具体实施方式

下面将结合本发明中的实施例，对本发明的技术方案进行清楚、完整地描述，显然，所描述的实施例仅仅是本发明一部分实施例，而不是全部的实施例。基于本发明中的实施例，本领域普通技术人员在没有做出创造性劳动条件下所获得的所有其它实施例，都属于本发明保护的范围。

实施例1细胞色素P450单加氧酶CYP109B2的基因克隆

1、索诺拉沙漠芽孢杆菌Bacillus sonorensis的培养

从甘油管中挑取索诺拉沙漠芽孢杆菌(Bacillus sonorensis)的菌液，在海水2216琼脂平板培养基上划线活化，于30℃恒温培养箱倒置培养48h。待平板上长出单菌落，挑取单菌落接种于5mL无抗性的LB培养基中，30℃，220rpm振荡培养48h。培养得到的菌体整体呈灰白色，如图1所示。菌体OD₆₀₀为2.5左右。

为了确认该细菌是否具有转化甾体化合物的能力，以睾酮作为模式底物，用Bacillus sonorensis对睾酮进行了全细胞反应检测，具体为：细菌培养后，于4000rpm离心10min收集菌体，用pH 8.0的磷酸钾缓冲液重悬细胞，调OD₆₀₀＝20，向菌悬液中加入终浓度5％的葡萄糖(Glucose)，5％的甘油(Glycerol)，终浓度1U的葡萄糖脱氢酶(GDH)和终浓度1mM的NADP⁺和1mM溶解于二甲基甲酰胺(DMF)的甾醇睾酮，25℃，200rpm的振荡摇床中进行睾酮的生物转化9h，在反应9h后取样检测。取样的反应液加入等体积(500μL)的乙腈，1200rpm离心1min，过膜处理后用于高效液相色谱(HPLC)分析检测。检测结果显示，反应后的样品中检测到了除底物睾酮以外的液相峰，而未检测到底物睾酮的液相峰，说明该细菌中存在催化睾酮转化的酶，并且在30h内将1mM睾酮完全转化。

2、Bacillus sonorensis基因组信息和CYP109B2基因克隆

将培养得到的菌液在12000rpm转速下离心2min收集菌体，并根据商用的基因组抽提试剂盒的说明书抽提基因组。抽提得到的基因组通过跑核酸检测胶进行鉴定，验证正确后于-25℃保存备用。

根据Bacillus sonorensis的菌种属性在NCBI数据库中查询相关基因组信息，并根据基因组的序列信息设计特异性引物，采用分子克隆技术从基因组中克隆得到新型P450单加氧酶基因，具体如下：

以Bacillus sonorensis基因组为模板，引物为：

CYP109B2-F：ATGAACTCGGCAAAACAGCAGAAC(SEQ ID NO:3所示)

CYP109B2-R：TCATGATGAAAGCAGCGCCTCTTTG(SEQ ID NO:4所示)

PCR体系(50μL)：1μL基因组模板，引物各1μL(10μM)，25μL Prime STAR Max DNA聚合酶，加灭菌蒸馏水至50μL。

PCR反应程序为：(1)98℃变性3min；(2)98℃变性10sec，(3)55℃退火15sec，(4)72℃延伸20sec，步骤(2)-(4)共进行30个循环，最后72℃延伸5min，12℃保藏产物。

克隆扩增得到的PCR产物用0.8％的琼脂糖凝胶核酸电泳检测，在紫外核酸成像仪下观察到大小在1000～1500之间的条带(如图2所示)，目的条带理论大小为1218bp，实际得到的目的基因大小与理论一致，说明克隆得到了目标基因。进一步将得到的PCR产物送交公司测序，结果显示，克隆得到的PCR产物的核苷酸序列以及氨基酸序列与数据库中一致，说明确准确克隆得到目的基因，该基因的核苷酸序列如SEQ ID NO:2所示，氨基酸序列如SEQID NO:1所示。

利用NCBI分析该新型P450单加氧酶的同源序列，并在此基础上利用生物学序列分析软件MEGA 6.0对新型P450单加氧酶进行系统发育树的构建，结果如图3所示，结果显示，该新型P450单加氧酶与已经报道的CYP109家族的CYP109B1氨基酸序列同源性达61.9％，由此确认了新型P450单加氧酶是细胞色素单加氧酶CYP109B亚家族的一员，由此将该蛋白酶命名为CYP109B2。

进一步分析CYP109B2的酶学结构特征，首先利用生物信息学手段对CYP109B2的保守性进行了分析，结果如图4所示；并结合MEGA 6.0和在线Weblog、在线ESPript 3.0对CYP109B2进行序列分析，探索CYP109B2与其同源酶基因序列的差异之处，同源序列比对结果如图5所示。

实施例2氧化还原伴侣蛋白酶基因或P450单加氧酶氧化还原结构域的获取

细胞色素P450单加氧酶在催化过程中需氧化还原伴侣蛋白酶或氧化还原结构域进行电子传递，本实施例分别列举了几种氧化还原伴侣蛋白和P450单加氧酶氧化还原结构域的获取方法。

(1)来源于聚球藻Synechococcus elongates PCC7942的细胞色素P450单加氧酶氧化还原伴侣蛋白酶，具体为：铁氧还蛋白还原酶Synpcc7942_0978(Fdr_0978)和铁氧还蛋白Synpcc7942_1499(Fdx_1499)。

分别以pET-28a-Fdr_0978和pET-28a-Fdx_1499质粒为模板，以引物：

Fdr_0978-F:ATGTTGAATGCGAGTGTGGCTG(SEQ ID NO:5)

Fdr_0978-R:CTAGTAGGTTTCAACATGCCAACGACC(SEQ ID NO:6)；

Fdx_1499-F:ATGGCAACCTACAAGGTTACGCT(SEQ ID NO:7)

Fdx_1499-R:CTAGTAGAGGTCTTCTTCTTTGTGGGTTTCG(SEQ ID NO:8)

PCR体系(10μL)：模板0.1～4ng，引物各0.5μL(10μM)，5μL Prime STAR Max DNA聚合酶，加灭菌蒸馏水至10μL，进行常规PCR扩增。

(2)来源于菠菜E.C.1.18.1.2的细胞色素P450单加氧酶氧化还原伴侣蛋白酶，具体为：铁氧还蛋白还原酶FNR和铁氧还蛋白Fd I。基因扩增方法同上，扩增引物包括：

FNR-F:ATGCAGATCGCCTCTGATGTGG

FNR-R:TTAGTAGACTTCAACGTTCCATTGTTCTGCC；

Fd I-F:ATGGCCGCCTACAAGGTGAC

Fd I-R:TTAGGCGGTCAGCTCCTCTTCTT。

(3)来源于巨大芽孢杆菌Bacillus megaterium的细胞色素P450单加氧酶P450-BM3(CYP102A1)的氧化还原结构域。基因扩增方法同上，扩增引物包括：

(CYP109B2)-R_BM3-F:

GCGCTGCTTTCATCACCTTCACCTAGCACTGAACAGTCTG

(CYP109B2)-R_BM3-R:

GCATTATGCGGCCGCTTACCCAGCCCACACGTCTTTTGC。

(4)来源于红球菌Rhodococcus sp.NCIMB 9784的细胞色素P450单加氧酶P450-RhF(CYP116B2)的氧化还原结构域。基因扩增方法同上，扩增引物包括：

(CYP109B2)-R_RhF-F:GCGCTGCTTTCATCAGTGCTGCACCGGCATCAACC

(CYP109B2)-R_RhF-R:GCATTATGCGGCCGCTCAGAGTCGCAGGGCCAGC。

实施例3重组质粒pRSFDuet-1-CYP109B2-Fdr_0978-Fdx_1499构建

在成功得到CYP109B2基因后，通过生物信息学分析确定了CYP109B2属于I型的细胞色素P450单加氧酶。为了让CYP109B2在大肠杆菌中发挥其催化活性，筛选了CYP109B2合适的氧化还原伴侣，其中在铁氧还蛋白还原酶Fdr_0978和铁氧还蛋白Fdx_1499的辅助下，CYP109B2能表现出很好的催化活性，因此构建重组质粒。

1、CYP109B2重组质粒构建(pRSFDuet-1-CYP109B2)

(1)线性载体片段pRSFDuer-1的扩增：

模板：质粒pRSFDuet-1，引物：

pRSFDute-1-F1:GCGGCCGCATAATGCTTAAG(SEQ ID NO:9)

pRSFDute-1-R1:AAGCTTGTCGACCTGCAGGC(SEQ ID NO:10)

PCR体系(50μL)：模板0.5～20ng，引物各1μL(10μM)，25μL Prime STAR Max DNA聚合酶，加灭菌蒸馏水至50μL。

PCR反应程序为：(1)98℃变性3min；(2)98℃变性10sec，(3)55℃退火15sec，(4)72℃延伸40sec，步骤(2)～(4)共进行30个循环，最后72℃延伸5min，12℃保藏产物。

(2)CYP109B2基因扩增

模板：扩增的CYP109B2基因片段

引物：

(pRSFDuet)-CYP109B2-F:

CAGGTCGACAAGCTTATGAACTCGGCAAAACAGCAGAAC(SEQ ID NO:11)(pRSFDuet)-CYP109B2-R:

GCATTATGCGGCCGCTTACGCCTGGAACGATAAAGATGCCTC(SEQ ID NO:12)

PCR扩增体系和反应程序同步骤(1)。

(3)将克隆扩增得到的PCR产物用0.8％的琼脂糖凝胶核酸电泳检测，在紫外核酸成像仪下观察条带大小是否正确。检测正确后用Dpn I消化PCR产物中剩余的模板，体系(50μL)为：5μL CutSmart Buffer，2μL Dpn I，43μL PCR产物。在37℃消化5h，之后80℃灭活15min。用1.5％的琼脂糖凝胶核酸电泳和OMEGA回收试剂盒进行胶回收。

(4)将目的基因片段CYP109B2和线性载体片段pRSFDuer-1在T5外切酶的作用下形成15bp或者20bp的粘性末端从而连接在一起，具体方法为：在5μL反应体系中按照摩尔比3:1加入目的片段CYP109B2和线性化载体pRSFDuet-1(控制线性化载体的量为30～50ng)，再加入T5外切酶和buffer 4.0，不够5μL用水补足。加入T5外切酶后计时5min，时间到后立即加入50μL DH5α感受态细胞按照常规转化的基本步骤进行转化，加培养基复苏1h后转移到含有相应抗性Kan(50μg/mL)的LB固体培养基(蛋白胨10g/L，酵母粉5g/L，NaCl 10g/L，15g/L琼脂粉)上过夜培养，并且取相应转化子送测序公司进行DNA测序最终得到正确重组子pRSFDuet-1-CYP109B2。

(5)将重组子pRSFDuet-1-CYP109B2转化到大肠杆菌BL21(DE3)中，并在含有抗性Kan(50μg/mL)的LB固体培养培养，得到可以单独表达细胞色素CYP109B2单加氧酶的重组细胞E.coli(pRSFDuet-1-CYP109B2)，使其异源表达CYP109B2，SDS-PAGE检测结果如图6所示。结果显示，在45kd附近有比较亮的蛋白条带，与CYP109B2的实际蛋白大小44.5kd一致，说明CYP109B2在大肠杆菌中异源表达得较好。

2、氧化还原伴侣重组质粒(pETDuet-1-Fdr_0978-Fdx_1499)构建

(1)线性载体片段pETDuet-1的扩增：

模板：质粒pETDuet-1，引物：

pETDuet-F:GCCTGCAGGTCGACAAGCTT(SEQ ID NO:13)

pETDuet-R:GCGCCGAGCTCGAATTCG(SEQ ID NO:14)

PCR扩增体系和反应程序同上。

(2)Fdr_0978和Fdx_1499基因扩增

模板：Fdr_0978目的基因片段或Fdx_1499目的基因片段；引物：

(pETDuet)-Fdr_0978-F:CGAATTCGAGCTCGGCGCATGTTGAATGCGAGTGTGGCTG(SEQ IDNO:15)

Fdr_0978-(rbs)-R:GATATATCTCCTTAGGTACCCTAGTAGGTTTCAACATGCCAACGACC(SEQID NO:16)；

Fdx_1499-(rbs)-F:GGTACCTAAGGAGATATATCATGGCAACCTACAAGGTTACGCT(SEQ IDNO:17)

(pETDuet)-Fdx_1499-R:GCTTGTCGACCTGCAGGCGTAGAGGTCTTCTTCTTTGTGGGTTTCG(SEQ ID NO:18)

PCR扩增体系和反应程序同上。

(3)将线性化载体和目的基因片段Fdr_0978-rbs-Fdx_1499和线性载体片段pETDuet-1在T5外切酶的作用下形成15bp或者20bp的粘性末端从而连接在一起。具体方法同重组子pRSFDuet-1-CYP109B2的构建，其中目的片段Fdr_0978、Fdx_1499和线性化载体pETDuet-1的摩尔比为3:3:1。最终得到正确重组子pETDuet-1-Fdr_0978-Fdx_1499。

3、重组质粒pRSFDuet-1-CYP109B2-Fdr_0978-Fdx_1499构建

(1)模板：质粒pRSFDuet-1-CYP109B2；引物：

pRSFDute-1-F2:GGCCGGCCACGCGATCGCT(SEQ ID NO:19)

pRSFDute-1-R2:GATATCCAATTGAGATCTGCCATATGTATATCTCCT(SEQ ID NO:20)

常规PCR扩增得到线性化载体pRSFDuet-1-CYP109B2。

(2)Fdr_0978-rbs-Fdx_1499基因扩增

模板：质粒pETDuet-1-Fdr_0978-Fdx_1499

引物：

(pRSFDuet)-Fdr_0978-F1:TCTCAATTGGATATCATGTTGAATGCGAGTGTGGCTG(SEQ IDNO:21)

(pRSFDuet)-Fdx_1499-R1:ATCGCGTGGCCGGCCCTAGTAGAGGTCTTCTTCTTTGTGGGTTTCG(SEQ ID NO:22)

常规PCR扩增得到入目的片段Fdr_0978-rbs-Fdx_1499

(3)将线性化载体和PCR扩增的基因片段在T5外切酶的作用下形成15bp或者20bp的粘性末端从而连接在一起。具体方法同上述重组子pRSFDuet-1-CYP109B2的构建，其中目的片段Fdr_0978-rbs-Fdx_1499和线性化载体pRSFDuet-1-CYP109B2的摩尔比为3:1。测序后得到正确重组质粒：pFSFDuet-1-CYP109B2-Fdr_0978-Fdx_1499。

4、蛋白表达重组细胞构建

可将两种重组质粒pRSFDuet-1-CYP109B2和pETdeut-1-Fdr_0978-Fdx_1499同时转化到BL21(DE3)中并培养，得到可以同时表达细胞色素单加氧酶CYP109B2、铁氧蛋白还原酶Fdr_0978和铁氧蛋白Fdx_1499的重组细胞E.coli(pRSFDuet-1-CYP109B2/pETdeut-1-Fdr_0978-Fdx_1499)。

也可将上述重组质粒pFSFDuet-1-CYP109B2-Fdr_0978-Fdx_1499，转化到BL21(DE3)中并在含有抗性Kan(50μg/mL)的LB固体培养培养，得到可以同时表达细胞色素单加氧酶CYP109B2、铁氧蛋白还原酶Fdr_0978和铁氧蛋白Fdx_1499的重组细胞E.coli(pFSFDuet-1-CYP109B2-Fdr_0978-Fdx_1499)。

实施例4蛋白质表达和功能验证

以实施例3中构建得到的重组细胞E.coli(pFSFDuet-1-CYP109B2-Fdr_0978-Fdx_1499)，用于后续生物转化研究。

在超净工作台中将上述蛋白表达重组细胞E.coli(pRSFDuet-1-CYP109B2-Fdr_0978_Fdx_1499)接种于3mL含有50μg/mL卡那霉素的LB液体培养基中在37℃,220rpm下培养大约6～8h，按2％的接种量将种子液转接于50mL含有50μg/mL卡那霉素的TB培养基中，37℃,220rpm下培养大约2h-3h直到OD₆₀₀＝0.6～0.8，在超净工作台中向菌液中加入终浓度为0.2mM的异丙基-β-D-硫代吡喃半乳糖苷(IPTG)在25℃,200rpm条件下诱导培养14-16h。诱导结束后的菌体在15℃，4000rpm离心10min以收集菌体，菌体收集后用100mM pH 8.0的磷酸钾缓冲液清洗菌体两次，再次重悬调OD₆₀₀＝20。用液氮速冻细胞(增强细胞膜通透性，促进底物进入细胞)，室温冻融后用于甾醇转化。

取4mL菌悬液于50mL反应瓶中,并加入终浓度5％的葡萄糖(Glucose)，5％的甘油(Glycerol)，终浓度1U的葡萄糖脱氢酶(GDH)，终浓度1mM的NADP⁺和1mM溶解于二甲基甲酰胺(DMF)的甾醇睾酮，25℃,200rpm的振荡摇床中进行睾酮的生物转化9h，分别在反应1h、5h和9h取样检测。取样的反应液加入等体积(500μL)的乙酸乙酯萃取，1200rpm离心1min，取上层有机相，待乙酸乙酯挥发干后加入500μL的乙腈，过膜处理后用于高效液相色谱(HPLC)分析检测，检测结果如图7所示。

结果显示，反应进行到9h，底物睾酮已完全反应完，HPLC色谱图已检测不到底物峰图，且有四个异于底物的峰出现，说明CYP109B2能够高效催化底物睾酮的转化。

反应产物的分离纯化鉴定：按照上述体系进行大规模的制备反应，生物转化结束后取样，用等体积(50mL)乙酸乙酯萃取产物，有机相中加入无水硫酸钠过夜干燥。使用旋蒸仪在40℃，100rpm和-0.1Kpa的条件下蒸发除去乙酸乙酯，浓缩反应产物。在甲醇和二氯甲烷作为展开剂的条件下，用25×75mm的TLC硅胶板同时分析底物标品和反应产物，摸索底物和产物的分离条件。确定的分离的展开剂条件为甲醇：二氯甲烷＝1：15。装填纯化硅胶柱前(预装柱要保证洁净干燥)，先用展开剂润洗预装柱，再向预装柱中加入经展开剂拌匀的硅胶，边加边用橡胶敲打柱外壁，确保硅胶柱装填均匀，紧实，无气泡。待硅胶平面到达预装柱的4/5时，停止添加硅胶，向硅胶柱中加入3倍柱体积的展开剂，进一步压实硅胶柱，最后将硅胶柱中多余展开剂排出至展开剂液面与硅胶面相切，关闭硅胶柱活塞。采用湿法上柱，沿预装柱管壁小心缓慢加入产物粗品，并向上层产物中加入适当无水硫酸钠覆盖，确保硅胶柱处于无水条件。然后沿硅胶柱管壁缓慢加入展开剂，并打开硅胶柱下端活塞，用小试管收集流出液，并及时取样用TLC硅胶板检测各个试管的产物分布情况。收集只包含目标产物的流出液，并用旋蒸仪进行浓缩结晶，制备产物。用核磁分析分离得到的产物，通过核磁碳谱和核磁氢谱及底物结构确定反应产物的分子结构。

进一步，测定CYP109B2与睾酮反应的动力学参数，具体为：分别构建含CYP109B2、Fdr_0978和Fdx_1499的质粒，表达纯化并测定蛋白质浓度，然后将三种蛋白质按照浓度比1:4:20配成蛋白混合液，并向蛋白混合液中加入终浓度为1mM的MgCl₂、终浓度为5％的葡萄糖和甘油、终浓度为1U的葡萄糖脱氢酶(GDH)，充分混匀后分装于30个1.5mL的EP管中，在这30个EP管中分别加入稀释于二甲基亚砜(DMSO)浓度梯度为25～1000μM的睾酮底物,每个梯度设置三个平行样，于振荡金属浴上30℃，700rpm充分振荡混匀2min。在每个EP管中加入终浓度为1mM的NADP⁺起始反应，控制总反应体系为200μL(用磷酸钾缓冲液补足)，于振荡金属浴上30℃，700rpm充分振荡混匀反应5min后，迅速向各个EP管中加入等体积(200μL)的乙腈终止反应。1200rpm离心2min，用0.22μm的滤膜过滤处理，用于HPLC分析，检测底物反应情况，通过计算蛋白酶的反应速率与底物浓度的关系依据米氏方程测定CYP109B2的动力学参数，其中K_m值为0.21±0.02mM，k_cat值为3.93±0.15min^-1，通过k_cat/k_m衡量其催化活性，即为1.9×10⁴M^-1min^-1。

接着，验证CYP109B2对其他甾体化合物的催化能力，分别以睾酮、去甲睾酮、勃地龙、孕酮、甲基双烯醇酮、雄烯二酮、肾上腺酮、18-甲基双酮、49物、炔孕酮、坎利酮、泼尼松龙、孕烯醇酮和雌二醇等14种甾体化合物为底物，按照上述方法鉴定CYP109B2对于其他甾体化合物的生物转化情况，通过高效液相色谱测定其催化选择性，并进行体系放大的制备反应，采用硅胶柱层析法分离纯化甾体底物的羟基化产物，计算产物制备得率，然后进一步通过质谱和核磁鉴定其分子结构，结果如图8-10所示，图8和图9中的星号为甾体底物对应的出峰位置。结果显示，CYP109B2对包括睾酮、去甲睾酮、勃地龙和甲基双烯醇酮部分甾体化合物具有高效16β羟基化作用，其中对于睾酮的16β羟基化选择性为83％，转化率>99％，产率63％；对去甲睾酮16β羟基化的选择性为92％，转化率在75％左右，产率36％；对勃地龙16β羟基化的选择性为86％，转化率>99％,产率79％；对甲基双烯醇酮16β羟基化的选择性为71％，转化率>99％，产率62％。并且CYP109B2对雄烯二酮、肾上腺酮、18-甲基双酮、49物和炔孕酮甾体底物也同样具备相对高效的催化作用，其中对雄烯二酮、18-甲基双酮、49物的转化率>99％，对肾上腺酮、炔孕酮的转化率>50％。然而，CYP109B2对一些侧链比较大的甾体底物，如孕酮、坎利酮、泼尼松龙、孕烯醇酮和雌二醇未表现出催化活性，说明侧链大的甾体底物进入CYP109B2蛋白酶的活性口袋比较困难。

实施例5实验操作

1、CYP109B2、Fdr_0978和Fdx_1499蛋白的纯化和浓度测定

(1)CYP109B2、Fdr_0978和Fdx_1499蛋白的纯化可通过本领域常规方法获得。制备的纯化的目的蛋白纯酶液用液氮速冻后保存于-80℃，后续备用。-80℃取出的纯酶液在冰上解冻后，用CO差谱分析测定CYP109B2的蛋白酶浓度。Fdr_0978和Fdx_1499蛋白浓度的测定可以使用Bradford蛋白浓度测定试剂盒按照本领域常规方法测定。

(2)取50μL CYP109B2纯酶液，用100mM，pH 8.0的磷酸钾缓冲溶液稀释至2mL，按照每秒钟1个气泡的速率通入CO一分钟，再用移液器分装1mL至另一比色皿中。向其中一个比色皿中加入20mg连二亚硫酸钠，上下颠倒混匀，立即用分光光度计进行波长扫描，波长范围设置为400～500nm，2nm/point。其中没有添加连二亚硫酸钠的一组作为空白对照，另外的作为测定实际P450含量的实验组，分别记录好450nm波长处和490nm波长处相比于空白组的吸光值变化。摩尔消光系数取值0.091M^-1·cm^-1，P450蛋白的浓度按照下列公式计算：

P450蛋白浓度(μmol)＝(ΔA₄₅₀-ΔA₄₉₀)·稀释倍数/0.091M^-1·cm^-1

2、HPLC分析

为了检测甾体化合物的反应情况，使用配备有FAD检测器和Agilent ZorbaxEclipseXDB-C18 column(4.6×250mm,5μm；Agilent Technologies,Santa Clara,CA,USA)色谱柱的SHIMADZU LC2030C系统分析样品。流速1.5mL/min,柱温40℃，进样量10μL。分析程序采用梯度洗脱，洗脱程序如下表所示：

表1甾体底物液相检测梯度洗脱程序

注：流动相A:超纯水流动相B:色谱级甲醇,C:色谱级乙腈.

以上所述，仅为本发明较佳的具体实施方式，但本发明的保护范围并不局限于此，任何熟悉本技术领域的技术人员在本发明揭露的技术范围内，可轻易想到的变化或替换，都应涵盖在本发明的保护范围之内。

序列表

<110> 湖北大学

<120> 一种细胞色素P450单加氧酶CYP109B2及其应用

<160> 22

<170> SIPOSequenceListing 1.0

<210> 1

<211> 405

<212> PRT

<213> 索诺拉沙漠芽孢杆菌(Bacillus sonorensis)

<400> 1

Met Asn Ser Ala Lys Gln Gln Asn Pro Ile Gln Lys Ala Leu Leu Asn

1 5 10 15

Gly Lys Asn Arg Gln Asp Pro Tyr Asp Pro Phe Pro Trp Tyr Glu Lys

20 25 30

Met Arg Lys Glu Ser Pro Val Tyr Tyr Asp Glu Asp Ser Lys Val Trp

35 40 45

Ser Val Phe Leu Tyr Asp Asp Val Lys Arg Val Ile Ser Asp Lys Asp

50 55 60

Phe Phe Ser Asn Gln Phe Pro Gln Leu Glu Ser Gly Asn Thr Phe Ala

65 70 75 80

Lys Thr Met Val Ser Met Asp Pro Pro Lys His Thr Arg Ile Arg Ser

85 90 95

Ile Val Ser Lys Ala Phe Thr Pro Arg Ile Met Lys Glu Trp Glu Pro

100 105 110

Arg Ile Arg Val Leu Thr Asp Glu Leu Leu Gly Lys Ala Arg Gly Arg

115 120 125

Asp Glu Ile Asp Leu Val Gln Asp Phe Ser Tyr Pro Leu Pro Val Met

130 135 140

Val Ile Ser Glu Leu Leu Gly Val Pro Ser Glu His Lys Glu Lys Phe

145 150 155 160

Lys Glu Trp Ser Asp Leu Leu Val Ser Leu Pro Lys Ser Ala Tyr Glu

165 170 175

Glu Asp Val Met Glu Trp Arg Thr Ile Arg Asn Lys Gly Glu Glu Asp

180 185 190

Leu Ser Ala Phe Phe Glu Asn Val Ile Glu Glu Lys Arg Arg Asn Leu

195 200 205

Gly Asp Asp Ile Ile Ser Leu Leu Ile Gln Ala Glu Glu Asp Gly Asp

210 215 220

Arg Leu Ser Pro Asp Glu Leu Val Pro Phe Cys Asn Leu Leu Leu Leu

225 230 235 240

Ala Gly Asn Glu Thr Thr Thr Asn Leu Ile Ser Asn Met Val Tyr Ser

245 250 255

Ile Leu Glu Lys Pro Gly Thr Phe Asp Glu Leu Ala Asn Gln Pro Asp

260 265 270

Leu Ile Pro Gln Ala Val Glu Glu Ala Val Arg Phe Arg Ala Pro Ala

275 280 285

Pro Met Ile Val Arg Phe Val Gln Gln Asp Thr Ala Ile Arg Gly Val

290 295 300

Asn Leu Lys Lys Gly Glu Gly Val Ile Ala Phe Leu Ala Ser Ala Asn

305 310 315 320

Arg Asp Glu Ala Ala Phe Glu Arg Ala His Glu Phe Asp Ile His Arg

325 330 335

His Pro Asn Arg His Ile Gly Phe Gly His Gly Ile His Phe Cys Leu

340 345 350

Gly Ala Pro Leu Ala Arg Leu Glu Thr Lys Ile Ala Leu Glu Ala Leu

355 360 365

Leu Lys Gln Tyr Ser Ala Met Glu Thr Ile Ser Thr Glu Pro Met Ala

370 375 380

Asn Ser Ser Met Tyr Gly Leu Lys His Phe Arg Leu His Val Lys Glu

385 390 395 400

Ala Leu Leu Ser Ser

405

<210> 2

<211> 1218

<212> DNA

<213> 索诺拉沙漠芽孢杆菌(Bacillus sonorensis)

<400> 2

atgaactcgg caaaacagca gaaccctatt caaaaagctc ttctaaacgg aaaaaaccgg 60

caggacccgt atgatccatt tccctggtac gaaaaaatgc gcaaggaatc acctgtctac 120

tatgatgagg acagcaaagt gtggagcgtg tttctttatg atgatgtcaa aagagtgatc 180

agcgacaaag actttttttc aaatcaattc cctcagcttg aatccggcaa tacatttgcg 240

aaaacaatgg tcagcatgga tccgccaaaa cataccagaa tcaggtcgat tgtaagcaaa 300

gctttcacac cgcgcatcat gaaagagtgg gaaccgcgca tccgggtgct gacggatgaa 360

ctgcttggaa aggcccgcgg ccgggacgaa atcgacctcg ttcaggattt ttcttatcct 420

cttcccgtta tggtcatttc agaattgctg ggtgttccat ctgagcataa ggagaaattc 480

aaagaatggt cagatctatt agtaagcttg ccgaagagcg cttatgaaga ggacgtcatg 540

gagtggcgga ccattaggaa taaaggtgaa gaagacttaa gcgcgttttt tgaaaacgtc 600

attgaagaaa aaagacggaa tctgggagat gatatcattt cacttttaat tcaagctgaa 660

gaagatgggg acaggctttc tcctgatgaa ttggttccgt tttgcaatct gctgctttta 720

gctggcaatg agacaacgac gaatttgatt tcaaatatgg tttacagcat tcttgaaaaa 780

ccgggtacgt ttgacgagtt ggcaaatcag cctgacctga tcccccaggc cgtcgaagaa 840

gctgtccgtt ttcgcgcgcc ggcgccgatg atcgtgcgct tcgtccagca ggataccgca 900

atcaggggag tgaatttgaa aaagggagag ggagtgatcg cttttcttgc ctcagccaac 960

cgggatgaag ctgcatttga acgggcgcac gaatttgata ttcaccgcca tccaaaccgg 1020

cacatcggct ttggccacgg catccatttc tgtttgggcg cccctttggc gaggctggag 1080

acaaaaatcg cgctggaggc gctcctcaag caatattccg ctatggaaac gatctcgaca 1140

gagccgatgg ccaacagcag catgtacggt ctgaaacatt ttcgcctcca tgtcaaagag 1200

gcgctgcttt catcatga 1218

<210> 3

<211> 24

<212> DNA

<213> 人工序列(Artificial Sequence)

<400> 3

atgaactcgg caaaacagca gaac 24

<210> 4

<211> 25

<212> DNA

<213> 人工序列(Artificial Sequence)

<400> 4

tcatgatgaa agcagcgcct ctttg 25

<210> 5

<211> 22

<212> DNA

<213> 人工序列(Artificial Sequence)

<400> 5

atgttgaatg cgagtgtggc tg 22

<210> 6

<211> 27

<212> DNA

<213> 人工序列(Artificial Sequence)

<400> 6

ctagtaggtt tcaacatgcc aacgacc 27

<210> 7

<211> 23

<212> DNA

<213> 人工序列(Artificial Sequence)

<400> 7

atggcaacct acaaggttac gct 23

<210> 8

<211> 31

<212> DNA

<213> 人工序列(Artificial Sequence)

<400> 8

ctagtagagg tcttcttctt tgtgggtttc g 31

<210> 9

<211> 20

<212> DNA

<213> 人工序列(Artificial Sequence)

<400> 9

gcggccgcat aatgcttaag 20

<210> 10

<211> 20

<212> DNA

<213> 人工序列(Artificial Sequence)

<400> 10

aagcttgtcg acctgcaggc 20

<210> 11

<211> 39

<212> DNA

<213> 人工序列(Artificial Sequence)

<400> 11

caggtcgaca agcttatgaa ctcggcaaaa cagcagaac 39

<210> 12

<211> 42

<212> DNA

<213> 人工序列(Artificial Sequence)

<400> 12

gcattatgcg gccgcttacg cctggaacga taaagatgcc tc 42

<210> 13

<211> 20

<212> DNA

<213> 人工序列(Artificial Sequence)

<400> 13

gcctgcaggt cgacaagctt 20

<210> 14

<211> 18

<212> DNA

<213> 人工序列(Artificial Sequence)

<400> 14

gcgccgagct cgaattcg 18

<210> 15

<211> 40

<212> DNA

<213> 人工序列(Artificial Sequence)

<400> 15

cgaattcgag ctcggcgcat gttgaatgcg agtgtggctg 40

<210> 16

<211> 47

<212> DNA

<213> 人工序列(Artificial Sequence)

<400> 16

gatatatctc cttaggtacc ctagtaggtt tcaacatgcc aacgacc 47

<210> 17

<211> 43

<212> DNA

<213> 人工序列(Artificial Sequence)

<400> 17

ggtacctaag gagatatatc atggcaacct acaaggttac gct 43

<210> 18

<211> 46

<212> DNA

<213> 人工序列(Artificial Sequence)

<400> 18

gcttgtcgac ctgcaggcgt agaggtcttc ttctttgtgg gtttcg 46

<210> 19

<211> 19

<212> DNA

<213> 人工序列(Artificial Sequence)

<400> 19

ggccggccac gcgatcgct 19

<210> 20

<211> 36

<212> DNA

<213> 人工序列(Artificial Sequence)

<400> 20

gatatccaat tgagatctgc catatgtata tctcct 36

<210> 21

<211> 37

<212> DNA

<213> 人工序列(Artificial Sequence)

<400> 21

tctcaattgg atatcatgtt gaatgcgagt gtggctg 37

<210> 22

<211> 46

<212> DNA

<213> 人工序列(Artificial Sequence)

<400> 22

atcgcgtggc cggccctagt agaggtcttc ttctttgtgg gtttcg 46