一种金黄色葡萄球菌免疫磁珠洗液

文档序号:1459397 发布日期:2020-02-21 浏览:35次 >En<

阅读说明:本技术 一种金黄色葡萄球菌免疫磁珠洗液 (Staphylococcus aureus immunomagnetic bead washing liquor ) 是由 曲晓莹 卢勉飞 蔡芷荷 滕昆仑 吴清平 陈博 陈鲁 于 2019-10-24 设计创作,主要内容包括:本发明公开了一种金黄色葡萄球菌免疫磁珠洗液,通过组分的优化,与常规洗液相比,在洗涤过程中提高了洗液的清洗效果,并且有效降低了食品基质的干扰,而且具有特异持续性增菌的功效,尤其是目标菌含量极低的样品增菌效果显著,从而提高了金黄色葡萄球菌的检出率,为免疫磁珠在试剂检测中的应用提供了保障。(The invention discloses a staphylococcus aureus immunomagnetic bead washing liquid, which is characterized in that through component optimization, compared with a conventional washing liquid, the washing liquid improves the washing effect in the washing process, effectively reduces the interference of a food matrix, has the effect of specific and continuous bacteria increasing, and particularly has an obvious bacteria increasing effect on a sample with extremely low target bacteria content, so that the detection rate of staphylococcus aureus is improved, and the application of immunomagnetic beads in reagent detection is guaranteed.)

一种金黄色葡萄球菌免疫磁珠洗液

技术领域

本发明属于免疫技术领域,特别涉及一种金黄色葡萄球菌免疫磁珠洗液。

背景技术

金黄色葡萄球菌(Staphylococcus aureus)是常见的食源性致病微生物之一,在适当条件下会产生金黄色葡萄球菌肠毒素(Staphylococcus aureus Enterotoxins,SEs),这是食源性致病菌最重要的致病因子。金黄色葡萄球菌广泛分布,外部环境如空气、水、人畜及其***物均有其踪迹;内在环境如人和动物的体表、粘膜、呼吸道、鼻咽部和肠道等也有分布。健康人群中30%-50%为金黄色葡萄球菌携带者,因此金黄色葡萄球菌无处不在。

近些年,新型检测技术尤其是分子检测产品的不断涌现,灵敏度得到了提高,但检测结果更容易受到样品基质的影响,检测前样品前处理的重要性变得尤为突出。相比较而言,免疫磁珠是当前样品前处理的最理想手段。作为一种具有特异性的分离富集技术,免疫磁珠在多个领域都有重要的应用价值,如DNA提取、蛋白纯化、细胞筛选、食源性致病微生物富集等。虽然高品质的抗体资源对免疫磁珠特异性富集至关重要,但免疫磁珠在实际样品应用中,复杂的食品基质如肉沫等也会干扰富集过程,造成免疫磁珠的回收率降低从而降低富集效果。因此在免疫富集操作过程中,需要使用免疫磁珠洗液清除食品杂质。但常规免疫磁珠洗液在实际应用中并没有起到很好的效果,在对肉沫等复杂食品样品富集时会损失大量免疫磁珠,从而降低了目标菌的检出率。因此,需要对免疫磁珠洗液的组分进行优化,提高洗液的清洗效果。除此之外,在实际检测中,很多样品的目标菌含量极低,按照国标方法增菌后目标菌含量依然很低,导致检出率不高,洗液中增加特异性增菌成分,在清洗过程中还可以起到持续增菌的效果。

根据现今存在的问题,研制一种金黄色葡萄球菌免疫磁珠洗液成为亟需解决的问题。

发明内容

本发明的首要目的在于提供一种金黄色葡萄球菌免疫磁珠洗液,以降低食品基质的干扰并提高目标菌金黄色葡萄球菌的检出率。

为达到上述目的,本发明所采取的技术方案是:

本发明第一个方面,提出了一种金黄色葡萄球菌免疫磁珠洗液。根据本发明的实施例,所述金黄色葡萄球菌免疫磁珠洗液,其溶液为缓冲液,所述缓冲液中添加有表面活性剂、蛋白质、水溶性糖、无机盐、特异性抑菌剂,其中特异性抑菌剂可以抑制样品中的非目标菌生长。根据本发明的实施例效果,除了提高了洗液的清洗效果,还降低了食品基质的干扰,而且具有特异性持续增菌的功效,尤其是目标菌含量极低的样品增菌效果显著,从而提高了金黄色葡萄球菌的检出率。

根据本发明的实施例,其溶液为缓冲液,所述缓冲液中添加有0.2~1.4g/L表面活性剂、4.0~28.5g/L蛋白质、5.5~19.5g/L水溶性糖、3.5~5.5g/L无机盐和4.5~6.5mg/L特异性抑菌剂。

根据本发明的实施例,所述表面活性剂选自Tween-20、TritonX-100和OHODASURFON-870的至少一种;

所述蛋白质选自胰蛋白胨、牛血清白蛋白和乳白蛋白的至少一种;

所述水溶性糖选自乳糖、葡萄糖;无机盐选自NaCl、KCl的至少一种;

所述特异性抑菌剂选自两性霉素B、多粘菌素B的至少一种。

根据本发明的实施例,所述洗液的pH=7.0~7.5,其溶液为缓冲液,所述缓冲液中添加有5.5~9.5g/L乳糖、6.0~10.0g/L葡萄糖、4.0~6.0g/L胰蛋白胨、7.5~9.5g/L牛血清白蛋白、8.0~13.0g/L乳白蛋白、2.0~3.0mg/L两性霉素B、2.5~3.5mg/L多粘菌素B、3.5~5.5g/L NaCl、0.60~0.70g/L Tween-20、0.20~0.30g/L TritonX-100和0.30~0.40g/LOHODASURF ON-870。发明人发现,质量比在上述范围内时,增菌和清洗效果更显著。为了进一步效果,发明人进行了进一步优化,惊喜地发现,配比效果大大增强,在上述范围内时,增菌和清洗效果更佳显著。

根据本发明的实施例,所述洗液的pH=7.0~7.5,其溶液为缓冲液,所述缓冲液中添加有5.5g/L乳糖、6.0g/L葡萄糖、4.0g/L胰蛋白胨、7.5g/L牛血清白蛋白、8.0g/L乳白蛋白、2.0mg/L两性霉素B、2.5mg/L多粘菌素B、3.5g/L NaCl、0.6g/L Tween-20、0.20g/LTritonX-100和0.30g/L OHODASURF ON-870。在上述配比中,增菌和清洗效果更佳显著。

根据本发明的实施例,所述洗液的pH=7.0~7.5,其溶液为缓冲液,所述缓冲液中添加有7.5g/L乳糖、8.0g/L葡萄糖、5.0g/L胰蛋白胨、8.5g/L牛血清白蛋白、10.0g/L乳白蛋白、2.5mg/L两性霉素B、3.0mg/L多粘菌素B、4.5g/L NaCl、0.65g/L Tween-20、0.25g/LTritonX-100和0.35g/L OHODASURF ON-870。在上述配比中,增菌和清洗效果更佳显著。

根据本发明的实施例,所述洗液的pH=7.0~7.5,其溶液为缓冲液,所述缓冲液中添加有9.5g/L乳糖、10.0g/L葡萄糖、6.0g/L胰蛋白胨、9.5g/L牛血清白蛋白、13.0g/L乳白蛋白、3.0mg/L两性霉素B、3.5mg/L多粘菌素B、5.5g/L NaCl、0.70g/L Tween-20、0.30g/LTritonX-100和0.40g/L OHODASURF ON-870。在上述配比中,增菌和清洗效果更佳显著。

根据本发明的实施例,所述缓冲液为PBS缓冲液或Tris-HCl缓冲液。在上述配比中,增菌和清洗效果更佳显著。

本发明第二方面,本发明提出了前面所述免疫磁珠洗液的制备方法,按前面任一项所述的配方称取各原料,混合即得免疫磁珠洗液。

本发明第三方面,本发明提出了前面所述免疫磁珠洗液的使用方法,包括以下步骤:

将免疫磁珠与样品混匀孵育,静置磁分离,去上清;

加入前面任一项所述免疫磁珠洗液孵育,静置磁分离,去上清,检测样品的金黄色葡萄球菌。

根据本发明的实施例,所述免疫磁珠与样品的体积比为:20μL:1mL。

根据本发明的实施例,所述孵育条件为35~37℃孵育10~15min。

根据本发明的实施例,所述静置磁分离1~2min。

根据本发明的实施例,所述免疫磁珠洗液体积为1~2mL。

本发明第四方面,本发明提出了前面任一项所述免疫磁珠洗液作为金黄色葡萄球菌检测试剂中的应用。

本发明的有益效果是:

本发明的金黄色葡萄球菌免疫磁珠洗液通过组分的优化,极大降低了食品基质的干扰,提高洗液的清洗功能,用于基质中目标菌的富集。磁珠洗液能在目标菌含量低的样品,持续增菌提高了金黄色葡萄球菌的检出率,为免疫磁珠在试剂检测中的应用提供了保障。

具体实施方式

下面结合实施例对本发明中的技术方案进行清楚、完整的说明,但并不局限于此。

OHODASURF ON-870是一种表面活性剂,购于扬州施惠尔生物科技有限公司,货号SPBHS17。胰蛋白胨(货号T819615),购自于麦克林公司。两性霉素B(货号A8250)、多粘菌素B(货号:P8350),购自于北京索莱宝科技有限公司。其他材料、试剂,如无特殊说明,均为商业途径购得。

金黄色葡萄球菌免疫磁珠制备方法:

1)取1mg羧基磁珠放EP管中,加入1mL超纯水中超声30s,离心去上清取沉淀,清洗,最后重悬于100μL超纯水中;

2)缓慢加入MIX&GO活化剂(货号A-SMPN100,购于Sigma)100μL,置于混匀仪上室温活化1h;

3)活化后加1mL MEST(25mM,pH6.0)缓冲液洗涤2遍,重悬于100μL MES缓冲液中;

4)缓慢加入抗金黄色葡萄球菌抗体(购自于Abcam,货号ab37644)50~80μg,置于混匀仪上室温偶联2h;

5)用TBST缓冲液洗涤磁珠,加入1mL封闭液(含1%BSA的PBS溶液),置于混匀仪上封闭2h;

6)封闭完成后,用TBST缓冲液洗涤磁珠,得到本发明后续实验的金黄色葡萄球菌免疫磁珠。

实施例1~8

实施例1~8的金黄色葡萄球菌免疫磁珠洗液按照表1的配方1~8对原料称取,使用PBS缓冲液(0.1M,PH7.4)配制成相对应的溶液;混合,搅拌混匀,使得洗液的pH=7.0~7.5,即得金黄色葡萄球菌免疫磁珠洗液。

常规洗液配方为含0.5g/L Tween-20的PBS(0.1M,PH7.4)溶液。

表1免疫磁珠洗液不同配方组分

Figure BDA0002246551170000041

Figure BDA0002246551170000051

对本发明实施例的免疫磁珠洗液做进一步效果检测。

免疫磁珠洗液的单因素分析

金黄色葡萄球菌免疫磁珠洗液组分:乳白蛋白、OHODASURF ON-870单因素水平按表2设置,其他组分使用PBS缓冲液(0.1M,pH7.4)分别配制为5.5g/L乳糖、6.0g/L葡萄糖、4.0g/L胰蛋白胨、7.5g/L牛血清白蛋白、2.0mg/L两性霉素B、2.5mg/L多粘菌素B、3.5g/LNaCl、0.6g/L Tween-20、0.20g/L TritonX-100,混合。

将金黄色葡萄球菌按照以下组别设置:0.5CFU/g、1.0CFU/g、2.5CFU/g、5.0CFU/g、10.0CFU/g、15.0CFU/g、20.0CFU/g,分别对猪肉进行人工感染。

依据国标GB4789.4-2016的实验步骤,对感染后的猪肉样品增菌,分别取增菌液1mL、20μL的免疫磁珠加到1mL猪肉样品中混匀后,37℃孵育10min,放入磁力架中静置1~2min,去除上清;加入1mL本发明制备的免疫磁珠洗液混匀后,37℃孵育15min,放入磁力架中静置1~2min后去除上清取沉淀,沉淀洗涤两次。

按照LAMP试剂盒(货号KJD05L,广东环凯微生物科技有限公司)说明书或者其他定量方法鉴定金黄色葡萄球菌的含量。

表2金黄色葡萄球菌免疫磁珠洗液组分的单因素实验

Figure BDA0002246551170000052

结果如表2所示,免疫磁珠洗液中乳白蛋白的适宜浓度为2.0~15g/L,金黄色葡萄球菌的检出量为5~10CFU/g,灵敏度极高;CFU/g OHODASURF ON-870的适宜浓度为0.1~0.6g/L,金黄色葡萄球菌的检出量为15~20CFU/g,灵敏度极高。

对本发明实施例的免疫磁珠洗液做进一步效果检测。

免疫磁珠洗液的灵敏度实验

按照0.5CFU/g、1.0CFU/g、2.5CFU/g、5.0CFU/g、10.0CFU/g、20CFU/g、30CFU/g、50CFU/g八个水平对猪肉样品进行人工污染,依据国标GB4789.4-2016对样品增菌,分别取增菌液1mL,20μL免疫磁珠加入1mL样品中混匀后,37℃孵育10min,放入磁力架中静置1~2min,去除上清;加入1mL免疫磁珠洗液混匀后,37℃孵育15min,放入磁力架中静置1~2min后去除上清,重复洗涤操作进行两次。

用LAMP试剂盒或其他菌种pcr定量方法进行结果鉴定。

结果如表3所示。使用本发明制备的磁珠洗液能够显著地提高了检测金黄色葡萄球菌的灵敏度,其中配方5(实施例5)阳性检出率最多,效果最好。

表3金黄色葡萄球菌免疫磁珠洗液对检出率的影响

Figure BDA0002246551170000061

实际样品验证

从三个农贸市场各采集45份猪肉样品,按照国标GB4789.4-2016对样品增菌,分别取增菌液1mL,20μL免疫磁珠加入1mL样品中混匀后,37℃孵育10min,放入磁力架中静置1~2min,去除上清;加入1mL本发明实施例的免疫磁珠洗液混匀后,37℃孵育15min,放入磁力架中静置1~2min后去除上清,洗涤两次。

最后用LAMP试剂盒或其他定量方法进行结果鉴定。

表4免疫磁珠洗液对阳性检出率的影响

Figure BDA0002246551170000062

Figure BDA0002246551170000071

从表4中所示的结果可以看出,使用配方4、5、6的洗液检出的阳性样品明显高于常规洗液,其中配方4和5(实施例4和5)的检出率最高,相对于传统生化鉴定方法,更有利于提高阳性样品的检出率。

上述实施例为本发明较佳的实施方式,但本发明的实施方式并不受上述实施例的限制,其他的任何未背离本发明的精神实质与原理下所作的改变、修饰、替代、组合、简化,均应为等效的置换方式,都包含在本发明的保护范围之内。

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