Cipk6蛋白激酶在调控植物角果长度中的应用

文档序号:1793925 发布日期:2021-11-05 浏览:36次 >En<

阅读说明:本技术 Cipk6蛋白激酶在调控植物角果长度中的应用 (Application of CIPK6 protein kinase in regulating and controlling length of plant siliques ) 是由 卢坤 朱红 刘淼 于梦娜 曲存民 李加纳 于 2021-09-10 设计创作,主要内容包括:本发明公开了CIPK6蛋白激酶在调控植物角果长度中的应用,CIPK6基因在在各个组织中都有表达,但在角果及花中表达量最高,在种子中表达量最低;定位于细胞质膜及细胞核中,研究发现在植物中过表达CIPK6蛋白激酶编码基因使角果变短,CIPK6突变植株能使角果变长,因此可将CIPK6蛋白激酶用于调控植物角果长度,将植物中突变或干扰CIPK6蛋白激酶编码基因使CIPK6蛋白激酶无活性或活性降低获得角果变长的植物,对提高农作物产量具有重要意义。(The invention discloses an application of CIPK6 protein kinase in regulating and controlling the length of plant siliques, wherein CIPK6 gene is expressed in each tissue, but has the highest expression level in the siliques and flowers and the lowest expression level in seeds; the CIPK6 protein kinase coding gene is over-expressed in plants to shorten the silique and the CIPK6 mutant plant can lengthen the silique, so that the CIPK6 protein kinase can be used for regulating and controlling the length of the silique of the plants, and the CIPK6 protein kinase coding gene is inactivated or reduced by mutation or interference in the plants to obtain the plants with lengthened silique, thereby having important significance for improving the crop yield.)

CIPK6蛋白激酶在调控植物角果长度中的应用

技术领域

本发明涉及生物技术领域,具体涉及CIPK6蛋白激酶在调控植物角果长度中的应用。

背景技术

随着白菜、甘蓝及甘蓝型油菜基因组数据的释放,芸薹属植物的研究取得了巨大的进步。CIPK基因家族作为丝氨酸/苏氨酸蛋白激酶家族中的成员,近年来在各个物种中的研究进展迅速,目前在拟南芥中鉴定出了26个CIPK蛋白家族成员,水稻中鉴定出33个,玉米中存在43个,陆地棉中有80个,它们在各自的物种中都发挥着重要的作用。CIPK家族中不同成员蛋白质可通过与CBL家族中的不同成员进行相互作用形成紧密的互作网络参与植株的各种非生物胁迫过程中。随着研究的深入,CIPK调控植株生长发育的功能也慢慢为人所知。已有研究表明,CIPK6能够调控生长素的运输影响根系的发育;CIPK6被CBL2募集到液泡膜中,并与液泡膜定位的糖转运体TST2相互作用,以促进棉花中糖的积累;CBL4/5-CIPK25形成的调控网络能够协调细胞分裂素和生长素之间的相互作用调控拟南芥根尖分生组织的大小;CIPK19参与花粉管极性生长和受精过程;CIPK14磷酸化核-质信号传递关键因子WHY1,从而控制其在细胞器内的分布,控制与衰老相关基因的表达及质体的发育;NtCIPK23不仅增强烟草种子发芽,而且还通过提高烟草幼苗的子叶绿化率,子叶扩展和下胚轴伸长来促进幼苗早期生长;种种证据表明CIPK能参与植株生长发育。但是未见CIPK有关调控角果长度的报道。

发明内容

有鉴于此,本发明的目的之一在于提供一种CIPK6蛋白激酶在调控植物角果长度中的应用;本发明的目的之二在于提供提高植物角果长度的方法;本发明的目的之三在于提供过表达CIPK6蛋白激酶在植物中上调丝原裂活蛋白激酶级联途径相关基因表达量中的应用。

为达到上述目的,本发明提供如下技术方案:

1、CIPK6蛋白激酶在调控植物角果长度中的应用。

优选的,所述植物为甘蓝型油菜或拟南芥。

优选的,抑制CIPK6蛋白激酶的编码基因表达或突变CIPK6蛋白激酶的编码基因至CIPK6蛋白激酶无活性或活性在降低使角果变长中的应用。

优选的,在植物中过表达CIPK6蛋白激酶编码基因在使角果变短中的应用。

优选的,所述CIPK6蛋白激酶为油菜CIPK6蛋白激酶,核苷酸序列如SEQ ID NO.3所示。

2、提高植物角果长度的方法,将植物中突变或干扰CIPK6蛋白激酶编码基因使CIPK6蛋白激酶无活性或活性降低。

优选的,所述植物为油菜或拟南芥。

优选的,所述CIPK6蛋白激酶为油菜CIPK6蛋白激酶,核苷酸序列如SEQ ID NO.3所示。

3、过表达CIPK6蛋白激酶在植物中上调丝原裂活蛋白激酶级联途径相关基因表达量中的应用。

本发明的有益效果在于:本发明公开了CIPK6蛋白激酶在调控植物角果长度中的应用,通过利用GUS组织化学染色发现Bna.CIPK6在各个组织中都有表达,但在角果及花中表达量最高,在种子中表达量最低;原生质体转化法探究了Bna.CIPK6蛋白定位于细胞质膜及细胞核;结合对转基因植株的农艺性状考察及转录组分析等结果,发现转基因Bna.CIPK6与野生型植株差异表达基因主要涉及MAPK及与激素相关的代谢途径,发现Bna.CIPK6能影响植株角果长度,因此可将CIPK6蛋白激酶用于调控植物角果长度,将植物中突变或干扰CIPK6蛋白激酶编码基因使CIPK6蛋白激酶无活性或活性降低。

附图说明

为了使本发明的目的、技术方案和有益效果更加清楚,本发明提供如下附图进行说明:

图1为Bna.CIPK6启动子在拟南芥中的表达情况(b1-b4为拟南芥营养生长期整株及根和叶的表达情况,b5-b9为抽薹以后在茎、花、种子及角果皮中的表达情况)。

图2为Bna.CIPK6的亚细胞定位(ESID表示在明场,EGFP表示在绿色激发光状态下,ESID+EGFP表示叠加状态,标尺长度为5μm)。

图3为转基因农艺性状考察(a-c:拟南芥抽薹期长势比较(左边是野生型,右边是过表达);d,e:45D拟南芥植株(从左到右依次是野生型,过表达,突变体);f,h:成熟期角果长度比较g:成熟期种子大小比较(从左到右依次是野生型,过表达,突变体);i:野生型和过表达植株株高比较)。

图4为差异表达基因KEGG富集Top 20柱状图。

具体实施方式

下面结合附图和具体实施例对本发明作进一步说明,以使本领域的技术人员可以更好的理解本发明并能予以实施,但所举实施例不作为对本发明的限定。

本发明使用材料如下试验材料:植株材料野生型拟南芥Col-0,过表达Bna.CIPK6拟南芥转基因植株、拟南芥Atcipk6突变体、实验所用菌株大肠杆菌DH5α、根癌农杆菌GV3101,载体pEarleyGate101、pCAMBIA1305.1。

转录组材料:将过表达拟南芥及野生型拟南芥消毒点播于1/2MS培养基中,4℃冰箱放置两天使种子处于相同的生长状态后置于组培间16小时黑暗22℃,8小时光照24℃培养至四叶期,移植至土培后,在植株抽薹前整个植株装入2mL无RNA酶的离心管(每个材料取三个重复)迅速置于液氮中,取样后立即冻存于-80℃备用。

实施例1、Bna.CIPK6基因克隆及表达情况

使用EZ-10DNA away RNA Mini-Preps Kit试剂盒按照说明书提取样品总RNA,用1.5%琼脂糖凝胶电泳检测样品RNA质量并检测RNA浓度,使用US EVERBRIGHT INC.的反转录试剂盒进行反转cDNA的合成。

利用油菜基因组网站Brassica napus database(http://www.genoscope.cns.fr/brassicanapus/)获取CIPK家族成员染色体位置信息,并根据Bna.CIPK6基因的ORF序列设计引物,具体引物如下:

上游引物:5’-caccatggtcggagcaaaacctatagag-3’(SEQ ID NO.1);

下游引物:5’-ggctggtgtagtagaagtcc-3’(SEQ ID NO.2);

然后以提取的cDNA为模板,进行PCR扩增,扩增产物经测序得到1251bp的cDNA序列,具体序列如SEQ ID NO.3所示。

利用pENTR/D-TOPO Cloning Kit,将扩增的Bna.CIPK6基因cDNA重组到pENTR/D-TOPO入门载体,转化大肠感受态DH5α。利用引物SEQ ID NO.1和SEQ ID NO.2鉴定阳性克隆后,使用EasyPure Plasmid MiniPrep Kit提取质粒,将其与pEarleyGate101表达载体进行LR重组反应,形成用于过量表达和亚细胞定位的pEarleyGate101-Bna.CIPK6载体。

根据Bna.CIPK6基因启动子序列,设计特异性引物(SEQ ID NO.4和SEQ ID NO.5)扩增启动子上游1473bp序列,具体序列如SEQ ID NO.6所示,通过重组法将其重组在pCAMBIA1305.1载体上得到重组载体pCAMBIA1305.1-Bna.CIPK6,获得重组载体转化农杆菌GV3101并侵染野生型拟南芥获得T3代转基因植株,利用GUS组织化学染色法对其进行染色,结果如图1所示。结果显示,在拟南芥生长的各个时期各个组织部位都有一定的表达,且表达情况和BrassicaEDB网站(https://brassica.biodb.org/)预测结果一致:根据GUS组织化学染色结果可以看出Bna.CIPK6具有组成型表达的特征,在各个时期各个部位都存在表达,但是表达量高低存在差异;在营养生长期中,叶片及根部存在少量表达;在生殖生长期间,叶片中表达量较高,茎和花中表达量最高,角果中表达量次之,种子中表达量较低。

为了确定Bna.CIPK6蛋白在细胞内的表达位置,利用载体上具有融合的黄色蛋白标记基因YFP的表达载体pEarleyGate101-Bna.CIPK6,利用荧光蛋白的定位确定Bna.CIPK6的表达定位,结果如图2所示。结果表明,Bna.CIPK6蛋白同时定位于细胞核和细胞膜。

实施例2、Bna.CIPK6对拟南芥角果长度的影响

为了探究转基因拟南芥发生的变化,将pEarleyGate101-Bna.CIPK6通过农杆菌介导转化拟南芥,将过表达Bna.CIPK6拟南芥与野生型拟南芥在相同情况下培养45天后,对其株高、角果长度等性状进行考察。为了进一步研究CIPK6的功能,从ABRC拟南芥突变体中心购买了CIPK6沉默的Atcipk6突变体(编号:WiscDsLox345-348H12),与野生型拟南芥在相同情况下培养45天后,对其株高、角果长度、种子大小等性状进行考察。

在拟南芥从1/2MS培养基移栽在土里及后续的营养生长阶段,植株生长情况基本一致,不存在明显差异;但是在它们进入生殖生长阶段,过表达转基因植株抽薹速度明显低于野生型,如图3中a-c所示;在拟南芥生长45天后,突变体拟南芥株高显著高于野生型植株,野生型拟南芥株高显著高于过表达拟南芥株高如图3中d所示;从突变体、野生型和过表达群体中各随机挑选了植株,从植株基部分叉处第三个角果往上数,共取十个角果,依次测量其长度,测量结果如图3中e-f,根据测量结果显示,拟南芥突变体角果长度显著长于野生型角果长度,野生型角果长度显著长于过表达植株的角果长度;随后利用体式镜拍照记录并测量了相应的拟南芥种子的大小,结果如图3中g-h,结果表明,突变体种子大小大于野生型种子大小,野生型植株的种子大小显著大于过表达植株种子大小。

实施例3、转录组结果分析

为了分析过表达Bna.CIPK6转基因植株的分子机制,揭示其角果长度变短的原因,对抽薹前期的过表达Bna.CIPK6转基因植株行转录组测序,以同一时期野生型的转录组数据作为对照。研究利用相应的分析流程对转录组的测序结果进行分析;结果显示,在同一时期野生型拟南芥和过表达Bna.CIPK6转基因拟南芥植株中共鉴定出342个差异表达基因,对差异基因进行KEGG富集分析,总共富集到了42个KEGG条目共100个差异基因,如图4所示。结果显示,富集的前20个主要可能调控的KEGG通路,其中包括丝裂原活蛋白激酶级联途径(MAPK signaling pathway)、植物激素信号转导通路(Plant hormone signaltransduction)、半乳糖代谢途径(Galactose metabolism)及植物与病原体的相互作用途径(Plant-pathogen interaction)等。测序结果显示,过表达植株中,丝原裂活蛋白激酶级联途径相关基因表达量显著上调,说明在拟南芥中过量表达Bna.CIPK6能够激活MAPK级联途径从而提高植株抗性,这个也从印证了前期有关Bna.CIPK6调控拟南芥及油菜抗性的研究结果。

在差异基因的KEGG中,还富集到了植物激素信号转导通路(Plant hormonesignal transduction),这个通路中相关的激素主要包括生长素、细胞分裂素、赤霉素、脱落酸等,富集的差异基因主要参与生长素代谢通路,也有涉及赤霉素、脱落酸、茉莉酸和水杨酸部分基因。这些基因主要调控细胞分裂、细胞增大、果实成熟等植株发育过程。

以上所述实施例仅是为充分说明本发明而所举的较佳的实施例,本发明的保护范围不限于此。本技术领域的技术人员在本发明基础上所作的等同替代或变换,均在本发明的保护范围之内。本发明的保护范围以权利要求书为准。

序列表

<110> 西南大学

<120> CIPK6蛋白激酶在调控植物角果长度中的应用

<160> 6

<170> SIPOSequenceListing 1.0

<210> 1

<211> 28

<212> DNA

<213> 人工序列(Artificial Sequence)

<400> 1

caccatggtc ggagcaaaac ctatagag 28

<210> 2

<211> 20

<212> DNA

<213> 人工序列(Artificial Sequence)

<400> 2

ggctggtgta gtagaagtcc 20

<210> 3

<211> 1251

<212> DNA

<213> 甘蓝型油菜(Brassica napus L.)

<400> 3

atggtcggag caaaacctat agagaatgaa tctgacggtg gagcaagcac gggtcttctc 60

cacggacgtt acgagctagg ccgtcttcta ggccacggaa cattcgctaa agtgtaccac 120

gcacgtaacg taacaactgg caaaagcgtg gcgatgaaag tcgtcggaaa agagaaggtg 180

gtgaaggtcg gcatggtgga ccagatcaaa cgagagatct cagtgatgag gatggtgaag 240

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atggagctcg tgcgaggcgg ggagctgttc gccaaagtcg ccaaaggaag gctgcgcgag 360

gacgtggcgc gcgtgtactt ccagcagctg atctccgccg tcgatttctg ccacagccgg 420

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aaggtcaccg actttggtct ctccgctttc accgagcatt tgaagcaaga cgggcttctc 540

cacacgacct gtggaactcc ggcgtacgtc gcgccggagg ttatactgaa gaaaggatac 600

gacggagcga aggcggatct ttggtcttgc ggtgttatcc tcttcgtgct cctcgcgggt 660

tacttgccgt ttcaggatga taatcttgtc aacatgtata ggaagatcta cagaggagac 720

ttcaagtgcc ctggatggct ctcctccgat gcgaggaggc tcgtgacgaa gcttctggat 780

ccgaatccga atacacggat cactatcgat aaggtgatgg attcacactg gttcaagaag 840

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gcgttatctg aagggttcga tctctcgccg ttgttcgagg agaagaagaa agaggagaag 1020

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gtggaggtga agaaagatca tggggacacg cttgagtaca ataacttttg tagtacggct 1200

cttagaccag ccctcaagga catcttctgg acttctacta caccagcctg a 1251

<210> 4

<211> 36

<212> DNA

<213> 人工序列(Artificial Sequence)

<400> 4

cgggatcctt gtcgatctat tgctgcatca ccactc 36

<210> 5

<211> 35

<212> DNA

<213> 人工序列(Artificial Sequence)

<400> 5

ccatggggtt cagacagccg aaagaggagt gttta 35

<210> 6

<211> 1473

<212> DNA

<213> 甘蓝型油菜(Brassica napus L.)

<400> 6

ttgtcgatct attgctgcat caccactcaa atcagatgca tataaaagat acgcatgtta 60

taagaaaaaa tatattttgt aaatgaaagt aacttgatta tagcatttgt tgtttgtaat 120

agttgccatt taataaaaaa aaagcaatag ttgccattta tcaactaata atcagtttaa 180

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tttaattgcg tataaagatt tgtatatacg tatgtgttta atttgtacat ttctgtaact 360

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