阅读说明：本技术 胎儿游离dna的富集方法 (Method for enriching free DNA of fetus ) 是由 赵军 方楠 林少航 贾晋红 王伟伟 伍启熹 王建伟 刘倩 唐宇 于 2019-11-29 设计创作，主要内容包括：本发明提供了一种胎儿游离DNA的富集方法。该富集方法包括：采用20～33bp的Y型接头与游离DNA进行连接,得到总游离DNA的连接片段；采用磁珠对总游离DNA的连接片段进行纯化并回收50-150bp的游离DNA对应的连接片段,得到富集的胎儿游离DNA。该富集方法针对游离DNA中胎儿游离DNA集中在50-150bp这一特点,通过对二代测序文库构建过程中的操作步骤进行调整,对接头进行截短,并去除大于150bp的游离DNA片段,富集50-150bp的游离DNA片段,从而实现对于胎儿游离DNA的富集。(The invention provides a method for enriching free DNA of a fetus. The enrichment method comprises the following steps: connecting the free DNA with a Y-shaped joint of 20-33bp to obtain a connecting fragment of the total free DNA; purifying the connecting fragment of the total free DNA by adopting magnetic beads, and recovering the connecting fragment corresponding to the free DNA with the length of 50-150bp to obtain the enriched fetal free DNA. Aiming at the characteristic that the fetal free DNA in the free DNA is concentrated in 50-150bp, the enrichment method realizes the enrichment of the fetal free DNA by adjusting the operation steps in the construction process of the second-generation sequencing library, truncating the joint, removing the free DNA fragments larger than 150bp and enriching the free DNA fragments of 50-150 bp.)

胎儿游离DNA的富集方法

技术领域

本发明涉及产前筛查领域，具体而言，涉及一种胎儿游离DNA的富集方法。

背景技术

产前筛查对于降低出生缺陷具有重要的意义。它不仅可以筛查21、18和13染色体三体，它还可以对染色体非整倍体(微缺失、微重复)引起的疾病进行筛查。此外，它也有助于单基因病(罕见病)的预防也有重要的意义。提高胎儿游离DNA在总游离DNA中所占比例，对于提高产前筛查的准确性具有重要的意义。

现有针对外周血中胎儿游离DNA的富集方法有很多中，总结起来有以下几类：

第一类：通过分离有核红细胞实现对胎儿DNA的富集

成人的红细胞中无细胞核，不含有DNA。胎儿的红细胞中含有细胞核，存在基因组DNA序列。通过从母体血液中分离有核红细胞，可以实现对胎儿游离DNA的富集。

该方法的局限性在于：1.技术要求高；2.样品体积需求较大，孕妇难于接受；3.分离有核红细胞周期长，难于实现自动化；4.成功率低；5.成本高。

第二类：通过甲基化实现对cffDNA的富集

与成人相比，胎儿游离DNA中含有较多的甲基化修饰。通过对甲基化的DNA的捕获，可以富集胎儿游离DNA。

该方法的局限性在于：1.技术繁琐、难度大；2.胎儿游离DNA筛选成本高；3.难于实验自动化。

第三类：基于cffDNA大小的筛选方案

母亲来源的cfDNA的峰值在160～170bp之间，小于150bp的游离DNA中，胎儿来源的游离DNA所占比例较高。通过对小于150bp游离DNA的筛选，可以提高胎儿游离DNA在总游离DNA中所占的比例，从而实现对胎儿游离DNA的富集。

人们通常采用两种方案对较小的游离DNA进行筛选。

1.对游离DNA或游离DNA文库进行琼脂糖电泳，之后通过切胶对小于150bp的游离DNA片段进行筛选；

2.通过选择性纯化回收磁珠对游离DNA或游离DNA文库进行筛选，去除大于150bp的游离DNA文库，回收较小的游离DNA片段；

这类筛选方案的局限性在于：

1.通过切胶回收对DNA片段进行筛选回收时，DNA大小判断不准确、技术可重复性差；

2.通过选择性纯化回收磁珠对游离DNA或文库进行筛选时，在Illumina测序建库体系中会产生大量的接头二聚体污染，降低测序质量以及reads的有效利用率。

目前二代测序领域，illumina测序仪器市场占比大于70％，居于统治地位。基于Illumina测序仪的文库构建时会产生长度为120bp的接头二聚体。在进行胎儿游离DNA富集时需要回收较小的游离DNA片段(50-150bp)，加入120bp的接头后，170bp的文库片段与120bp的接头二聚体难以用选择性纯化磁珠区分，会造成文库中残留大量接头二聚体或小的游离DNA片段，未能得到充分的富集。

综上可知，现有的富集方法存在效率低的缺陷。

发明内容

本发明的主要目的在于提供一种胎儿游离DNA的富集方法，以解决现有技术中胎儿游离DNA富集效率低的问题。

为了实现上述目的，根据本发明的一个方面，提供了一种胎儿游离DNA的富集方法，该富集方法包括：采用20～33bp的Y型接头与游离DNA进行连接，得到总游离DNA的连接片段；采用磁珠对总游离DNA的连接片段进行纯化并回收50-150bp的游离DNA对应的连接片段，得到富集的胎儿游离DNA。

进一步地，对总游离DNA的连接片段进行纯化并回收50-150bp的游离DNA对应的连接片段，得到富集的胎儿游离DNA包括：向总游离DNA的连接片段中加入0.8-1.2倍连接片段体积的磁珠去除长度大于150bp的游离DNA对应的连接片段，得到第一纯化片段；向第一纯化片段中加入磁珠及异丙醇，并通过控制两次加入磁珠的总量达到第一纯化片段的体积的1.2-1.8倍，加入的异丙醇的体积为第一纯化片段体积的0.2-2.0倍，优选0.5-0.9倍，从而回收50-150bp的游离DNA对应的连接片段，得到富集的胎儿游离DNA。

进一步地，对连接片段进行纯化，并回收50-150bp的游离DNA对应的连接片段，得到富集的胎儿游离DNA包括：对总游离DNA的连接片段进行全部回收，得到回收产物；对回收产物中的大于150bp的游离DNA对应的连接片段进行去除，得到第二纯化片段；回收第二纯化片段中50-150bp的游离DNA对应的连接片段，得到富集的胎儿游离DNA。

进一步地，对总游离DNA的连接片段进行全部回收，得到回收产物包括：通过向总游离DNA的连接片段中加入1.0-2.0倍，优选1.2-1.8倍总游离DNA的连接片段体积的磁珠和0.2-2.0倍，优选0.5-1.0倍总游离DNA的连接片段体积的异丙醇，从而对总游离DNA的连接片段进行全部回收，得到回收产物。

进一步地，对回收产物中的大于150bp的游离DNA对应的连接片段进行去除，得到第二纯化片段包括：通过向回收产物中加入1.0-1.5倍，优选1.1-1.2倍回收产物体积的磁珠，从而选去除大于150bp的游离DNA对应的连接片段，得到第二纯化片段。

进一步地，回收第二纯化片段中50-150bp的游离DNA对应的连接片段，得到富集的胎儿游离DNA包括：向第二纯化片段中再次加入磁珠，并控制磁珠的总体积达到第二纯化片段体积的1.5-2.0倍，优选1.7-1.9倍；之后继续加入0.2-2.0倍，优选0.5-0.9倍第二纯化片段体积的异丙醇，或者0.5-4.0倍第二纯化片段体积的无水乙醇，从而完成对50-150bp的游离DNA对应的连接片段的回收，得到富集的胎儿游离DNA。

进一步地，富集方法还包括：对富集的胎儿游离DNA进行PCR扩增构建成胎儿游离DNA文库。

进一步地，采用单端带有index的扩增引物，对富集的胎儿游离DNA进行PCR扩增，得到扩增文库；对扩增文库进行纯化回收，得到胎儿游离DNA文库。

进一步地，对扩增文库进行纯化回收包括：采用1.0-2.0倍，优选1.7-1.9倍扩增文库体积的磁珠及0.2-2.0倍，优选0.5-0.9倍扩增文库体积的异丙醇对扩增文库进行纯化回收；或者采用1.0-2.0倍，优选1.7-1.9倍扩增文库体积的磁珠及0.5-4.0倍述扩增文库体积的无水乙醇对扩增文库进行纯化回收。

进一步地，20～33bp的Y型接头为Illumina测序平台的不含index序列的Y型接头。

应用本发明的技术方案，该富集方法针对游离DNA中胎儿游离DNA集中在50-150bp这一特点，通过对二代测序文库构建过程中的操作方法进行调整，对接头进行截短，并去除大于150bp的游离DNA片段，富集50-150bp的游离DNA片段，从而实现对于胎儿游离DNA的富集。

附图说明

构成本申请的一部分的说明书附图用来提供对本发明的进一步理解，本发明的示意性实施例及其说明用于解释本发明，并不构成对本发明的不当限定。在附图中：

图1示出了产前诊断过程中采用通用建库方法对胎儿游离DNA进行富集的流程图：

图2示出了本申请改进的建库方法对胎儿游离DNA进行富集的流程图：

图3示出了Illumina测序平台对胎儿游离DNA进行富集的方法中的Y型接头的序列及其结构示意图；

图4A至图4H示出了本申请实施例1中的不同的回收方案所得到的DNA分布范围图；

图5A至图5B示出了本申请实施例2中的全长接头(图5A)与短接头(图5B)建库所得到的DNA分布范围图；

图6A至图6D示出了本申请实施例3中不同选择性纯化回收方案所得文库中DNA片段的分布范围图；

图7A至图7F示出了本申请实施例4中不同选择性纯化回收方案所得文库中DNA片段的分布范围图；

图8示出了本申请实施例5中采用本申请的富集方法及现有通用建库方法所得的38个文库经测序及数据分析之后，得到的胎儿游离DNA浓度图。

具体实施方式

需要说明的是，在不冲突的情况下，本申请中的实施例及实施例中的特征可以相互组合。下面将结合实施例来详细说明本发明。

如背景技术中提到的，孕妇来源的血浆中提取得到的游离DNA用毛细管电泳检测(Agilent 2100或类似仪器)发现游离DNA的峰值在160-170bp之间。提取得到的游离DNA中既含有母亲来源的游离DNA，又含有胎儿来源的游离DNA。与母亲来源的游离DNA相比，胎儿来源的游离DNA较小，分布范围主要在60-150bp之间。现有技术对游离DNA中胎儿来源的游离DNA的富集方法，如图1所示，主要是利用通用文库构建流程来进行富集，并在接头连接和PCR扩增后进行纯化回收(主要是磁珠纯化回收)。

在现有的富集方案中，研究人员通常只关注游离DNA的主峰160-170bp。在Illumina测序系统中，游离DNA连接接头后的主峰在290bp左右。Illumina测序体系在建库过程中通常会产生长度为120bp的接头二聚体，接头二聚体的存在会对测序效果造成较大的影响。由于120bp的接头二聚体与290bp的文库主峰在长度上存在加大差距，通常可以通过选择性纯化磁珠，选择性地将接头二聚体去除。

本申请中，为了提高总的游离DNA中胎儿游离DNA的比例，需要去除长度大于150bp的游离DNA片段，回收50-150bp的游离DNA片段。然而实验中发现：50bp的游离DNA连接接头后长度为170bp，与120bp的接头二聚体长度，在采用磁珠纯化时很难在不损失50bp游离DNA片段的情况下，将接头二聚体去除。

为了尽可能最大限度地在回收50-150bp的较小的游离DNA片段的同时，又能将接头二聚体去除，发明人尝试用长度在20-33bp的短接头(如图3所示)替换原有全长接头。短接头形成的接头二聚体(40-66bp)长度与连接接头后的短游离DNA片段(90-110bp)在长度上虽然同样是50bp的差别，但由于片段越短就越难以回收，因而通过选择性纯化回收磁珠可将二者进行较好的区分，得到无明显接头污染的文库。

当用选择性纯化磁珠(AMPure XP或类似产品)进行DNA片段纯化回收时，通常DNA片段越小，需要用到的磁珠用量越大；相同试剂用量的条件下，DNA片段越小，回收效率越低。进一步地，为了提高小片段DNA(主要是50-150bp)的回收效率，在回收体积中加入了0.2-2.0(优选0.5-1.0)倍样品体积的异丙醇。

进一步地，发明人研究还发现：在文库构建的过程中，在连接短接头后，首先对连接产物DNA全纯化回收(比如，加入1.8倍体积的纯化磁珠和0.7倍体积的异丙醇)，之后对回收产物进行选择性纯化回收，去除大片段(比如，加入1.0-1.5倍样品体积的纯化磁珠)回收小片段(比如补足至1.8倍样品体积的纯化磁珠和0.7倍样品体积的异丙醇)，不仅能提高选择性回收纯化的稳定性，同时也能提高本申请改进的胎儿游离DNA富集方案的通用性。

在上述研究结果的基础上，申请人提出了本申请的技术方案。在本申请一种典型的实施方式中，提供了一种胎儿游离DNA的富集方法，该富集方法包括：采用20～33bp的Y型接头与游离DNA进行连接，得到总游离DNA的连接片段；采用磁珠对总游离DNA的连接片段进行纯化并回收50-150bp的游离DNA对应的连接片段，得到富集的胎儿游离DNA。

在一种优选的实施例中，如图2所示，采用磁珠对总游离DNA的连接片段进行纯化并回收50-150bp的游离DNA对应的连接片段，得到富集的胎儿游离DNA包括：向总游离DNA的连接片段中加入0.8-1.2倍连接片段体积的磁珠去除长度大于150bp游离DNA对应的连接片段，得到第一纯化片段；向第一纯化片段中加入磁珠及异丙醇，并通过控制两次加入磁珠的总量达到第一纯化片段的体积的1.2-1.8倍，加入的异丙醇的体积为第一纯化片段体积的0.2-2.0倍，优选0.5-0.9倍，从而回收50-150bp的游离DNA对应的连接片段，得到富集的胎儿游离DNA。

在一种优选的实施例中，如图2所示，采用磁珠对连接片段进行纯化并回收50-150bp的游离DNA的连接片段，得到富集的胎儿游离DNA包括：对总游离DNA的连接产物进行全部回收，得到回收产物；对回收产物中的大于150bp的游离DNA对应的连接片段进行去除，得到第二纯化片段；回收第二纯化片段中50-150bp的游离DNA对应的连接片段，得到富集的胎儿游离DNA。

在一种优选的实施例中，对总游离DNA的连接片段进行全部回收，得到回收产物包括：通过向总游离DNA的连接片段中加入1.0-2.0倍，优选1.2-1.8倍总游离DNA的连接片段体积的磁珠和0.2-2.0倍，优选0.5-1.0倍总游离DNA的连接片段体积的异丙醇，从而对总游离DNA的连接片段进行全部回收，得到回收产物。

在一种优选的实施例中，对回收产物中的大于150bp的游离DNA对应的连接片段进行去除，得到第二纯化片段包括：通过向回收产物中加入1.0-1.5倍，优选1.1-1.2倍游离DNA对应的连接片段体积的磁珠，从而选去除大于150bp的游离DNA对应的连接片段，得到第二纯化片段。

在一种优选的实施例中，回收第二纯化片段中50-150bp的游离DNA对应的连接片段，得到富集的胎儿游离DNA包括：向第二纯化片段中再次加入磁珠，并控制磁珠的总体积达到第二纯化片段体积的1.5-2.0倍，优选1.7-1.9倍；之后继续加入0.2-2.0倍，优选0.5-0.9倍第二纯化片段体积的异丙醇，或者0.5-4.0倍第二纯化片段体积的无水乙醇，从而完成对50-150bp游离DNA对应的连接片段的回收，得到富集的胎儿游离DNA。

在一种优选的实施例中，如图2所示，上述富集方法还包括：对富集的胎儿游离DNA进行PCR扩增构建成胎儿游离DNA文库。

在一种优选的实施例中，如图2所示，采用单端带有index的扩增引物，对富集的胎儿游离DNA进行PCR扩增，得到扩增文库；对扩增文库进行纯化回收，得到胎儿游离DNA文库。

在一种优选的实施例中，对扩增文库进行纯化回收包括：采用1.0-2.0倍，优选1.7-1.9倍扩增文库体积的磁珠及0.2-2.0倍，优选0.5-0.9倍扩增文库体积的异丙醇对扩增文库进行纯化回收；或者采用1.0-2.0倍，优选1.7-1.9倍扩增文库体积的磁珠及0.5-4.0倍述扩增文库体积的无水乙醇对扩增文库进行纯化回收。

在一种优选的实施例中，20～33bp的Y型接头为Illumina测序平台的不含index序列的Y型接头。

上述接头连接的步骤中，所采用的接头为不带index或barcode等标签序列的接头，需要说明的是，本申请中并不局限于应用illumina平台进行文库测序。

上述富集方法中，PCR扩增的循环数根据实际需要合理设定。在本申请一种优选的实施例中，进行1～15轮，优选5～12轮PCR扩增，得到胎儿游离DNA文库。

在本申请第二种典型的实施例中，提供了一种胎儿游离DNA文库，该胎儿游离DNA文库通过上述富集方法构建而成。通过采用较短的接头与游离DNA片段进行连接，然后采用选择性纯化回收磁珠(含异丙醇)对连接接头后的游离DNA片段进行选择性纯化回收。因短接头形成的接头二聚体长度较短，在采用磁珠选择形纯化回收时，更不容易回收，相应地，连接短接头后的游离DNA的长度虽仅长50bp，但在采用磁珠选择性纯化回收时，更容易回收回来。进而可以从一定程度上避免接头二聚体的污染，实现对胎儿游离DNA进行有效的富集。即采用上述方法所构建的文库中胎儿游离DNA的目的片段富集程度高，测序后所得数据中的有效数据率也较高。

下面将结合具体的实施例来进一步说明本申请的有益效果。

实施例1

1.样品准备：

1)将50bp的DNA marker与去离子水按照5:45的比例混合，之后充分混匀。50bp的DNA marker中含有以下长度的片段：50bp、100bp、150bp、200bp、250bp、300bp、350bp、400bp和500bp。

2)取50μL混合液加入到1.5mL的离心管中，之后按照下表向离心管中加入试剂：

表1：

3)将离心管涡旋震荡混匀，之后室温静置5min。

4)将离心管放置于磁力架上静置5min，之后用移液器弃去溶液。

5)向离心管中加入200μL 80％的乙醇，之后用移液器弃去溶液。

6)重复步骤4。

7)保持离心管固定于磁力架上静置2-10min，使乙醇充分挥发。

8)向离心管中加入50μL去离子水，涡旋震荡使磁珠充分混匀，之后室温放置5min。

9)将离心管放置于磁力架上，静置5min，之后将溶液转移至新的离心管中。

10)用Qubit对纯化产物进行浓度测定，浓度如下表：

表2：

11)用Qseq 100进行DNA片段分布检测，DNA分布如图4A至图4H所示。

图4A至图4H示出了不同回收方案所得到的DNA分布范围。其中，图4A显示的是用1.0倍样品体积的AMPure XP磁珠进行纯化回收，可以回收得到200bp以上的DNA片段，250bp以上的DNA片段回收效果良好。图4B显示的是用1.8倍样品体积的AMPure XP磁珠进行纯化回收，可以回收得到100bp以上的DNA片段，150bp以上的DNA片段回收效果良好。图4C显示的是2.5倍样品体积的AMPure XP磁珠进行纯化回收，100bp DNA片段的回收效果优于4B图，150bp以上DNA片段回收效果良好。图4D显示的是1.8倍样品体积的AMPure XP磁珠与0.2倍体积的异丙醇进行纯化回收，回收效果优于图4A、图4B中所示方案，与图4C方案中回收效果相似。图4E显示的是1.8倍样品体积的AMPure XP磁珠与0.5倍体积的异丙醇进行纯化回收，回收效果优于图4A、4B、4C、4D中所示方案，100bp DNA片段的回收效果良好。图4F显示的是1.8倍样品体积的AMPure XP磁珠与0.7倍体积的异丙醇进行纯化回收，回收效果优于4A、4B、4C、4D和4E中所示方案，100bp DNA片段的回收效果良好，50bp DNA片段开始出现。图4G显示的是1.8倍样品体积的AMPure XP磁珠与1.0倍体积的异丙醇进行纯化回收，回收效果优于4A、4B、4C、4D、4E和4F中所示方案，有明显的50bp的DNA片段。图4H显示的是1.8倍样品体积的AMPure XP磁珠与2.0倍体积的异丙醇进行纯化回收，回收效果优于4A、4B、4C、4D、4E、4F和图4G中所示方案，50bp DNA片段的回收效果良好。

上述结果表明：单纯用磁珠进行回收难于回收得到小于150bp的DNA片段。此外，加入异丙醇后不但可以提高小于150bp的DNA片段回收效率，而且可以降低成本。

实施例2：

1.样品：怀孕9-16周的孕妇血浆，用游离DNA提取试剂盒从血浆中提取游离DNA。

2.文库构建：

2.1末端修复与加A：

2.1.1按照下表在PCR管中配置末端修复体系：

表3：

2.1.2涡旋震荡10秒钟使溶液充分混匀，之后将PCR管固定于PCR仪中，按照下表中条件进行反应：

表4：

2.2接头连接：

2.2.1按下表配制连接反应工作液：

表5：

全长接头序列如下：

5'-aatgatacggcgaccaccgagatctacactctttccctacacgacgctcttccgatct-3'(SEQID NO:1：)

5'-gatcggaagagcacacgtctgaactccagtcacnnnnnnnnatctcgtatgccgtcttctgcttg-3'(SEQ ID NO:2)。

短接头序列如下：

5′-gatcggaagagcacacgtctgaactccagtc-3′(SEQ ID NO:3)；

5′-acactctttccctacacgacgctcttccgatct-3′(SEQ ID NO:4)。

2.2.2涡旋震荡10秒钟使溶液充分混匀，之后将PCR管固定于PCR仪中按照下表进行PCR仪程序设置：

表6：

2.3接头连接产物的纯化：

2.3.1向1.5ml离心管中加入70μL接头连接产物，126μL AMPure XP纯化磁珠和49μL异丙醇，涡旋震荡10秒钟充分混匀，之后室温放置5分钟；

2.3.2将离心管固定于磁力架上静置5min，之后用移液器充分弃去溶液；

2.3.3保持离心管固定于磁力架上，向离心管中加入300μL 80％乙醇，之后用移液器充分弃去溶液；

2.3.4重复2.3.3步骤1次；

2.3.5短暂离心后将离心管重新固定于磁力架上，用移液器充分弃去管底溶液；

2.3.6室温放置5-10min，使乙醇充分挥发；

2.3.7向离心管中加入23μL去离子水，涡旋震荡使磁珠充分悬浮于溶液中，之后室温放置5min；

2.3.8将离心管固定于磁力架上静置5min，之后用移液器转移20μL溶液至PCR管中。

2.4 PCR扩增：

2.4.1按下表配置PCR扩增体系：

表7：

通用引物的序列如下：

5'-aatgatacggcgaccaccgagatctacac-3’(SEQ ID NO:5)

5'-caagcagaagacggcatacgagat-3'(SEQ ID NO:6).

Index引物的序列如下：

5-aatgatacggcgaccaccgagatctacactctttccctacacgacgctcttccgatcT-3′(SEQID NO:7)；

5-caagcagaagacggcatacgagnnnnnnnngtgactggagttcagacgtgtgctcttccgatct-3′(SEQ ID NO:8)。

2.4.2将PCR管放入PCR仪中，按下表设置反应程序：

表8：

2.5PCR扩增产物的纯化：

2.5.1向1.5ml离心管中加入50μL PCR扩增产物，90μL AMPure XP纯化磁珠和35μL异丙醇，涡旋震荡10秒钟充分混匀，之后室温放置5分钟；

2.5.2将离心管固定于磁力架上静置5min，之后用移液器充分弃去溶液；

2.5.3保持离心管固定于磁力架上，向离心管中加入300μL 80％乙醇，之后用移液器充分弃去溶液；

2.5.4重复2.5.3步骤1次；

2.5.5短暂离心后将离心管重新固定于磁力架上，用移液器充分弃去管底溶液；

2.5.6室温放置5-10min，使乙醇充分挥发；

2.5.7向离心管中加入25μL去离子水，涡旋震荡使磁珠充分悬浮于溶液中，之后室温放置5min；

2.5.8将离心管固定于磁力架上静置5min，之后用移液器将溶液转移至新的1.5ml离心管中。

2.6文库浓度测定：

取1μL文库用Qubit进行浓度测定。

3.文库中DNA片段分布范围检测：

3.1根据2.6中浓度测定的结果用稀释液将文库稀释为浓度为1-2ng/μL，体积为10μL的样品；

3.2将稀释后文库放入Qseq100中，进行DNA分部范围的检测，检测结果见图5A和图5B。

图5A和图5B示出了全长接头与短接头建库效果的比较。其中，图5A为使用全长接头、通用引物建库所得的文库中DNA的分布，从图中可以看出该方案所得的文库中含有大量的接头二聚体与非特异片段的污染。图5B为使用本申请的短接头和index引物建库所得的文库中DNA的分布。从图中可以看出，该方案所得的文库中无明显接头二聚体污染。

实施例3：

1.样品：怀孕9-16周的孕妇血浆，用游离DNA提取试剂盒从血浆中提取游离DNA。

2.文库构建：

2.1末端修复与加A：

2.1.1按照下表在PCR管中配置末端修复体系：

表9：

2.1.2涡旋震荡10秒钟使溶液充分混匀，之后将PCR管固定于PCR仪中，按照下表中条件进行反应：

表10：

2.2接头连接：

2.2.1按下表配制连接反应工作液：

表11：

2.2.2涡旋震荡10秒钟使溶液充分混匀，之后将PCR管固定于PCR仪中按照下表进行PCR仪程序设置：

表12：

2.3接头连接产物直接进行选择性纯化回收：

2.3.1向1.5ml离心管中加入70μL接头连接产物，之后用去离子水补足至100ul；

2.3.2按下表13向离心管中加入第一次选择性回收所需加入的磁珠用量：

表13：

2.3.3涡旋震荡10秒钟使溶液充分混匀，之后将离心管室温放置5min；

2.3.4将离心管固定于磁力架上静置5min，之后用移液器将溶液转移至新的离心管中，此时可以弃去磁珠；

2.3.5按照2.3.2表中的数据向离心管中加入AMPure XP磁珠和异丙醇，涡旋震荡使溶液充分混匀后室温放置5min；

2.3.6将离心管固定于磁力架上静置5min，之后用移液器弃去溶液；

2.3.7保持离心管固定于磁力架上，向离心管中加入300μL 80％乙醇，之后用移液器充分弃去溶液；

2.3.8重复2.3.5步骤1次；

2.3.9短暂离心后将离心管重新固定于磁力架上，用移液器充分弃去管底溶液；

2.3.10室温放置5-10min，使乙醇充分挥发；

2.3.11向离心管中加入23μL去离子水，涡旋震荡使磁珠充分悬浮于溶液中，之后室温放置5min；

2.3.12将离心管固定于磁力架上静置5min，之后用移液器转移将洗脱产物转移至新的管中备用；

2.4 PCR扩增：

2.4.1按下表配置PCR扩增体系：

表14：

2.4.2将PCR管放入PCR仪中，按下表设置反应程序：

表15：

2.5 PCR扩增产物的纯化：

2.5.1向1.5ml离心管中加入50μL PCR扩增产物，90μL AMPure XP纯化磁珠和35μL异丙醇，涡旋震荡10秒钟充分混匀，之后室温放置5分钟；

2.5.2将离心管固定于磁力架上静置5min，之后用移液器充分弃去溶液；

2.5.3保持离心管固定于磁力架上，向离心管中加入300μL 80％乙醇，之后用移液器充分弃去溶液；

2.5.4重复2.5.3步骤1次；

2.5.5短暂离心后将离心管重新固定于磁力架上，用移液器充分弃去管底溶液；

2.5.6室温放置5-10min，使乙醇充分挥发；

2.5.7向离心管中加入25μL去离子水，涡旋震荡使磁珠充分悬浮于溶液中，之后室温放置5min；

2.5.8将离心管固定于磁力架上静置5min，之后用移液器将溶液转移至新的1.5ml离心管中。

2.7文库浓度测定：

取1μL文库用Qubit进行浓度测定。

2.8文库中DNA片段分布范围检测：

根据2.7中浓度测定的结果用稀释液将文库稀释为浓度为1-2ng/μL，体积为10μL的样品；将稀释后文库放入Qseq100中，进行DNA分部范围的检测，检测结果见图6A至图6D。

图6A至图6D显示的是不同选择性纯化回收方案所得文库中DNA片段的分布。其中，图6A为对接头连接产物进行全部回收所得的文库；图6B至图6D为对接头连接产物进行选择性纯化回收所得的文库。从图6B到图6D，可以看出，随着第一次纯化回收磁珠用量的增加，文库中较长的DNA片段逐步减少，短DNA片段的含量逐步上升。

实施例4：

1样品：怀孕9-16周的孕妇血浆，用游离DNA提取试剂盒从血浆中提取游离DNA。

2文库构建：

2.1末端修复与加A：

2.1.1按照下表在PCR管中配置末端修复体系：

表16：

2.1.2涡旋震荡10秒钟使溶液充分混匀，之后将PCR管固定于PCR仪中，按照下表中条件进行反应：

表17：

2.2接头连接：

2.2.1按下表配制连接反应工作液：

表18：

2.2.2涡旋震荡10秒钟使溶液充分混匀，之后将PCR管固定于PCR仪中按照下表进行PCR仪程序设置：

表19：

2.3接头连接产物的全部回收纯化：

2.3.1向1.5ml离心管中加入70μL接头连接产物，126μL AMPure XP纯化磁珠和49μL异丙醇，涡旋震荡10秒钟充分混匀，之后室温放置5分钟；

2.3.2将离心管固定于磁力架上静置5min，之后用移液器充分弃去溶液；

2.3.3保持离心管固定于磁力架上，向离心管中加入300μL 80％乙醇，之后用移液器充分弃去溶液；

2.3.4重复2.3.3步骤1次；

2.3.5短暂离心后将离心管重新固定于磁力架上，用移液器充分弃去管底溶液；

2.3.6室温放置5-10min，使乙醇充分挥发；

2.3.7向离心管中加入23μL去离子水，涡旋震荡使磁珠充分悬浮于溶液中，之后室温放置5min；

2.3.8将离心管固定于磁力架上静置5min，之后用移液器转移将洗脱产物转移至新的管中备用。

2.4连接纯化产物的选择性纯化回收:

2.4.1将连接产物全部纯化回收的产物转移至1.5ml离心管中，之后用去离子水补足至50μL；

2.4.2按下表向离心管中加入第一次选择回收所加入的磁珠量：

表20：

2.4.3涡旋震荡10秒钟使溶液充分混匀，之后将离心管室温放置5min；

2.4.4将离心管固定于磁力架上静置5min，之后用移液器将溶液转移至新的离心管中，此时可以弃去磁珠；

2.4.5按照2.4.2表中的数据向离心管中加入AMPure XP磁珠和异丙醇，涡旋震荡使溶液充分混匀后室温放置5min；

2.4.6将离心管固定于磁力架上静置5min，之后用移液器弃去溶液；

2.4.7保持离心管固定于磁力架上，向离心管中加入300μL 80％乙醇，之后用移液器充分弃去溶液；

2.4.8重复2.4.5步骤1次；

2.4.9短暂离心后将离心管重新固定于磁力架上，用移液器充分弃去管底溶液；

2.4.10室温放置5-10min，使乙醇充分挥发；

2.4.11向离心管中加入23μL去离子水，涡旋震荡使磁珠充分悬浮于溶液中，之后室温放置5min；

2.4.12将离心管固定于磁力架上静置5min，之后用移液器转移将洗脱产物转移至新的管中备用；

2.5PCR扩增：

2.5.1按下表配置PCR扩增体系：

表21：

2.5.2将PCR管放入PCR仪中，按下表设置反应程序：

表22：

2.6 PCR扩增产物的纯化：

2.6.1向1.5ml离心管中加入50μL PCR扩增产物，90μL AMPure XP纯化磁珠和35μL异丙醇，涡旋震荡10秒钟充分混匀，之后室温放置5分钟；

2.6.2将离心管固定于磁力架上静置5min，之后用移液器充分弃去溶液；

2.6.3保持离心管固定于磁力架上，向离心管中加入300μL 80％乙醇，之后用移液器充分弃去溶液；

2.6.4重复2.6.3步骤1次；

2.6.5短暂离心后将离心管重新固定于磁力架上，用移液器充分弃去管底溶液；

2.6.6室温放置5-10min，使乙醇充分挥发；

2.6.7向离心管中加入25μL去离子水，涡旋震荡使磁珠充分悬浮于溶液中，之后室温放置5min；

2.6.8将离心管固定于磁力架上静置5min，之后用移液器将溶液转移至新的1.5ml离心管中。

2.7文库浓度测定：

取1μL文库用Qubit进行浓度测定。

2.8文库中DNA片段分布范围检测：

根据2.7中浓度测定的结果用稀释液将文库稀释为浓度为1-2ng/μL，体积为10μL的样品；将稀释后文库放入Qseq100中，进行DNA分部范围的检测，检测结果见图7A至图7F。

图7A至图7F显示的是不同选择性纯化回收方案所得文库中DNA片段的分布。其中，图7A为对接头连接产物进行全部回收所得的文库；图7B-图7F为对接头连接产物进行选择性纯化回收所得的文库。从图7B到图7F，可以看出，随着第一次纯化回收磁珠用量的增加，文库中较长的DNA片段逐步减少，短DNA片段的含量逐步上升。

实施例5：

样品：38份不同来源的孕妇血浆，用游离DNA提取试剂盒从600ul血浆中提取游离DNA。提取得到的游离DNA分为两份，一份用市场上通用建库流程进行文库构建，一份用胎儿游离DNA富集方案进行文库构建。

1.文库构建(胎儿游离DNA富集方案)：

1.1末端修复与加A：

1.1.1按照下表在PCR管中配置末端修复体系：

表23：

1.1.2涡旋震荡10秒钟使溶液充分混匀，之后将PCR管固定于PCR仪中，按照下表中条件进行反应：

表24：

1.2接头连接：

1.2.1按下表配制连接反应工作液：

表25：

1.2.2涡旋震荡10秒钟使溶液充分混匀，之后将PCR管固定于PCR仪中按照下表进行PCR仪程序设置：

表26：

1.3接头连接产物的纯化回收：

1.3.1向1.5ml离心管中加入70μl接头连接产物，126μl AMPure XP纯化磁珠和49μl异丙醇，涡旋震荡10秒钟充分混匀，之后室温放置5分钟；

1.3.2将离心管固定于磁力架上静置5min，之后用移液器充分弃去溶液；

1.3.3保持离心管固定于磁力架上，向离心管中加入300μl 80％乙醇，之后用移液器充分弃去溶液；

1.3.4重复1.3.3步骤1次；

1.3.5短暂离心后将离心管重新固定于磁力架上，用移液器充分弃去管底溶液；

1.3.6室温放置5-10min，使乙醇充分挥发；

1.3.7向离心管中加入53μl去离子水，涡旋震荡使磁珠充分悬浮于溶液中，之后室温放置5min；

1.3.8将离心管固定于磁力架上静置5min，之后用移液器转移将洗脱产物50μl转移至新的1.5ml离心管中；

1.3.9向离心管中加入55μl AMPure XP纯化磁珠，涡旋震荡10秒钟使其充分混匀，之后室温放置5min；

1.3.10将离心管固定于磁力架上静置5min，之后用移液器将溶液转移至新的离心管中，此时可以弃去磁珠；

1.3.11向离心管中加入35μl AMPure XP磁珠和35μl异丙醇，涡旋震荡使溶液充分混匀后室温放置5min；

1.3.12将离心管固定于磁力架上静置5min，之后用移液器弃去溶液；

1.3.13保持离心管固定于磁力架上，向离心管中加入300μl 80％乙醇，之后用移液器充分弃去溶液；

1.3.14重复1.3.13步骤1次；

1.3.15短暂离心后将离心管重新固定于磁力架上，用移液器充分弃去管底溶液；

1.3.16室温放置5-10min，使乙醇充分挥发；

1.3.17向离心管中加入23μl去离子水，涡旋震荡使磁珠充分悬浮于溶液中，之后室温放置5min；

1.3.18将离心管固定于磁力架上静置5min，之后用移液器转移将洗脱产物转移至新的管中备用；

1.4 PCR扩增：

1.4.1按下表配置PCR扩增体系：

表27：

1.4.2将PCR管放入PCR仪中，按下表设置反应程序：

表28：

1.1 PCR扩增产物的纯化

1.1.1向1.5ml离心管中加入50μl PCR扩增产物，90μl AMPure XP纯化磁珠和35μl异丙醇，涡旋震荡10秒钟充分混匀，之后室温放置5分钟；

1.1.2将离心管固定于磁力架上静置5min，之后用移液器充分弃去溶液；

1.1.3保持离心管固定于磁力架上，向离心管中加入300μl 80％乙醇，之后用移液器充分弃去溶液；

1.1.4重复1.1.3步骤1次；

1.1.5短暂离心后将离心管重新固定于磁力架上，用移液器充分弃去管底溶液；

1.1.6室温放置5-10min，使乙醇充分挥发；

1.1.7向离心管中加入25μl去离子水，涡旋震荡使磁珠充分悬浮于溶液中，之后室温放置5min；

1.1.8将离心管固定于磁力架上静置5min，之后用移液器将溶液转移至新的1.5ml离心管中。

2.文库构建(通用建库流程)：

2.1末端修复与加A：

2.1.1按照下表在PCR管中配置末端修复体系：

表29：

2.1.2涡旋震荡10秒钟使溶液充分混匀，之后将PCR管固定于PCR仪中，按照下表中条件进行反应：

表30：

2.2接头连接：

2.2.1按下表配制连接反应工作液：

表31：

2.2.2涡旋震荡10秒钟使溶液充分混匀，之后将PCR管固定于PCR仪中按照下表进行PCR仪程序设置：

表32：

2.3接头连接产物的纯化回收：

2.3.1向1.5ml离心管中加入70μl接头连接产物，56μl AMPure XP纯化磁珠，涡旋震荡10秒钟充分混匀，之后室温放置5分钟；

2.3.2将离心管固定于磁力架上静置5min，之后用移液器充分弃去溶液；

2.3.3保持离心管固定于磁力架上，向离心管中加入300μl 80％乙醇，之后用移液器充分弃去溶液；

2.3.4重复2.3.3步骤1次；

2.3.5短暂离心后将离心管重新固定于磁力架上，用移液器充分弃去管底溶液；

2.3.6室温放置5-10min，使乙醇充分挥发；

2.3.7向离心管中加入23μl去离子水，涡旋震荡使磁珠充分悬浮于溶液中，之后室温放置5min；

2.3.8将离心管固定于磁力架上静置5min，之后用移液器转移将洗脱产物转移至新的PCR离心管中备用；

2.4 PCR扩增：

2.4.1按下表配置PCR扩增体系：

表33：

2.4.2将PCR管放入PCR仪中，按下表设置反应程序：

表34：

2.5 PCR扩增产物的纯化：

2.5.1向1.5ml离心管中加入50μl PCR扩增产物，50μl AMPure XP纯化磁珠，涡旋震荡10秒钟充分混匀，之后室温放置5分钟；

2.5.2将离心管固定于磁力架上静置5min，之后用移液器充分弃去溶液；

2.5.3保持离心管固定于磁力架上，向离心管中加入300μl 80％乙醇，之后用移液器充分弃去溶液；

2.5.4重复2.5.3步骤1次；

2.5.5短暂离心后将离心管重新固定于磁力架上，用移液器充分弃去管底溶液；

2.5.6室温放置5-10min，使乙醇充分挥发；

2.5.7向离心管中加入25μl去离子水，涡旋震荡使磁珠充分悬浮于溶液中，之后室温放置5min；

2.5.8将离心管固定于磁力架上静置5min，之后用移液器将溶液转移至新的1.5ml离心管中。

3.文库出库浓度检测：

取1μl文库加入到199μl Qubit工作液中进行浓度检测，检测结果如下表：

表35：

4.上机测序：

构建文库选用Illumina next 500测序仪进行测序，该测序仪要求NIPS项目中每个样品的量为0.2pm。当文库中DNA量大于10ng(即浓度大于1ng)时，可以满足上机条件。用胎儿游离DNA富集方案所得的文库在都满足上机条件。

5.对测序数据中的胎儿浓度进行分析(计算Y染色体所占的比例，从而确定胎儿游离DNA的浓度)，分析结果见表36和图8。

表36：

图8示出了不同富集方法得到的胎儿游离DNA含量的比较。小菱形代表的是用胎儿游离DNA富集方案所得的胎儿游离DNA浓度；大方块儿代表的是通用建库方案所得到的胎儿游离DNA浓度。从上表和图8中可以发现，用胎儿游离DNA富集方案建库所得的文库中胎儿浓度都高于用通用建库方案所得的文库中胎儿游离DNA浓度(前者的文库中胎儿DNA浓度是后者文库中胎儿DNA浓度的1.3～2.4倍，这对于含量本来就较低的胎儿游离DNA来说，富集效率提高了30％～140％)。

6.对上述两种方案构建的胎儿游离DNA文库的测序数据进行Z-score分析，分析结果见下表。

表37：

通过Z值来判断通过胎儿游离DNA富集方案所得的数据是否存在Z值异常的现象(Z值的正常范围是-3到3之间)。从上表分析的38例样品可以看出，两种方案都发现了两例阳性样品，一例为13号样色体三体，另一例为21例染色体异常。剩余的样品中，Z值都在正常的范围之内，即采用胎儿游离DNA富集方案，不会引起Z值异常现象的发生。

以上所述仅为本发明的优选实施例而已，并不用于限制本发明，对于本领域的技术人员来说，本发明可以有各种更改和变化。凡在本发明的精神和原则之内，所作的任何修改、等同替换、改进等，均应包含在本发明的保护范围之内。

序列表

<110> 北京科迅生物技术有限公司

<120> 胎儿游离DNA的富集方法

<130> PN114646YXYX

<160> 8

<170> SIPOSequenceListing 1.0

<210> 1

<211> 58

<212> DNA

<213> 人工序列(Artificial Sequence)

<220>

<221> misc_feature

<222> (1)..(58)

<223> 全长接头序列1

<400> 1

aatgatacgg cgaccaccga gatctacact ctttccctac acgacgctct tccgatct 58

<210> 2

<211> 65

<212> DNA

<213> 人工序列(Artificial Sequence)

<220>

<221> misc_feature

<222> (1)..(65)

<223> 全长接头序列2

<220>

<221> misc_feature

<222> (34)..(41)

<223> 8个任意碱基N形成的index序列

<400> 2

gatcggaaga gcacacgtct gaactccagt cacnnnnnnn natctcgtat gccgtcttct 60

gcttg 65

<210> 3

<211> 31

<212> DNA

<213> 人工序列(Artificial Sequence)

<220>

<221> misc_feature

<222> (1)..(31)

<223> 短接头序列1

<400> 3

gatcggaaga gcacacgtct gaactccagt c 31

<210> 4

<211> 33

<212> DNA

<213> 人工序列(Artificial Sequence)

<220>

<221> misc_feature

<222> (1)..(33)

<223> 短接头序列2

<400> 4

acactctttc cctacacgac gctcttccga tct 33

<210> 5

<211> 29

<212> DNA

<213> 人工序列(Artificial Sequence)

<220>

<221> misc_feature

<222> (1)..(29)

<223> 通用引物序列1

<400> 5

aatgatacgg cgaccaccga gatctacac 29

<210> 6

<211> 24

<212> DNA

<213> 人工序列(Artificial Sequence)

<220>

<221> misc_feature

<222> (1)..(24)

<223> 通用引物序列2

<400> 6

caagcagaag acggcatacg agat 24

<210> 7

<211> 57

<212> DNA

<213> 人工序列(Artificial Sequence)

<220>

<221> misc_feature

<222> (1)..(57)

<223> index引物序列1

<400> 7

aatgatacgg cgaccaccga gatctacact ctttccctac acgacgctct tccgatc 57

<210> 8

<211> 64

<212> DNA

<213> 人工序列(Artificial Sequence)

<220>

<221> misc_feature

<222> (1)..(64)

<223> index引物序列2

<220>

<221> misc_feature

<222> (23)..(30)

<223> 6个任意碱基N形成的index序列

<400> 8

caagcagaag acggcatacg agnnnnnnnn gtgactggag ttcagacgtg tgctcttccg 60

atct 64