一种酶法制备d-谷氨酸的方法

文档序号:502676 发布日期:2021-05-28 浏览:17次 >En<

阅读说明:本技术 一种酶法制备d-谷氨酸的方法 (Method for preparing D-glutamic acid by enzyme method ) 是由 曾帅 李晚军 肖雪 范明 于 2021-03-18 设计创作,主要内容包括:本发明公开了一种酶法制备D-谷氨酸的方法,包括以下步骤:S1、以L-谷氨酸钠为底物,加入谷氨酸消旋酶使其反应生成DL-谷氨酸钠;S2、加入L-谷氨酸脱羧酶,使DL-谷氨酸钠分解成γ-氨基丁酸和D-谷氨酸,控制pH值为2-4,析出D-谷氨酸晶体。本发明利用谷氨酸消旋酶,L-谷氨酸脱羧酶,以L-谷氨酸钠为底物,制备D-谷氨酸,基于简单的方法,即可制备D-谷氨酸,具有环境污染小,生物安全性好,设备简单的优点,有利于工业化大生产D-谷氨酸及其衍生物。(The invention discloses a method for preparing D-glutamic acid by an enzyme method, which comprises the following steps: s1, adding glutamic acid racemase into L-sodium glutamate serving as a substrate to react to generate DL-sodium glutamate; s2, adding L-glutamic acid decarboxylase to decompose DL-sodium glutamate into gamma-aminobutyric acid and D-glutamic acid, controlling the pH value to be 2-4, and separating out D-glutamic acid crystals. The invention utilizes glutamate racemase and L-glutamate decarboxylase, takes L-sodium glutamate as a substrate to prepare D-glutamic acid, can prepare the D-glutamic acid based on a simple method, has the advantages of little environmental pollution, good biological safety and simple equipment, and is beneficial to the industrialized mass production of the D-glutamic acid and the derivative thereof.)

一种酶法制备D-谷氨酸的方法

技术领域

本发明涉及酶催化技术领域,具体涉及一种酶法制备D-谷氨酸的方法。

背景技术

D-谷氨酸是一种重要的手性化合物,是细菌细胞壁肽聚糖的重要组成部分,在不同的动物、植物、微生物中也担任着重要的生理角色,是许多药物、生物活性物质以及聚合体的重要前体和中间体,同时也可作为食品添加剂,被广泛应用于生产半合成抗体、激素、生物活性多肽和化学杀虫剂。D-谷氨酸的结构式如下:

目前D-谷氨酸的制备方法主要有化学法和化学法-酶法和酶法等。

例如,翟立海等(应有化工,2006,35(4):313-315)利用L-谷氨酸和甲醇在催化剂氯化氢下反应生成L-谷氨酸-γ-甲酯,在加入D-酒石酸和水杨醛,得到D-谷氨酸酯-D-酒石酸盐,在酸性水溶液中水解,经分离纯化得到D-谷氨酸。这些方法虽然操作简单,但反应条件苛刻,易生成副产物,同时大量有机溶剂的使用还会造成环境污染。

发明内容

本发明的目的在于提供一种酶法制备D-谷氨酸的方法,解决现有制备D-谷氨酸的方法反应条件苛刻、易生成副产物,且污染环境的问题。

本发明通过下述技术方案实现:

一种酶法制备D-谷氨酸的方法,包括以下步骤:

S1、以L-谷氨酸钠为底物,加入谷氨酸消旋酶使其反应生成DL-谷氨酸钠;

S2、加入L-谷氨酸脱羧酶,使DL-谷氨酸钠分解成γ-氨基丁酸和D-谷氨酸,控制pH值为2-4,析出D-谷氨酸晶体。

本发明的具体合成路线如下:

本发明所述γ-氨基丁酸和D-谷氨酸在水中的溶解度不同,利用两者在水中溶解度不同的差异,在pH 2-4析出D-谷氨酸晶体。

本发明为纯酶法制备D-谷氨酸,不但具有反应条件温和,酶的专一性强,不易产生副产物,生产的产物手性纯度高等优点,而且还采用廉价易得的L-谷氨酸钠为原料,以可大量制得的克隆表达蛋白为催化剂进行转化,以等电点结晶的方式进行产品的分离,这些优点导致生产过程中成本较低,有利于大批量的工业制备。

通过本发明所述方法制得的D-谷氨酸,产物的含量能达到99.5%以上,光学纯度>99.5%。

进一步地,谷氨酸消旋酶、L-谷氨酸脱羧酶和L-谷氨酸钠的用量比为:5-10:20-50:100-400。

进一步地,步骤S1中,控制pH值为6-9,步骤S2中,脱羧时控制pH值为5-8。

进一步地,步骤S1中,控制pH值为7-8,步骤S2中,脱羧时控制pH值为5-7。

进一步地,整个制备过程,反应温度为20-40℃,反应时间24-48h。

进一步地,整个制备过程,反应温度为30-40℃。

进一步地,通过消旋反应制备成DL-谷氨酸钠后,通过膜分离设备去除谷氨酸消旋酶,再进行步骤S2。

进一步地,谷氨酸消旋酶和L-谷氨酸脱羧酶均是经过发酵、离心收集的湿菌体。

进一步地,谷氨酸消旋酶酶活力为3000-5000U/g,所述L-谷氨酸脱羧酶酶活力为500-1000U/g。

进一步地,将获得的湿菌体经细胞破碎得到粗酶液进行使用。

本发明与现有技术相比,具有如下的优点和有益效果:

1、本发明首次提出了纯酶法制备D-谷氨酸,为D-谷氨酸的合成提供了新方法。

2、通过本发明所述方法制得的D-谷氨酸,产物的含量能达到99.5%以上,光学纯度>99%。

3、本发明所述方法原料廉价易得、不使用有机溶剂,反应条件温和、不易产生副产物,产品易分离,纯度高,且具有成本低的优点。

附图说明

此处所说明的附图用来提供对本发明实施例的进一步理解,构成本申请的一部分,并不构成对本发明实施例的限定。在附图中:

图1为实施例1的光学纯度图谱;

图2为实施例2的光学纯度图谱;

图3为实施例3的光学纯度图谱;

图4为实施例4的光学纯度图谱;

图5为实施例5的光学纯度图谱;

图6为实施例6的光学纯度图谱;

图7为实施例7的光学纯度图谱;

图8为对比例1的光学纯度图谱。

具体实施方式

为使本发明的目的、技术方案和优点更加清楚明白,下面结合实施例和附图,对本发明作进一步的详细说明,本发明的示意性实施方式及其说明仅用于解释本发明,并不作为对本发明的限定。

实施例1:

一种酶法制备D-谷氨酸的方法:

在5ml反应瓶中加入1g L-谷氨酸钠,用1mol/L氢氧化钠将溶液pH值调至7.5,再加入30mg谷氨酸消旋酶湿菌体,在37℃下反应7h,升温至80℃,离心去除菌体,用1mol/L硫酸溶液将pH值调至5,加入0.13mg PLP,1mg六水氯化镁,再加入150mg L-谷氨酸脱羧酶湿菌体,在磁力搅拌反应10小时后,升温至80℃,离心去除菌体,用1mol/L硫酸溶液将pH值调至3,析出D-谷氨酸晶体,抽滤,冰水洗涤,烘干,送样检测含量及光学纯度,含量=99.9%,光学纯度=99.91%;D-谷氨酸收率为33%,本实施例的光学纯度图谱如图1所示。

实施例2:

一种酶法制备D-谷氨酸的方法:

在50ml反应瓶中加入15g L-谷氨酸钠,用2mol/L氢氧化钠将溶液pH值调至8,再加入250mg谷氨酸消旋酶湿菌体,在37℃下反应7h,升温至80℃,保温10min,离心去除菌体,用2mol/L硫酸溶液将pH值调至5,加入1.3mg PLP,10mg六水氯化镁,再加入2g L-谷氨酸脱羧酶湿菌体,在37℃下反应10小时后,升温至80℃,保温10min,离心去除菌体,用2mol/L硫酸溶液将pH值调至3,析出D-谷氨酸晶体,抽滤,冰水洗涤,烘干,送样检测含量及光学纯度,含量=99.8%,光学纯度=99.83%;D-谷氨酸收率为34%,本实施例的光学纯度图谱如图2所示。

实施例3:

一种酶法制备D-谷氨酸的方法:

在500ml反应瓶中加入150g L-谷氨酸钠,用4mol/L氢氧化钠将溶液pH值调至8,再加入3g谷氨酸消旋酶湿菌体,在37℃下反应10h,升温至80℃,保温10min,离心去除菌体,用4mol/L硫酸溶液将pH值调至5.5,加入20mg PLP,150mg六水氯化镁,再加入25g L-谷氨酸脱羧酶湿菌体,在37℃下反应10小时后,升温至80℃,保温10min,离心去除菌体,用4mol/L硫酸溶液将pH值调至3.3,析出D-谷氨酸晶体,抽滤,冰水洗涤,烘干,送样检测含量及光学纯度,含量=99.9%,光学纯度=99.93%;D-谷氨酸收率为36%,本实施例的光学纯度图谱如图3所示。

实施例4:

一种酶法制备D-谷氨酸的方法:在500ml反应瓶中加入190g L-谷氨酸钠,用4mol/L氢氧化钠将溶液pH值调至8,再加入4g谷氨酸消旋酶湿菌体,在37℃下反应10h,升温至80℃,保温30min,离心去除菌体,用4mol/L硫酸溶液将pH值调至5.5,加入20mg PLP,150mg六水氯化镁,再加入20g L-谷氨酸脱羧酶湿菌体,在37℃下反应10小时后,升温至80℃,保温30min,离心去除菌体,用4mol/L硫酸溶液将pH值调至3.3,析出D-谷氨酸晶体,抽滤,冰水洗涤,烘干,送样检测含量及光学纯度,含量=99.9%,光学纯度=99.9%;D-谷氨酸收率35%,本实施例的光学纯度图谱如图4所示。

实施例5:

一种酶法制备D-谷氨酸的方法:

在1L反应瓶中加入380g L-谷氨酸钠,用4mol/L氢氧化钠将溶液pH值调至8,再加入8g谷氨酸消旋酶湿菌体,在37℃下反应12h,升温至80℃,保温30min,离心去除菌体,用4mol/L硫酸溶液将pH值调至5.5,加入40mg PLP,300mg六水氯化镁,再加入20g L-谷氨酸脱羧酶湿菌体,在37℃下反应13小时后,升温至80℃,保温30min,离心去除菌体,浓缩至D-谷氨酸含量在200-300g/L,用4mol/L硫酸溶液将pH值调至3.3,析出D-谷氨酸晶体,抽滤,冰水洗涤,烘干,送样检测含量及光学纯度,含量=99.9%,光学纯度=99.8%;D-谷氨酸收率37%,本实施例的光学纯度图谱如图5所示。

实施例6:

一种酶法制备D-谷氨酸的方法:

在1L反应瓶中加入400g L-谷氨酸钠,用4mol/L氢氧化钠将溶液pH值调至8,再加入8g谷氨酸消旋酶湿菌体,在40℃下反应12h,升温至80℃,保温30min,离心去除菌体,用4mol/L硫酸溶液将pH值调至5.5,加入30mg PLP,250mg六水氯化镁,再加入20g L-谷氨酸脱羧酶湿菌体,在37℃下反应13小时后,升温至80℃,保温30min,离心去除菌体,浓缩至D-谷氨酸含量在200-300g/L,用4mol/L硫酸溶液将pH值调至3.3,析出D-谷氨酸晶体,抽滤,冰水洗涤,烘干,送样检测含量及光学纯度,含量=100%,光学纯度=99.89%;D-谷氨酸收率39%,本实施例的光学纯度图谱如图6所示。

实施例7:

一种酶法制备D-谷氨酸的方法:

在5L反应器中加入2Kg L-谷氨酸钠,用6mol/L氢氧化钠将溶液pH值调至8,再加入35g谷氨酸消旋酶湿菌体,在40℃下反应12h,升温至80℃,保温1h,离心去除菌体,用4mol/L硫酸溶液将pH值调至5.5,加入130mg PLP,1g六水氯化镁,再加入100g L-谷氨酸脱羧酶湿菌体,在37℃下反应15小时后,升温至80℃,保温30min,离心去除菌体,浓缩至D-谷氨酸含量在200-250g/L,用6mol/L硫酸溶液将pH值调至3.22,析出D-谷氨酸晶体,抽滤,冰水洗涤,烘干,送样检测含量及光学纯度,含量=99.9%,光学纯度=99.98%;D-谷氨酸收率40%,本实施例的光学纯度图谱如图7所示。

对比例1:

一种酶法制备D-谷氨酸的方法:

在1L反应瓶中加入400g L-谷氨酸钠,用4mol/L氢氧化钠将溶液pH值调至8,再加入5g谷氨酸消旋酶湿菌体,在40℃下反应12h,升温至80℃,保温30min,离心去除菌体,用4mol/L硫酸溶液将pH值调至5.5,加入30mg PLP,250mg六水氯化镁,再加入10g L-谷氨酸脱羧酶湿菌体,在37℃下反应13小时后,升温至80℃,保温30min,离心去除菌体,浓缩至D-谷氨酸含量在200-300g/L,用4mol/L硫酸溶液将pH值调至3.3,析出D-谷氨酸晶体,抽滤,冰水洗涤,烘干,送样检测含量及光学纯度,含量=99.6%,光学纯度=72.93%;说明在S2中反应所需L-谷氨酸脱羧酶酶量不足,导致L-谷氨酸未全部反应完全,本实施例的光学纯度图谱如图8所示。

由对比例1可以看出:

改变L-谷氨酸脱羧酶用量,导致DL-谷氨酸中L-谷氨酸反应不完全,最后得到的产品光学纯度不高,里面含L-谷氨酸杂质。

谷氨酸含量检测方法:取本品约0.25g,精密称定,加沸水50mL使溶解,放冷,加溴麝香草酚蓝指示液5滴,用氢氧化钠滴定液(0.1mol/L)滴定至溶液由黄色变为蓝绿色,每1mL氢氧化钠滴定液(0.1mol/L)相当于14.71mg的谷氨酸。

D-谷氨酸光学纯度检测方法如表1所示:

表1

以上所述的具体实施方式,对本发明的目的、技术方案和有益效果进行了进一步详细说明,所应理解的是,以上所述仅为本发明的具体实施方式而已,并不用于限定本发明的保护范围,凡在本发明的精神和原则之内,所做的任何修改、等同替换、改进等,均应包含在本发明的保护范围之内。

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