阅读说明：本技术 一种天然Rakicidins类化合物Rakicidin B1-2及其发酵提取方法 (Natural Rakicidins compound Rakicidin B1-2 and fermentation extraction method thereof ) 是由 陈丽 林风 江红 赵薇 周剑 江宏磊 连云阳 于 2019-08-12 设计创作，主要内容包括：本发明属于天然化合物技术领域,具体涉及一种天然Rakicidins类化合物Rakicidin B1-2及其发酵提取方法。本发明从海洋小单孢菌发酵液中分离得到新的Rakicidins组分Rakicidin B1-2,该化合物结构与已知的Rakicidin B1相比,在于11、14位开环,且在11位接入乙氧基。本发明天然化合物Rakicidin B1-2对常氧和乏氧条件下培养的人结肠癌细胞HCT-8和人胰腺癌细胞PANC-1均具有一定的体外抑制作用,对甲氧西林耐药金黄色葡萄球菌、艰难梭菌和万古霉素耐药粪肠球菌等10株厌氧菌均具有一定的抑制活性,是一种结构新颖活性较好的次级代谢产物,具有较高的药用价值。(The invention belongs to the technical field of natural compounds, and particularly relates to a natural Rakicidins compound Rakicidin B1-2 and a fermentation extraction method thereof. The invention separates new Rakicidins component Rakicidin B1-2 from marine micromonospora fermentation liquor, and compared with the known Rakicidin B1, the structure of the compound is characterized in that 11 and 14 positions are opened, and an ethoxy group is connected to the 11 position. The natural compound Rakicidin B1-2 has a certain in-vitro inhibition effect on human colon cancer cells HCT-8 and human pancreatic cancer cells PANC-1 cultured under the conditions of normal oxygen and hypoxia, has a certain inhibition activity on 10 anaerobic bacteria such as methicillin-resistant staphylococcus aureus, clostridium difficile, vancomycin-resistant enterococcus faecalis and the like, is a secondary metabolite with a novel structure and good activity, and has a high medicinal value.)

一种天然Rakicidins类化合物Rakicidin B1-2及其发酵提取 方法

技术领域

本发明属于天然化合物技术领域，具体涉及一种天然Rakicidins类化合物Rakicidin B1-2及其发酵提取方法。

背景技术

目前，已从海洋微生物的代谢产物中分离出几百种生物活性物质，其中部分是可能有临床应用价值的具有抗肿瘤活性或抑菌活性的抗生素， Rakicidins化合物即是其中一类重要的化合物，目前已报道从小单孢菌和链霉菌中发现了一系列具有抗肿瘤活性或抑菌活性的Rakicidins化合物。

近年来，文献已报道海洋Micromonospora sp.FIM 02-523能够产生包括Rakicidin A、B、B1等在内的一系列具有抗肿瘤活性的脂肽类化合物。 2006年，本课题组在国内首先报道从该株小单孢菌中分离到化合物 Rakicidin A和B。研究发现，Rakicidin A具有卓越的乏氧选择性抗肿瘤细胞活性，在乏氧条件下抗结肠癌HCT-8细胞活性是常氧条件下的17.5倍，被许多同行认为是一个极富开发前景的抗乏氧肿瘤细胞及抗CSC药物；而Rakicidin B的体外抗肿瘤活性考察也显示，其对肿瘤细胞株K562、L929 的生长有明显抑制作用。2016年本课题组又得到一种新的化合物Rakicidin B1，实验采用移植人结肠癌HCT-8肿瘤斑马鱼模型测试了Rakicidin A、B、 B1的体内抑瘤活性，结果表明，RakicidinA、B、B1均对斑马鱼体内的HCT-8 细胞移植瘤均有抑制活性，且初步试验表明，其抗乏氧肿瘤细胞是基于其能有效抑制HIF-1(乏氧诱导因子-1)的表达。在先研究进一步测定了Rakicidin A、B、B1化合物对HCT-8、MGC803、A549、A375、HepG2和 CASKI五种人肿瘤细胞株的细胞毒活性，结果显示，已分离的三个化合物对这些肿瘤细胞株均具有显著的抑制活性。2018年，本课题组又从海洋 Micromonospora sp.FIM 02-523菌株的代谢物中分离纯化到另外三个新化合物Rakicidin G、H、I，活性实验结果显示，Rakicidin G、H、I化合物均对人结肠癌细胞HCT-8和人胰腺癌细胞PANC-1有较强的细胞毒活性，且在乏氧条件下更强，并且三个化合物对多种革兰氏阳性厌氧菌也有较好的抑制活性。可见，Rakicidins化合物具有极好的临床应用前景。

发明内容

为此，本发明所要解决的技术问题在于提供一种天然Rakicidins类化合物Rakicidin B1-2，并进一步公开其发酵提取方法。

为解决上述技术问题，本发明所述的一种天然Rakicidins类化合物 RakicidinB1-2及其药学上可接受的盐，所述化合物Rakicidin B1-2具有如下式(Ⅰ)所示的结构：

本发明还公开了一种制备所述天然Rakicidins类化合物Rakicidin B1-2 的方法，所述Rakicidin B1-2是由保藏编号为CGMCC No.14823的海洋小单孢菌株Micromonospora sp.FIM-R160609经发酵及分离获得。

具体的，本发明所述海洋小单孢菌株Micromonospora sp.FIM-R160609 保藏于中国微生物菌种保藏管理委员会普通微生物中心，保藏地址：北京市朝阳区北辰西路1号院3号，保藏编号为CGMCC No.14823，保藏日期为2017年10月16日。

优选的，所述的制备所述天然Rakicidins类化合物Rakicidin B1-2的方法，包括如下步骤：

(1)取保存的海洋小单孢菌株Micromonospora sp.FIM-R160609进行发酵，收集发酵液进行固液分离获得菌丝体；将所得菌丝体用甲醇或乙醇浸泡，收集浸泡液；

(2)以D3502大孔树脂吸附柱进行层析，并分别以67％和75％的乙醇 -水溶液进行梯度洗脱，收集75％乙醇-水洗脱液组分；

(3)将收集的洗脱液以HZ816树脂吸附柱进行层析，并分别以66％、 69％和73％的乙醇-水溶液进行梯度洗脱，收集含有Rakicidin B1-2的73％的乙醇-水洗脱液组分；

(4)以乙酸乙酯或二氯甲烷萃取所得洗脱液，浓缩获得粗品后用甲醇溶解，进行半制备液相色谱分离，并以体积比710：290的乙腈-水进行洗脱，分段收集，即得。

具体的，所述步骤(2)中，所述D3502大孔树脂吸附柱的径高比为1： 5-1：10，装柱体积2.5-4.0L，吸附流速为30-45ml/min。

具体的，所述步骤(3)中，所述HZ816树脂吸附柱径高比为1：5-1： 8，装柱体积2.2-3L，吸附流速为25-35ml/min。

具体的，所述步骤(4)中，所述半制备液相色谱为Welch Material，5μm， 250mm×10mm，控制洗脱液流速8ml/min。

本发明还公开了所述天然Rakicidins类化合物Rakicidin B1-2及其药学上可接受的盐用于制备具有抗肿瘤活性和抗临床致病厌氧菌活性药物的用途。

具体的，所述肿瘤包括人结肠癌、人胰腺癌；所述致病厌氧菌包括甲氧西林耐药金黄色葡萄球菌、万古霉素中度敏感金黄色葡萄球菌、万古霉素耐药粪肠球菌和艰难梭菌。

具体的，所述天然Rakicidins类化合物Rakicidin B1-2及其药学上可接受的盐的日服用剂量为1-5000mg/天，也可根据剂型的不同和疾病严重程度，使用剂量超出该范围。

本发明还公开了一种治疗致病厌氧菌感染疾病的药物，以所述天然 Rakicidins类化合物Rakicidin B1-2及其药学上可接受的盐为活性成分，并添加药学上可接受的载体。

具体的，所述药物可以是普通片剂或胶囊、缓释片剂或胶囊、控释片剂或胶囊、口服液、注射剂等制剂学上常规的制剂形式。

本发明还公开了海洋小单孢菌株Micromonospora sp.FIM-R160609用于发酵制备天然Rakicidins类化合物Rakicidin B1-2的用途，所述海洋小单孢菌株Micromonosporasp.FIM-R160609已保藏于中国微生物菌种保藏管理委员会普通微生物中心，其保藏编号为CGMCC No.14823。

本发明从海洋小单孢菌发酵液中分离得到新的Rakicidins组分 Rakicidin B1-2，该化合物结构与已知的Rakicidin B1相比，在于11、14 位开环，且在11位接入乙氧基。本发明天然化合物Rakicidin B1-2对常氧和乏氧条件下培养的人结肠癌细胞HCT-8和人胰腺癌细胞PANC-1均具有一定的体外抑制作用，对甲氧西林耐药金黄色葡萄球菌、艰难梭菌和万古霉素耐药粪肠球菌等10株厌氧菌均具有一定的抑制活性，是一种结构新颖活性较好的次级代谢产物，具有较高的药用价值。

实验例

1、抗肿瘤活性测试

将提取得到的Rakicidin B1-2样品溶解在DMSO中使得溶度达到 1ug/ml，再分别稀释使得终浓度为0.5ug/ml、0.25ug/ml、0.125ug/ml、 0.0625ug/ml、0.03125ug/ml、0.015625ug/ml。

普通培养：取处于指数增长期的人结肠癌细胞HCT-8、人胰腺癌细胞 PANC-1分别种在96孔板里(细胞浓度为HCT-8 5.0×10⁴个/ml，PANC-1 4.0×10⁴个/ml，100ul/孔)，培养24hr使其贴壁，加100ul/孔带药新鲜培养基，每个浓度设3个复孔，并设空白对照孔(只加培养基)作为阴性对照，同样设3个复孔。继续培养至48hr，终止培养。

分别将Rakicidin B1-2样品溶解在DMSO中使得溶度达到1ug/ml，再分别稀释使得终浓度为0.4444ug/ml、0.148148ug/ml、0.0493827ug/ml、 0.0164609ug/ml、0.00548697ug/ml、0.00182899ug/ml。

乏氧培养：取处于指数增长期的人肠癌细胞HCT-8、人胰腺癌细胞 PANC-1分别种在96孔板里(细胞浓度为HCT-8 5.0×10⁴个/ml，PANC-1 4.0×10⁴个/ml，100ul/孔)，乏氧通气30分钟，关闭通气阀门，放入培养箱37℃，培养24hr使其贴壁，加100ul/孔带药新鲜培养基，每个浓度设3 个复孔，并设空白对照孔(只加培养基)作为阴性对照，同样设3个复孔。乏氧通气30分钟，关闭通气阀门，放入培养箱37℃，继续培养至48hr，终止培养。

MTT法检测：将终止培养的细胞，每孔加CCK-810ul，在培养箱继续培养2小时，弃上清，每孔加入150ul DMSO溶液，摇床10分钟轻轻地混匀，在450nm波长下酶标仪读出每孔的OD值，并计算抑制率。通过对抑制率的换算，使用SPSS软件计算出IC₅₀值，结果见下表1和表2所示。抑制率(％)＝(阴性对照组OD值-实验组OD值)/阴性对照组OD值×100％。

表1 Rakicidin B1-2乏氧状态下对人结肠癌细胞HCT-8的抑制活性

表2 Rakicidin B1-2乏氧状态下对人胰腺癌细胞PANC-1的抑制活性

上述结果表明，本发明化合物Rakicidin B1-2在常氧和乏氧状态下均具有一定的抗肿瘤活性。

2、抗致病厌氧菌活性测试

(1)葡萄球菌及肠球菌的体外抗菌试验方法

样品的配制：取化合物Rakicidin B1-2在DMSO中溶解，使其测试终浓度为：16、8、4、2、1、0.5、0.25、0.125、0.06、0.03、0.015、0.008ug/ml。

接种物的配制：制备浓度相当于0.5麦氏标准比浊管的混悬液，用肉汤稀释备用(葡萄球菌：MH肉汤；肠球菌：脑心浸液肉汤)，再于各孔内加入100μl的受试菌液(每孔容量200μl)，菌液最终浓度约为10⁵CFU/ml。密封后置于35-37℃培养箱内培养18-24h。

MIC测定：以在小孔内完全抑制细菌生长的最低药物浓度为其最低抑菌浓度，测试结果见下表3所示。

(2)艰难梭菌的体外抗菌活性测试方法

接种物制备与接种：制备浓度相当于0.5麦氏标准比浊管的混悬液，以多点接种器吸取制备好菌液(1-2μl)[使用添加5％(V/V)脱纤维羊血、氯化血红素(5mg/L)和维生素K1(1mg/L)的布氏培养基]接种于琼脂平板表面(将已倍比稀释的不同浓度的抗菌药物分别加入已高压溶解灭菌，并在60℃水浴中平衡的强化布氏肉汤琼脂中，充分混匀，倾倒平板，琼脂厚度3-4mm。按1：9比例配制药物琼脂平板，设置0.008-16mg/L 12个药物浓度梯度)，每点接种菌量约为10⁵CFU，形成直径为5-8mm的菌斑。接种后置于厌氧环境中35℃孵育48h，观察结果。

MIC测定：将平板置于暗色、无反光物体表面上判断试验终点，以抑制细菌生长的最低药物浓度为MIC。与生长对照比较抑制80％以上细菌生长的最低药物浓度作为终点浓度，测试结果见下表3所示。

表3 Rakicidin B1-2抗菌活性

上述抗菌测试结果表明，化合物Rakicidin B1-2对甲氧西林耐药金黄色葡萄球菌、艰难梭菌和万古霉素耐药粪肠球菌等10株厌氧菌均具有一定的抑制活性。

具体实施方式

实施例1 Rakicidin B1-2的制备

取保存的海洋小单孢菌菌株Micromonospora sp.FIM-R160609(保藏编号为CGMCCNo.14823)进行发酵，具体发酵条件可参照中国专利 CN108300672B公开的发酵方法，具体包括：取新鲜培养的海洋小单孢菌 FIM-R160609斜面孢子刮取后制成菌悬液接种到摇瓶种子培养中，在32℃、 250rpm培养48小时，后按5％接种量接种到摇瓶发酵培养基中，30℃、250rpm培养120小时后放瓶，HPLC测定发酵产物。

种子培养基配方(质量分数)：麦芽糊精2.0％，葡萄糖1.0％，黄豆饼粉1.0％，酵母粉2.0％，MgSO₄·7H₂O 0.05％，KH₂PO₄ 0.05％，CaCO₃ 0.3％，自来水配制，调pH值7.0-7.5。

发酵培养基配方(质量分数)：麦芽糊精5.0％，葡萄糖1.0％，黄豆饼粉2.0％，酵母粉1.5％，硫酸铵0.8％，MgSO₄·7H₂O 0.05％，NaCl 0.5％， CaCO₃ 0.5％，自来水配制，调pH值7.5。

发酵结束后收集发酵液并于4500rpm离心15min后，获得菌丝渣，把获得的菌丝渣用2倍体积的90％的乙醇过夜浸泡2次，将含有酒精的菌丝渣再次于4500rpm离心15min后将上清液合并，得到发酵提取液。

取发酵提取液45L，并稀释至乙醇浓度为55％，随后以D3502大孔树脂吸附柱层析(径高比为1：8，装柱体积3.0L)，吸附流速为33ml/min，分别用67％和75％的乙醇水洗脱3BV、8.5BV(倍柱体积)，用HPLC(YMC ODS C₁₈柱，5μm,250mm×4.6mm)检测洗脱液(乙腈-水700：300，柱温 40℃，流速1.0mL/min，波长262nm)，收集含有Rakicidin B1-2的75％的乙醇洗脱液(23L)。

将上述收集的洗脱液稀释至乙醇浓度为60％，以HZ816树脂吸附柱进行层析(径高比为1：6，装柱体积2.5L)，控制吸附流速为30ml/min，用 66％、69％和73％的乙醇-水溶液进行洗脱，分别洗脱3BV、2.5BV和7BV，以HPLC(YMC ODS C₁₈柱，5μm,250mm×4.6mm)跟踪检测洗脱液(乙腈-水700：300，柱温40℃，流速1.0mL/min，波长262nm)，收集含有Rakicidin B1-2的73％的乙醇水溶液(13.8L)。

取收集的洗脱液浓缩至约1/3体积，用等体积二氯甲烷萃取三次，减压浓缩，得粗品，并将所得粗品，用甲醇溶解，使用半制备液相色谱(5μm， 250mm×10mm，WelchMaterial)，以体积比710：290的乙腈-水进行洗脱，控制流速8ml/min，HPLC检测收集液，得到样品Rakicidin B1-2。

经观察及检测，本实施例制得的所述化合物Rakicidin B1-2为白色无定型粉末，可溶于氯仿、甲醇、DMSO，不溶于水。

经高分辨质谱(HR-ESI-MS)检测结果显示，其分子离子峰[M+H]⁺为 669.4433，[M+Na]⁺为691.4248，推断其分子式为C₃₄H₆₀N₄O₉，不饱和度为 7。

¹HNMR检测结果显示，该化合物有2个双键质子[δ_H 7.44(1H,d,J＝ 15.5Hz),6.57(1H,d,J＝15.5Hz)]，6个可交换质子，包括[δ_H 7.40(1H,d,J＝9.0Hz),6.84(1H,s),6.81(1H,s),5.79(1H,s)]，6个甲基质子[δ_H3.04(3H,s), 1.25(3H,t,J＝6.0Hz),0.99(3H,d,J＝7.0Hz),0.85(3H,t,J＝6.9Hz),0.83 (3H,d,J＝6.6Hz),0.82(3H,d,J＝6.6Hz)]。

¹³CNMR和DEPT135检测结果显示，该分子含有34个碳信号，包括6 个季碳(δ_C176.1,169.6,169.4,168.5,165.3,164.7)，2个双键碳(δ_C 134.9, 130.6)，6个sp³次甲基碳[包含四个连氧碳原子(δ_C 78.6,71.6,55.4,42.0)]， 14个sp³亚甲基碳和6个甲基碳原子(δ_C36.6,19.6,14.8,14.5,13.8,11.7)。

所有的氢质子通过HSQC谱¹H-¹³C相关进行指认。¹H-¹H COSY相关谱和质子的耦合常数显示该化合物含有4个独立的自旋耦合体系： NH-2-C-2-C-3-OH-3,C-9-C-10,C-32-C-15-C-16-C-17(C-33)-C-18-C-19和 C-28-C-29(C-34)-C-30-C-31。结合¹H-¹H COSY和HMBC可知，H-2与C-1/C-5相关，H-3与C-4相关，OH-3与C-2/C-3相关，Ha-6与C-5/C-7相关，H-7与C-6/C-8相关，H-9与C-8/C-11相关，H-10与C-8/C-11相关， H-12与C-11/C-13相关，H-16与C-1相关，H-32与C-14/C-15/C-16相关， H-33与C-16/C-17/C-18相关，以及H-31与C-29/C-30相关，H-34与 C-29/C-30相关，通过对上述核磁数据、不饱和度、分子式和化学位移的分析，氢和碳的化学位移列于表4。

表4 氢和碳的化学位移

通过对上述核磁数据、不饱和度、分子式和化学位移的分析，得出化合物1的化学结构如式(Ⅰ)所示。可见，本实施例中经发酵提取制得的化合物Rakicidin B1-2结构正确。

实施例2 Rakicidin B1-2的制备

取保存的小单孢菌菌株Micromonospora sp.FIM-R160609进行发酵，发酵过程同实施例1，收集发酵液并于4500rpm离心15min后，获得菌丝渣，把获得的菌丝渣用2倍体积的90％的乙醇过夜浸泡2次，将含有酒精的菌丝渣再次于4500rpm离心15min后将上清液合并，得到发酵提取液。

取发酵提取液30L，并稀释至乙醇浓度为50％，随后以进行D3502大孔树脂吸附柱层析(径高比为1：5，装柱体积2.5L)，吸附流速为45ml/min，分别用67％和75％的乙醇水洗脱2.5BV、6BV，用HPLC(YMC ODS C₁₈柱，5μm,250mm×4.6mm)检测洗脱液(乙腈-水700：300，柱温40℃，流速1.0mL/min，波长262nm)，收集含有RakicidinB1-2的75％的乙醇洗脱液(12.5L)。

将上述收集的洗脱液稀释至乙醇浓度为55％，以HZ816树脂吸附柱进行层析(径高比为1：8，装柱体积3.0L)，控制吸附流速为35ml/min，用 66％、69％和73％的乙醇-水溶液进行洗脱，分别洗脱3BV、2BV和4.5BV，以HPLC(YMC ODS C₁₈柱，5μm,250mm×4.6mm)跟踪检测洗脱液(乙腈-水700：300，柱温40℃，流速1.0mL/min，波长262nm)，收集含有Rakicidin B1-2的73％的乙醇水溶液(12L)。

取收集的洗脱液浓缩至约1/3体积，用等体积乙酸乙酯萃取三次，减压浓缩，得粗品，并将所得粗品，用甲醇溶解，使用半制备液相制备(5μm， 250mm×10mm，WelchMaterial)，以体积比710：290的乙腈-水进行洗脱，控制流速8ml/min，HPLC(YMC ODS C₁₈柱，5μm,250mm×4.6mm)检测收集液，得到样品Rakicidin B1-2。

经检测，本实施例方案制得产物结构正确。

实施例3 Rakicidin B1-2的制备

取保存的小单孢菌菌株Micromonospora sp.FIM-R160609进行发酵，发酵过程同实施例1，收集发酵液并于4500rpm离心15min后，获得菌丝渣，把获得的菌丝渣用2倍体积的90％的乙醇过夜浸泡2次，将含有酒精的菌丝渣再次于4500rpm离心15min后将上清液合并，得到发酵提取液。

取发酵提取液55L，并稀释至乙醇浓度为60％，随后以进行D3502大孔树脂吸附柱层析(径高比为1：8，装柱体积4.0L)，吸附流速为30ml/min，分别用67％和75％的乙醇水洗脱3.5BV、8BV，用HPLC检测(YMC ODS C₁₈柱，5μm,250mm×4.6mm)洗脱液(乙腈-水700：300，柱温40℃，流速1.0mL/min，波长262nm)，收集含有Rakicidin B1-2的75％的乙醇洗脱液(29.4L)。

将上述收集的洗脱液稀释至乙醇浓度为60％，以HZ816树脂吸附柱进行层析(径高比为1：5，装柱体积2.2L)，控制吸附流速为25ml/min，用 66％、69％和73％的乙醇-水溶液进行洗脱，分别洗脱2.5BV、3BV和6BV，以HPLC(YMC ODS C₁₈柱，5μm,250mm×4.6mm)跟踪检测洗脱液(乙腈-水700：300，柱温40℃，流速1.0mL/min，波长262nm)，收集含有Rakicidin B1-2的73％的乙醇水溶液(11.5L)。

取收集的洗脱液浓缩至约1/3体积，用等体积二氯甲烷萃取三次，减压浓缩，得粗品，并将所得粗品，用甲醇溶解，使用半制备液相制备(5μm， 250mm×10mm，WelchMaterial)，以体积比710：290的乙腈-水进行洗脱，控制流速8ml/min，HPLC(YMC ODS C₁₈柱，5μm,250mm×4.6mm)检测收集液，得到样品Rakicidin B1-2。

经检测，本实施例方案制得产物结构正确。

显然，上述实施例仅仅是为清楚地说明所作的举例，而并非对实施方式的限定。对于所属领域的普通技术人员来说，在上述说明的基础上还可以做出其它不同形式的变化或变动。这里无需也无法对所有的实施方式予以穷举。而由此所引伸出的显而易见的变化或变动仍处于本发明创造的保护范围之中。