geobacillus kaustophilus；或所述耐热鲨肌醇脱氢酶的氨基酸序列与来源于Geobacillus kaustophilus的耐热鲨肌醇脱氢酶具有至少70％，优选至少80％，更优选至少90％，最优选至少95％的同一性。

优选地，根据本发明，所述共表达耐热肌肉肌醇脱氢酶和耐热鲨肌醇脱氢酶的载体包括第一启动子、耐热肌肉肌醇脱氢酶基因、第一终止子、第二启动子、耐热鲨肌醇脱氢酶基因和第二终止子，或者包括第一启动子、耐热鲨肌醇脱氢酶基因、第一终止子、第二启动子、耐热肌肉肌醇脱氢酶基因和第二终止子，或者包括启动子、耐热鲨肌醇脱氢酶基因、耐热肌肉肌醇脱氢酶基因、终止子，或者包括启动子、耐热肌肉肌醇脱氢酶基因、耐热鲨肌醇脱氢酶基因、终止子；所述表达耐热肌肉肌醇脱氢酶的载体包括启动子、耐热肌肉肌醇脱氢酶基因、终止子；所述表达耐热鲨肌醇脱氢酶的载体包括启动子、耐热鲨肌醇脱氢酶基因、终止子。

本领域技术人员可以理解，本领域已知的各种表达载体均可用于本发明，包括但不限于pET系列、pGEX系列、pACYCDuet-1、pRSFDuet-1等。优选地，所述载体为pETDuet-1、pET-29a(+)。

本领域技术人员可以理解，本领域已知的各种宿主菌均可用于本发明，包括但不限于大肠杆菌、毕赤酵母、酿酒酵母、枯草芽孢杆菌等。优选地，所述宿主菌为大肠杆菌BL21(DE3)。

本领域技术人员可以理解，本领域已知的各种启动子均可用作本发明的启动子、第一启动子和/或第二启动子，包括但不限于T7启动子、lac启动子、tac启动子、trc启动子、PR启动子等。优选地，所述启动子、第一启动子、第二启动子彼此独立地为T7启动子。

本领域技术人员可以理解，本领域已知的各种终止子均可用作本发明的终止子、第一终止子和/或第二终止子，包括但不限于T7终止子、rrnB T1终止子、rrnB T2终止子等。优选地，所述终止子、第一终止子、第二终止子彼此独立地为T7终止子。

根据本发明，步骤(2)中，所述全细胞的制备使用本领域已知的方法进行。发酵可使用任何适合外源蛋白表达的培养基，包括但不限于LB培养基、TB培养基等。

根据本发明，步骤(3)中，所述细胞膜通透性处理包括但不限于热处理、添加有机溶剂和/或添加表面活性剂等。优选地，细胞膜通透性处理为热处理。对细胞膜进行通透性处理的目的是为了使细胞外的肌肉肌醇能够通过细胞膜进入到细胞内。

优选地，热处理温度为45-95℃；进一步优选地，热处理温度为55-90℃；更优选地，热处理温度为60-80℃；最优选地，热处理温度为70℃。

优选地，热处理时间为1-40min；进一步优选地，热处理时间为5-30min；更优选地，热处理时间为10-25min；最优选地，热处理时间为20min。

优选地，热处理时的细胞浓度为OD₆₀₀＝10-300；进一步优选地，细胞浓度为OD₆₀₀＝20-200；更优选地，细胞浓度为OD₆₀₀＝50-150；最优选地，细胞浓度为OD₆₀₀＝100。

根据本发明，所述热处理可在无缓冲液体系或缓冲液体系中进行；优选地，所述热处理在缓冲液体系中进行，所述缓冲液可为HEPES缓冲液、磷酸盐缓冲液、Tris缓冲液、醋酸盐缓冲液等。其中，磷酸盐缓冲液例如磷酸钠缓冲液、磷酸钾缓冲液等。

根据本发明，步骤(3)中，所述细胞破碎使用本领域已知的方法进行。细胞破碎方法包括但不限于超声破碎法、高压均质法等。

优选地，根据本发明，步骤(4)中，所述利用透性全细胞或透性全细胞的混合物催化肌肉肌醇制备鲨肌醇的反应体系中，底物肌肉肌醇的浓度为1-400g/L，透性全细胞或透性全细胞的混合物的加入量为OD₆₀₀＝1-100；更优选地，底物肌肉肌醇的浓度为100-350g/L，透性全细胞或透性全细胞的混合物的加入量为OD₆₀₀＝10-50；最优选地，底物肌肉肌醇的浓度为250g/L，透性全细胞或透性全细胞的混合物的加入量为OD₆₀₀＝20-40。

优选地，根据本发明，步骤(4)中，所述利用透性全细胞或透性全细胞的混合物催化肌肉肌醇制备鲨肌醇的反应条件为：在pH 6.0-8.0、50-80℃下反应0.5-72h；更优选地在pH 6.5-7.5、55-75℃下反应3-48h；最优选地在pH 7.0、60-65℃下反应6-24h。

根据本发明，所述利用透性全细胞或透性全细胞的混合物催化反应可在无缓冲液体系或缓冲液体系中进行；优选地，所述利用透性全细胞或透性全细胞的混合物催化反应在缓冲液体系中进行，所述缓冲液可为HEPES缓冲液、磷酸盐缓冲液、Tris缓冲液、醋酸盐缓冲液等。其中，磷酸盐缓冲液例如磷酸钠缓冲液、磷酸钾缓冲液等。

优选地，根据本发明，步骤(4)中，所述利用细胞裂解液或细胞裂解液的混合物催化肌肉肌醇制备鲨肌醇的反应体系中，底物肌肉肌醇的浓度为1-400g/L，细胞裂解液或细胞裂解液的混合物为全细胞OD₆₀₀＝10-100时的裂解液，加入量为反应液总体积的5％-95％；更优选地，底物肌肉肌醇的浓度为100-300g/L，细胞裂解液或细胞裂解液的混合物为全细胞OD₆₀₀＝40-150时的裂解液，加入量为反应液总体积的50％-90％；最优选地，底物肌肉肌醇的浓度为250g/L，细胞裂解液或细胞裂解液的混合物为全细胞OD₆₀₀＝100时的裂解液，加入量为反应液总体积的90％。

优选地，根据本发明，步骤(4)中，所述利用细胞裂解液或细胞裂解液的混合物催化肌肉肌醇制备鲨肌醇的反应条件为：在pH 6.0-8.0、50-80℃下反应0.5-72h；更优选地在pH 6.5-7.5、55-75℃下反应3-48h；最优选地在pH 7.0、60-65℃下反应6-24h。

根据本发明，所述利用细胞裂解液或细胞裂解液的混合物催化反应可在无缓冲液体系或缓冲液体系中进行；优选地，所述利用细胞裂解液或细胞裂解液的混合物催化反应在缓冲液体系中进行，所述缓冲液可为HEPES缓冲液、磷酸缓冲液、Tris缓冲液、醋酸盐缓冲液等。其中，磷酸盐缓冲液例如磷酸钠缓冲液、磷酸钾缓冲液等。

优选地，根据本发明，步骤(4)中，透性全细胞的混合物中表达耐热肌肉肌醇脱氢酶的透性全细胞和表达耐热鲨肌醇脱氢酶的透性全细胞的比例为0.1:1-10:1；更优选地为0.5:1-5:1；最优选地为1:1；全细胞裂解液的混合物中表达耐热肌肉肌醇脱氢酶的全细胞裂解液所用全细胞和表达耐热鲨肌醇脱氢酶的全细胞裂解液所用全细胞的比例为0.1:1-10:1；更优选地为0.5:1-5:1；最优选地为1:1。

根据本发明，也可以利用透性全细胞和细胞裂解液的混合物催化肌肉肌醇制备鲨肌醇，其反应条件为：在pH 6.0-8.0、50-80℃下反应0.5-72h；更优选地在pH 6.5-7.5、55-75℃下反应3-48h；最优选地在pH 7.0、60-65℃下反应6-24h。

根据本发明的另一个方面，本发明涉及上述共表达耐热肌肉肌醇脱氢酶和耐热鲨肌醇脱氢酶的载体、表达耐热肌肉肌醇脱氢酶的载体和表达耐热鲨肌醇脱氢酶的载体。

根据本发明的另一个方面，本发明涉及上述共表达耐热肌肉肌醇脱氢酶和耐热鲨肌醇脱氢酶的工程菌、表达耐热肌肉肌醇脱氢酶的工程菌和表达耐热鲨肌醇脱氢酶的工程菌。根据本发明，共表达耐热肌肉肌醇脱氢酶和耐热鲨肌醇脱氢酶的工程菌包含共表达耐热肌肉肌醇脱氢酶和耐热鲨肌醇脱氢酶的载体、或者同时包含表达耐热肌肉肌醇脱氢酶的载体和表达耐热鲨肌醇脱氢酶的载体；表达耐热肌肉肌醇脱氢酶的工程菌包含表达耐热肌肉肌醇脱氢酶的载体；表达耐热鲨肌醇脱氢酶的工程菌包含表达耐热鲨肌醇脱氢酶的载体。

与现有技术相比，本发明具有如下有益效果：

(1)本发明利用表达耐热肌肉肌醇脱氢酶和耐热鲨肌醇脱氢酶的全细胞和/或其裂解液催化肌肉肌醇生产鲨肌醇，开发了一种简单且易于规模化制备鲨肌醇的新方法。

(2)本发明反应体系中无需额外添加NAD⁺，即可实现NAD⁺/NADH的自循环，有利于降低生产成本，具有重要的工业应用价值。

(3)本发明的方法中鲨肌醇的制备可以在较高温度下进行，从而可以增加底物肌肉肌醇的溶解度，相对于现有技术，本发明可在较高底物浓度下实现鲨肌醇的制备，有利于提高生产效率，进一步降低生产成本。

(4)本发明采用表达耐热肌肉肌醇脱氢酶和耐热鲨肌醇脱氢酶的全细胞作催化剂，只需通过热处理改变细胞膜的通透性，有利于简化生产工艺，提高产品的安全性。

(5)本发明的方法中鲨肌醇的转化反应可在无缓冲液体系或缓冲液体系中进行，不需要使用含有碳源、氮源、无机盐及抗生素的培养基，一方面有利于降低生产成本，另一方面有利于产物鲨肌醇的分离纯化。

附图说明

图1为鲨肌醇和肌肉肌醇的化学结构。

图2为本发明的透性全细胞和/或裂解液催化肌肉肌醇生产鲨肌醇的示意图。MI：肌肉肌醇；SI：鲨肌醇；IDH：肌肉肌醇脱氢酶；SIDH：鲨肌醇脱氢酶。

图3A-C分别为重组表达载体pETDuet-iolG、pET29a-iolX和pETDuet-iolG-iolX的图谱。

图4为肌肉肌醇和鲨肌醇的HPLC谱图。

图5为利用不同条件下热处理的全细胞制备鲨肌醇。

图6为在不同反应温度下制备鲨肌醇。

具体实施方式

为更进一步阐述本发明所采取的技术手段及其效果，以下通过具体实施例来进一步说明本发明的技术方案。但是应理解所述实施例仅是范例性的，不对本发明的范围构成任何限制。本领域技术人员应该理解的是，在不偏离本发明的精神和范围下可以对本发明技术方案的细节和形式进行修改或替换，但这些修改或替换均落入本发明的保护范围。

实施例1iolG和iolX基因的克隆

本实施例中耐热肌肉肌醇脱氢酶来自Geobacillus kaustophilus，NCBI登录号为WP_011231389；耐热鲨肌醇脱氢酶也来自Geobacillus kaustophilus，NCBI登录号为WP_011231387.1。Geobacillus kaustophilus购于中国普通微生物菌种保藏管理中心(CGMCC)。这两个基因分别使用不同的引物从基因组DNA中通过PCR获取：将Geobacilluskaustophilus接种于5mL液体营养肉汁琼脂培养基(蛋白胨10g/L，牛肉浸取物3g/L，NaCl5g/L，用NaOH调至pH 7.0)中，55℃培养至对数生长期，使用DNA Kit(天根生化科技有限公司，中国)提取基因组。使用引物iolG-F(含有BamHI酶切位点)：5′-CGCGGATCCGATGACTCGGGTGAAAGTAGG-3′和iolG-R(含有SalI酶切位点)：5′-ACGCGTCGACTTATTTTGACGGAGCTGTTTG-3′扩增iolG基因；使用引物iolX-F(含有NdeI酶切位点)：5′-GGAATTCCATATGACCGTTCGTTGTGCAG-3′和iolX-R(含有KpnI酶切位点)：5′-GGGGTACCCTAGCGTGTTTGCTCAGCTAC-3′扩增iolX基因。

所有引物均由苏州金唯智生物科技有限公司合成。基因的PCR条件为94℃变性5min，按如下参数循环30次：94℃变性15s，58℃退火15s，72℃延伸1min，最后72℃延伸10min。PCR反应所得到的产物分别用0.8％的琼脂糖凝胶电泳分析结果。经凝胶成像系统成像确认片段大小正确后，采用DNA纯化回收试剂盒(天根生化科技有限公司，中国)回收目的片段用于重组表达载体的构建。

实施例2重组工程菌的构建

(1)pETDuet-iolG的构建

用BamHI/SalI双酶在37℃下分别酶切pETDuet-1质粒和实施例1中通过PCR获得的含有两个酶切位点的iolG基因，分别胶回收已双酶切的目的片段和表达载体，将其在T4连接酶的作用下于22℃连接5h。连接产物用氯化钙法转化入感受态E.coli Top10，挑选转化子进行菌落PCR及双酶切鉴定，选择2-3个阳性转化子送测序进一步验证，测序结果显示成功获得pETDuet-iolG重组载体。

pETDuet-iolG的质粒图谱如图3A所示。

(2)pET29a-iolX的构建

用NdeI/KpnI双酶在37℃下分别酶切pET-29a(+)质粒和实施例1中通过PCR获得的含有两个酶切位点的iolX基因，分别胶回收已双酶切的目的片段和表达载体，将其在T4连接酶的作用下于22℃连接5h。连接产物用氯化钙法转化入感受态E.coli Top10，挑选转化子进行菌落PCR及双酶切鉴定，选择2-3个阳性转化子送测序进一步验证，测序结果显示成功获得pET29a-iolX重组载体。

pET29a-iolX的质粒图谱如图3B所示。

(3)pETDuet-iolG-iolX的构建

用NdeI/KpnI双酶在37℃下分别酶切pETDuet-iolG质粒和实施例1中通过PCR获得的含有两个酶切位点的iolX基因，分别胶回收已双酶切的目的片段和表达载体，将其在T4连接酶的作用下于22℃连接5h。连接产物用氯化钙法转化入感受态E.coli Top10，挑选转化子进行菌落PCR及双酶切鉴定，选择2-3个阳性转化子送测序进一步验证，测序结果显示成功获得pETDuet-iolG-iolX重组共表达载体。

pETDuet-iolG-iolX的质粒图谱如图3C所示。

(4)重组工程菌的构建

将构建的重组质粒pETDuet-iolG、pET29a-iolX和pETDuet-iolG-iolX分别用氯化钙法转化入宿主菌BL21(DE3)，LB试管培养过夜，质粒抽提试剂盒抽提质粒，将正确的克隆子BL21(DE3)/pETDuet-iolG、BL21(DE3)/pET29a-iolX和BL21(DE3)/pETDuet-iolG-iolX保存。

实施例3重组工程菌全细胞的制备

分别挑取重组工程菌BL21(DE3)/pETDuet-iolG、BL21(DE3)/pET29a-iolX和BL21(DE3)/pETDuet-iolG-iolX接种于含有氨苄青霉素的LB培养基中，37℃振荡过夜培养。将培养物以1％的接种量转接于新鲜的含有氨苄青霉素的LB培养基中，37℃震荡培养至OD₆₀₀＝0.6-0.8，使用终浓度为0.1mM IPTG于18℃诱导过夜，5500rpm离心10min，弃去上清，获得表达耐热肌肉肌醇脱氢酶的全细胞、表达耐热鲨肌醇脱氢酶的全细胞以及共表达耐热肌肉肌醇脱氢酶和耐热鲨肌醇脱氢酶的全细胞。

实施例4全细胞催化肌肉肌醇制备鲨肌醇

将实施例3中制备的共表达耐热肌肉肌醇脱氢酶和耐热鲨肌醇脱氢酶的全细胞使用0.9％NaCl洗涤1次，5500rpm离心10min，弃去上清，向沉淀中加入20mM磷酸钠缓冲液(pH7.0)，重悬菌体至OD₆₀₀＝100左右。将重悬的菌体分别在65℃、70℃以及75℃热处理20min。

在5mL反应体系中，分别加入终浓度为20g/L肌肉肌醇、20mM磷酸钠缓冲液(pH7.0)以及以上不同条件下热处理的全细胞，使OD₆₀₀＝20左右，以未进行热处理的全细胞作为对照。在55℃和150rpm的水浴摇床反应6h，取样进行高效液相色谱(HPLC)分析。HPLC检测条件如下：色谱柱为Wakopak Wakosil 5NH₂；流动相为乙腈/水(v:v，80:20)；流速为2mL/min；柱温为40℃；检测器为示差折光检测器；进样量为10μL。肌肉肌醇和鲨肌醇的液相色谱图如图4所示。

图5示出了利用不同条件下热处理的全细胞制备鲨肌醇。结果显示，使用70℃热处理20min的全细胞作催化剂时，鲨肌醇产量可达6.2g/L。

实施例5全细胞催化肌肉肌醇制备鲨肌醇

将实施例3中制备的共表达耐热肌肉肌醇脱氢酶和耐热鲨肌醇脱氢酶的全细胞使用0.9％NaCl洗涤1次，5500rpm离心10min，弃去上清，向沉淀中加入20mM磷酸钠缓冲液(pH7.0)，重悬菌体至OD₆₀₀＝100左右。将重悬的菌体在70℃热处理20min。

在5mL反应体系中，分别加入终浓度为20g/L肌肉肌醇、20mM磷酸钠缓冲液(pH7.0)以及以上热处理的全细胞，使OD₆₀₀＝20左右。分别在55℃、60℃、65℃、70℃和150rpm的水浴摇床反应6h，取样进行HPLC分析。HPLC检测条件同实施例4。

图6示出了在不同温度下制备鲨肌醇。结果显示，在60℃下反应6h，鲨肌醇的产量可达6.4g/L。

实施例6全细胞催化肌肉肌醇制备鲨肌醇

使用实施例5中的方式热处理全细胞。在5mL反应体系中，分别加入终浓度为130g/L肌肉肌醇、20mM磷酸钠缓冲液(pH 7.0)以及以上热处理的全细胞使OD₆₀₀＝20左右。在60℃和150rpm的水浴摇床反应24h，取样进行HPLC分析。HPLC检测条件同实施例4。

结果显示，鲨肌醇的含量为50.5g/L。

实施例7全细胞催化肌肉肌醇制备鲨肌醇

使用实施例5中的方式热处理全细胞。在5mL反应体系中，分别加入终浓度为180g/L肌肉肌醇、20mM磷酸钠缓冲液(pH 7.0)以及以上热处理的全细胞使OD₆₀₀＝20左右。在60℃和150rpm的水浴摇床反应24h，取样进行HPLC分析。HPLC检测条件同实施例4。

结果显示，鲨肌醇的含量为74.5g/L。

实施例8全细胞催化肌肉肌醇制备鲨肌醇

使用实施例5中的方式热处理全细胞。在5mL反应体系中，分别加入终浓度为250g/L肌肉肌醇、20mM磷酸钠缓冲液(pH 7.0)以及以上热处理的全细胞使OD₆₀₀＝40左右。在60℃和150rpm的水浴摇床反应24h，取样进行HPLC分析。HPLC检测条件同实施例4。

结果显示，鲨肌醇的含量为105g/L。

实施例9细胞裂解液催化肌肉肌醇制备鲨肌醇

将实施例3中制备的共表达耐热肌肉肌醇脱氢酶和耐热鲨肌醇脱氢酶的全细胞使用0.9％NaCl洗涤1次，5500rpm离心10min，弃去上清，向沉淀中加入20mM磷酸钠缓冲液(pH7.0)，重悬菌体至OD₆₀₀＝100左右。将重悬菌体进行高压均质。4℃、8000rpm离心，获得共表达耐热肌肉肌醇脱氢酶和耐热鲨肌醇脱氢酶的细胞裂解液。

在5mL反应体系中，分别加入终浓度为250g/L肌肉肌醇、20mM磷酸钠缓冲液(pH7.0)以及90％(细胞裂解液:反应液，v/v)上述OD₆₀₀＝100左右的全细胞裂解液。在60℃和150rpm的水浴摇床反应24h，取样进行HPLC分析。HPLC检测条件同实施例4。

结果显示，鲨肌醇的产率为42％。

实施例10细胞裂解液催化肌肉肌醇制备鲨肌醇

将实施例3中制备的表达耐热肌肉肌醇脱氢酶的全细胞和表达耐热鲨肌醇脱氢酶的全细胞分别使用0.9％NaCl洗涤1次，5500rpm离心10min，弃去上清，分别向沉淀中加入20mM磷酸钠缓冲液(pH 7.0)，重悬菌体至OD₆₀₀＝100左右。将重悬的菌体分别进行高压均质，4℃、8000rpm离心，获得表达耐热肌肉肌醇脱氢酶的细胞裂解液和表达耐热鲨肌醇脱氢酶的细胞裂解液。

在5mL反应体系中，加入终浓度为250g/L肌肉肌醇、20mM磷酸钠缓冲液(pH 7.0)以及90％(细胞裂解液:反应液，v:v)上述OD₆₀₀＝100左右的以上两种细胞裂解液，其中表达耐热肌肉肌醇脱氢酶的细胞裂解液和表达耐热鲨肌醇脱氢酶的细胞裂解液的加入比例为1:1。在60℃和150rpm的水浴摇床反应24h，取样进行HPLC分析。HPLC检测条件同实施例4。

结果显示，鲨肌醇的产率为42％。