鼠李素-3-O-α-鼠李糖苷的药物用途及抗炎药物

文档序号:13393 发布日期:2021-09-21 浏览:35次 >En<

阅读说明:本技术 鼠李素-3-O-α-鼠李糖苷的药物用途及抗炎药物 (Pharmaceutical application of rhamnosine-3-O-alpha-rhamnoside and anti-inflammatory drug ) 是由 杨官娥 任凯达 周江韬 侯静 陈婕 于 2021-06-19 设计创作,主要内容包括:本发明通过探讨ARR对脂多糖(LPS)诱导的RAW264.7巨噬细胞的影响,并研究其潜在机制。通过CCK-8测定法检测了细胞毒性。进行了Griess、ELISA,RT-qPCR、蛋白质印迹、免疫荧光和免疫组化实验,以阐明炎症反应的分子机制。细胞毒性测试结果表明,最高200μg/mL的ARR对RAW264.7细胞的存活率没有明显影响。Griess、ELISA和RT-qPCR结果表明,ARR显著减轻了LPS诱导的RAW264.7细胞中炎症反应的产生。进一步的免疫印迹实验表明,ARR抑制了NF-κB通路并激活了Nrf2通路,这与免疫荧光和免疫组化实验的结果相吻合。ARR通过下调NF-κB和激活Nrf2介导的炎症反应共同发挥抗炎作用。因此,ARR可作为一种有潜力的广谱抗炎候选药物。(The invention researches the influence of ARR on RAW264.7 macrophage induced by Lipopolysaccharide (LPS) and researches the potential mechanism of the ARR. Cytotoxicity was detected by the CCK-8 assay. Griess, ELISA, RT-qPCR, western blot, immunofluorescence, and immunohistochemical experiments were performed to elucidate the molecular mechanisms of inflammatory reactions. The results of the cytotoxicity test show that ARR of up to 200. mu.g/mL has no obvious influence on the survival rate of RAW264.7 cells. Results of Griess, ELISA and RT-qPCR showed that ARR significantly reduced the production of inflammatory responses in LPS-induced RAW264.7 cells. Further immunoblotting experiments showed that ARR inhibited the NF-. kappa.B pathway and activated the Nrf2 pathway, which is consistent with the results of immunofluorescence and immunohistochemistry experiments. ARR exerts an anti-inflammatory effect through down-regulation of NF- κ B and activation of Nrf 2-mediated inflammatory responses. Therefore, ARR can be used as a potential broad-spectrum anti-inflammatory candidate drug.)

鼠李素-3-O-α-鼠李糖苷的药物用途及抗炎药物

技术领域

本发明涉及抗炎药物

技术领域

,尤其涉及一种鼠李素-3-O-α-鼠李糖苷的药物用途。

背景技术

炎症是人体对各种损害因素的防御反应,通常调节炎症反应在应对病原体和减轻受损组织的过程中起着至关重要的作用。异常的炎症反应会促进多种严重疾病的发生,包括类风湿性关节炎、慢性肝炎、阿尔茨海默氏病、炎症性肠病和癌症等。因此,有效控制炎症反应对于预防和治疗包括癌症在内的许多疾病至关重要。炎性疾病是多种复杂且难以治愈的疾病,建立炎性模型对于筛选炎性药物和治愈性疾病具有深远的意义。众所周知,LPS诱导的炎症反应模型已广泛用于炎症研究。

核转录因子κB(NF-κB)作为一种多方向的功能性调节剂,是抗炎药的核心。此外,预防慢性炎症介导的疾病的主要方法是调节促炎细胞因子,促炎性细胞因子的产生或分泌导致NF-κB活化,进而激活控制转录因子的表达,这些转录因子控制促炎性细胞因子的基因表达,包括白介素,诱导型一氧化氮合酶(iNOS)和环氧化酶2(COX-2)。 NF-κB的激活在许多严重疾病的发展中起着不可或缺的作用。

肿瘤坏死因子相关因子6(TRAF6)是NF-κB的关键调节剂,是炎症调节的关键步骤,NLRC3对促炎信号转导,TRAF6的泛素化和NF-κB p65的核易位具有抑制作用。此外,NLRC3可以抑制由NF-κB控制的主要炎症途径,该途径直接与分子TRAF6相互作用并形成一种新的蛋白质复合物,称为“ TRAFasome”。

核因子-E2相关因子2(Nrf2)是关键且重要的转录因子,它控制着许多抗氧化酶,包括血红素加氧酶-1(HO-1),NAD(P)H醌脱氢酶1(NQO1)。 HO-1在抗氧化和抑制免疫反应中起重要作用。文献报道,Nrf2及其靶基因作为炎症调节系统可抑制许多促炎细胞因子的表达,从而可拮抗NF-κB的活化。

北桑寄生是一种半寄生植物,以栎属和桦木属的树枝作为寄主,具有许多生物学特性,包括抗微生物、抗肿瘤、抗氧化等。北桑寄生甲醇提取物的乙酸乙酯可溶部分在体外显示出抗肿瘤活性。鼠李素-3-O-α-鼠李糖苷(ARR,图1A)是一种酚性黄酮类化合物,是北桑寄生的主要活性成分,关于ARR药理活性的报道很少。关于ARR的抗炎分子机制的研究未见文献报道。

发明内容

本发明的目的是提供一种鼠李素-3-O-α-鼠李糖苷的药物用途,以及由此用途获得的抗炎药物。

基于上述目的,本发明的一个方面提供了鼠李素-3-O-α-鼠李糖苷在制备广谱抗炎药中的应用。

优选地,所述鼠李素-3-O-α-鼠李糖苷在通过下调NF-κB和激活Nrf2介导的炎症反应共同发挥抗炎作用的药物中的应用。

根据本发明的另一方面,提供一种抗炎药物,包括作为活性组分的鼠李素-3-O-α-鼠李糖苷。

进一步地,为了获得适合于医疗的剂型,所述的抗炎药物还包括医学上可接受的辅料,上述剂型可以是注射剂、片剂、颗粒剂等。由于鼠李素-3-O-α-鼠李糖苷是水溶性化合物,因此,可以将鼠李素-3-O-α-鼠李糖苷直接用做注射剂或将其溶于水或盐水后制成为注射剂。

根据本发明的另一方面,鼠李素-3-O-α-鼠李糖苷的制备方法,其特征在于,包括:

步骤一,称取粉碎后的北桑寄生药材用75%乙醇超声提取3次,每次20min。提取液合并,减压浓缩得醇浸膏;

步骤二,取1g醇浸膏用温水捏溶成悬浮液定容至2ml,加入D101型大孔吸附树脂柱,用3倍量柱体积蒸馏水洗脱,去除大量的水溶性杂质;继续用3倍量60%的乙醇洗脱黄酮类化合物,收集洗脱液,浓缩,得到富集总黄酮;

步骤三,取60%乙醇提取的富集总黄酮1g与1g 200-300目硅胶,加入无水乙醇在旋转蒸发仪中拌样;

步骤四,用二氯甲烷:甲醇=17:2的溶剂硅胶柱湿法装柱,使用真空泵压柱或者自然沉降4h,将拌样的样品加入粗品与硅胶的比例为1:25的硅胶柱后加入2g硅胶,先使用二氯甲烷:甲醇:甲酸=17:2:1的流动相以3倍量的柱体积洗脱,分10mL试管收集洗脱液;再使用二氯甲烷:甲醇=4:1的流动相以3倍量的柱体积洗脱,分10mL试管收集洗脱液。点薄层色谱硅胶板,展开剂为二氯甲烷:甲醇:甲酸=17:2:1,将化合物一致的试管混合,旋转蒸发仪65°C减压浓缩得鼠李素-3-O-α-鼠李糖苷单体。

本发明通过探讨ARR对脂多糖(LPS)诱导的RAW264.7巨噬细胞的影响,并研究其潜在机制。通过CCK-8测定法检测了细胞毒性。进行了Griess、ELISA、RT-qPCR、蛋白质印迹、免疫荧光和免疫组化实验,以阐明炎症反应的分子机制。细胞毒性测试结果表明,最高200 μg/mL的ARR对RAW264.7细胞的存活率没有明显影响。 Griess、ELISA和RT-qPCR结果表明,ARR显著减轻了LPS诱导的RAW264.7细胞中炎症反应的产生。进一步的免疫印迹实验表明,ARR抑制了NF-κB通路并激活了Nrf2通路,这与免疫荧光和免疫组化实验的结果相吻合。ARR通过下调NF-κB和激活Nrf2介导的炎症反应共同发挥抗炎作用。因此,ARR可作为一种有潜力的广谱抗炎候选药物。

附图说明

图1. ARR抑制炎症反应。用各种浓度的ARR(0、5、10、20、40、80、100、200 μg/mL)处理RAW264.7细胞24小时。(B)使用WST-8测定法检查细胞活力。数据代表平均值±标准偏差(S.D.)。RAW264.7细胞用各种浓度的ARR(0、25、50、100 μg/mL)预处理2小时,然后在有或没有LPS(100 ng/mL)的情况下孵育24小时。(C)使用Griess试剂测定培养基中NO的水平。通过ELISA试剂盒检测了ARR对IL-6(D)、IL-1β(E)和PGE2(F)细胞因子产生的影响。数据代表平均值±标准差 ## P <0.01,相对于LPS治疗和ARR未治疗的对照组。相对于LPS治疗组和ARR治疗组,*P <0.05和**P <0.01。

图2. ARR降低了促炎因子含量。RAW264.7细胞用各种浓度的ARR(0、25、50、100 μg/mL)预处理2小时,然后在有或没有LPS(100 ng/mL)的情况下孵育24小时。进行RT-qPCR分析iNOS(A)、IL-6(B)、IL-1β(C)和COX-2(D)的mRNA表达。该值表示为平均值±标准差。(n =3)的三个独立实验。 ##P <0.01,相对于LPS治疗和ARR未治疗的对照组。*P <0.05和**P <0.01相对于LPS治疗组和ARR治疗组。

图3. ARR抑制了NF-κB通路并激活了Nrf2通路。在有或没有LPS的情况下,将RAW264.7细胞用各种浓度的ARR处理24小时。总NF-κB p65的蛋白表达和NF-κB p65的磷酸化(A)、核(B)和胞质溶胶NF-κB p65的蛋白表达(C),Nrf2(D)、HO-1(E)、NQO1(F)中的蛋白表达,使用ECL系统进行检测,并使用Image Lab软件进行定量。CON代表对照组的蛋白质,LPS代表来自100 ng/mL LPS处理组的蛋白质,Indo代表来自8μg/ mL LDO处理组的蛋白质,ARR代表来自100μg/ mL LRR处理组的蛋白质100 ng/mL LPS治疗组。数据代表平均值±标准差(n = 3)的三个独立实验。相对于LPS治疗组和ARR未治疗对照组,#P <0.05和##P <0.01。相对于LPS治疗组和ARR治疗组,*P <0.05和**P <0.01。

图4. ARR阻断了NF-κB p65核易位。用免疫荧光显微镜检测NF-κBp65的核易位。

图5. ARR通过增加NLRC3蛋白分子的含量来抑制TRAF6和NF-κBp65的蛋白产生。通过免疫组织化学染色(A)检测在LPS刺激的RAW264.7细胞中NLRC3、TRAF6和NF-κBp65的表达。使用Image J软件对NLRC3(B),TRAF6(C)和NF-κBp65(D)的平均光密度值进行定量。数据代表平均值±标准差(n = 3)的三个独立实验。相对于LPS治疗和ARR未治疗的对照组,#P <0.05和##P <0.01。相对于LPS治疗组和ARR治疗组,*P <0.05和**P <0.01。

具体实施方式

下面通过实验对本发明要求保护的技术方案及其技术效果进行说明。除非另作特殊说明,本发明中所用材料、试剂均可从本领域商业化产品中获得。

1.材料与方法

1.1试剂与化学药品

以如下方法从北桑寄生中分离出鼠李素-3-O-α-鼠李糖苷(ARR),其结构式见图1A。

步骤一,称取粉碎后的北桑寄生药材用75%乙醇超声提取3次,每次20min。提取液合并,减压浓缩得醇浸膏;

步骤二,取1g醇浸膏用温水捏溶成悬浮液定容至2ml,加入D101型大孔吸附树脂柱,用3倍量柱体积蒸馏水洗脱,去除大量的水溶性杂质;继续用3倍量60%的乙醇洗脱黄酮类化合物,收集洗脱液,浓缩,得到富集总黄酮;

步骤三,取60%乙醇提取的富集总黄酮1g与1g 200-300目硅胶,加入无水乙醇在旋转蒸发仪中拌样;

步骤四,用二氯甲烷:甲醇=17:2的溶剂硅胶柱湿法装柱,使用真空泵压柱或者自然沉降4h,将拌样的样品加入粗品与硅胶的比例为1:25的硅胶柱后加入2g硅胶,先使用二氯甲烷:甲醇:甲酸=17:2:1的流动相以3倍量的柱体积洗脱,分10mL试管收集洗脱液;再使用二氯甲烷:甲醇=4:1的流动相以3倍量的柱体积洗脱,分10mL试管收集洗脱液。点薄层色谱硅胶板,展开剂为二氯甲烷:甲醇:甲酸=17:2:1,将化合物一致的试管混合,旋转蒸发仪65°C减压浓缩得鼠李素-3-O-α-鼠李糖苷单体。

脂多糖(LPS)和吲哚美辛(Indo)购自Sigma-aldrich(美国密苏里州圣路易斯)。DMEM高糖培养基,胎牛血清(FBS)和青霉素-链霉素均购自Gibco(美国马里兰州盖瑟斯堡)。包括NF-κB p65、磷酸-NF-κB-p65、Nrf2、NQO1、HO-1、NLRC3和TRAF6在内的主要兔单克隆抗体是从Abcam(英国剑桥)获得的。细胞因子小鼠酶联免疫试剂盒购自Elabscience(中国,武汉)。

1.2细胞培养和细胞活力测定

小鼠单核巨噬细胞(RAW264.7,目录号:CL-0190)的白血病细胞获自Procell LifeScience&Technology Co.Ltd.(武汉,中国),并在添加有10% 热灭活FBS和1% 青霉素-链霉素的DMEM培养基中孵育在37°C和5% CO2的培养箱中。进行2-(2-甲氧基-4-硝基苯基)-3-(4-硝基苯基)-5-(2,4-二硫代-苯甲基)-2H-四唑啉钠盐(WST-8)测定以测量药物对细胞的活力作用。将RAW264.7巨噬细胞(4 × 104细胞/mL)接种在96孔板(100 μL/孔)中并用各种量的ARR(5、10、20、40、80、100、200 μg/mL)处理)24小时。然后将10 μL WST-8试剂(Sigma-aldrich,美国密苏里州圣路易斯)添加到每个孔中,并与细胞再孵育2小时。在电子偶联剂1-甲氧基PMS的存在下,WST-8转化为橙黄色水溶性甲臜。使用Thermo Scientific酶标仪(Thermo Fisher Scientific,上海,中国)在450nm下测定光密度。

1.3一氧化氮(NO)测定

为了进行NO分析,在6孔板中培养了1 × 106 RAW264.7巨噬细胞。温育24小时后,加入LPS并与细胞温育2小时,然后加入各种量的ARR(25、50、100 μg/mL)。再过24小时后,将200 µL Griess试剂(Sigma-aldrich,美国)和培养基混合物添加到96孔板中,并在黑暗中于37°C孵育30分钟。使用Thermo Scientific Microplate Reader在550 nm下检测吸光度。

1.4细胞因子测定

使用ELISA试剂盒根据试剂盒的说明书确定每组巨噬细胞上清液中的细胞因子IL-6,IL-1β,PGE2。然后立即通过Thermo Scientific Microplate Reader在450 nm的每个孔中对吸光度进行定量。

1.5实时定量PCR(RT-qPCR)

使用Trizol(TransGen Biotech,北京,中国)从RAW264.7细胞中获得总RNA,并使用Nanodrop 1000分光光度计(Thermo Fisher Scientific,上海,中国)测定分离的RNA的质量和浓度。根据RT-qPCR合成试剂盒的规格,使用RT-qPCR合成试剂盒合成了第一链cDNA。使用RT-qPCR试剂盒(PerfectStartTM Green qPCR SuperMix,TransGen Biotech)对IL-6,IL-1β,COX-2,iNOS和GAPDH的mRNA进行分析。将IL-6,IL-1β,COX-2,iNOS的mRNA表达标准化为GAPDH(作为内部对照),并使用2-ΔΔCt方法进行计算。引物如表1所示。

1.6免疫印迹

通过使用全细胞裂解测定(KeyGEN Bio TECH,江苏,中国)裂解RAW264.7细胞。使用核和细胞质蛋白质提取试剂盒(KeyGEN Bio TECH)提取核和细胞质总蛋白质。用BCA蛋白质测定试剂盒(KeyGEN Bio TECH)测量蛋白质浓度。然后,将每个样品中的20 μg蛋白在10%SDS-PAGE上进行电泳分离,然后转移到聚偏二氟乙烯(PVDF)膜上。将特异性识别NF-κBp65,磷酸-NF-κBp65、Nrf2、HO-1、NQO1、β-肌动蛋白和组蛋白H3的一抗用封闭缓冲液以1:1000、1:1000、1:1000、1:1000、1:1000、1:2000、1:2000比例稀释。然后将膜用辣根过氧化物酶偶联的抗兔探针探测1小时。用TBST缓冲液多次洗涤后,使用增强型化学发光(ECL)溶液和化学发光成像系统(Bio-Rad Laboratories,Inc.)观察蛋白条带,并使用Image Lab软件(6.0版,Bio-Rad Laboratories,公司)分析。

1.7免疫荧光显微镜

将RAW264.7细胞接种到置于6孔板孔底部的玻璃盖玻片上,并用4%多聚甲醛固定,并用0.1% TrintonX-100透化,并用10%山羊血清封闭。然后,将细胞与兔特异性NF-κB p65抗体(1:1000稀释度)和山羊抗兔二抗IgG(H + L)(CY3偶联)抗体(1:5000稀释度)一起温育。细胞核用二氨基-2-苯基吲哚(DAPI,Pierce)染色后,加入一滴抗荧光淬灭固定液,并通过免疫荧光显微镜成像。使用软件Image J(美国国立卫生研究院)进行图片分析和合成。

1.8免疫组织化学染色

NLRC、TRAF6和NF-κBp65抗体用作一抗,生物素化抗体用作二抗,所有样品均用DAB染色。使用荧光显微镜获得可视化图像,并且使用Image J(美国国立卫生研究院)对获得的图像进行定量。

1.9统计分析

所有数据均以平均值±标准差(S.D.)表示。使用SPSS软件(版本26.0,IBM,纽约,美国)和GraphPad Prism 6.0版(GraphPad软件,加利福尼亚,圣地亚哥)进行统计分析。 进行单向方差分析以比较多种平均值。 P <0.05和P <0.01分别被认为具有统计学显著性和统计学极显著性。

2.结果

2.1 ARR对LPS刺激的RAW 264.7细胞中细胞活力的影响

为了研究ARR对细胞生存力的影响,将RAW264.7细胞与0-200 μg/mL ARR孵育24小时。如图1B所示,发现高达200 μg/mL的ARR浓度对RAW264.7细胞的活力没有明显影响。根据先前关于ARR抗炎作用的实验,在以下试验中使用了25至100 μg/mL的浓度。

2.2 ARR对LPS刺激的RAW264.7细胞炎症介质的影响

由于LPS诱导的炎症反应模型被广泛用于抗炎药的炎症研究中,因此我们在RAW264.7细胞中建立了LPS诱导的炎症反应模型以评估ARR的抗炎作用。与LPS孵育后,与对照组相比,NO的含量显著增加,但是,添加ARR显著抑制LPS诱导的NO分泌(图1C)。与LPS组相比,高剂量的ARR(100 μg/mL)抑制LPS诱导的NO浓度超过90%。这些结果表明ARR显著抑制了RAW264.7细胞中NO的产生。IL-6、IL-1β和PGE2是介导炎症反应的关键炎症细胞因子,使用ELISA试剂盒检测RAW264.7细胞上清液中IL-6、IL-1β和PGE2的含量。如图1D-F所示,与单独使用LPS治疗的组相比,LPS明显上调了IL-6、IL-1β和PGE2的浓度,而ARR明显降低了三种炎性细胞因子的表达水平。综上所述,这些数据表明ARR通过抑制IL-6、IL-1β和PGE2的释放发挥炎性作用,此外,ARR的抗炎能力呈剂量依赖性,在浓度为100 μg/mL时效果最佳,(图1D-F)。

2.3 ARR对LPS刺激的RAW264.7细胞促炎因子基因水平的影响

为了证明ARR对炎症因子的调节是否基于mRNA水平,使用RT-qPCR进一步检测了各种炎症因子的表达。如图2A-D所示,与单独用LPS处理相比,添加ARR后,炎性因子iNOS、IL-6、IL-1β和COX-2的mRNA水平显著降低。 100 μg/mL时,ARR的缓解作用最为明显。这些结果与ELISA结果一致,表明ARR可以通过在mRNA和蛋白质水平上抑制许多炎症因子的表达来发挥抗炎作用。

2.4 ARR对LPS刺激的RAW264.7细胞中NF-κB p65易位的影响

NF-κB是参与炎症反应的众所周知的转录因子,因此我们使用蛋白质印迹法检测了p65的磷酸化以及NF-κB p65向核的移位。LPS显著增加了NF-κB p65的磷酸化,而ARR的添加显著抑制了RAW264.7细胞中NF-κB p65的磷酸化(图3A)。LPS刺激诱导NF-κB p65易位至细胞核。但是,添加ARR可显著抑制LPS诱导的RAW264.7巨噬细胞中NF-κB p65核移位(图3B)。免疫荧光显微镜观察到了NF-κB p65核易位的相似结果。如预期的那样,与对照组相比,发现LPS显著增加了NF-κB p65核移位(图4)。但是与单独使用LPS组相比,添加ARR可以显著抑制NF-κB p65的核易位(图4)。两者合计,我们认为ARR通过抑制NF-κB p65易位发挥抗炎作用。

2.5 ARR对LPS刺激的RAW 264.7细胞中NLRC3、TRAF6和NF-κB p65蛋白表达的影响

为了进一步研究ARR对NF-κB通路的影响,进行了IHC染色以确定RAW264.7细胞中NLRC3、TRAF6和NF-κBp65的表达。LPS降低NLRC3,同时增加TRAF6和NF-κBp65表达(图5)。然而,与单独使用LPS的治疗组相比,ARR显著改善了NLRC3的表达,而TRAF6和NF-κBp65的表达却被ARR明显地阻断了。这些数据表明,ARR在炎症反应中显著增强了NLRC3的激活,降低了TRAF6和NF-κBp65的水平。

2.6 ARR对LPS刺激的RAW 264.7细胞中Nrf2途径的影响

我们还确定了ARR对LPS刺激的RAW264.7细胞中Nrf2途径的影响,结果表明,与对照组和单独使用LPS的治疗组相比,ARR明显诱导了Nrf2蛋白及其靶分子HO-1和NQO1的表达水平。(图3D-3F)。结果表明,ARR还可以通过Nrf2途径发挥抗炎作用。

3.讨论

炎症是宿主防御的自然反应过程,根据病程长短可分为急性和慢性。急性发炎以发红,肿胀,疼痛等为主要症状。慢性炎症是由炎症因子的持续存在和对组织的损害引起的,这表现为局部组织的变性,渗出和增殖。ARR是从北桑寄生中提取的类黄酮化合物,目前还没有关于ARR对炎症及其潜在机制的影响的研究。

当巨噬细胞被激活时,它们会产生许多引起炎症的炎性细胞因子。众所周知,LPS是一种巨噬细胞刺激物,可引起巨噬细胞分泌促炎因子,包括NO、PGE2、IL-6和IL-1β。因此,在研究中我们建立了LPS诱导的炎症反应模型,以评估ARR对RAW264.7细胞的抗炎作用。暴露于高水平的NO会引起先天性免疫反应,并导致组织破裂或细胞损伤。细胞因子IL-6和IL-1β造成组织损伤,并在介导各种炎症性疾病中起重要作用。在这项研究中,我们发现ARR显著抑制促炎因子IL-6和IL-1β的分泌。

炎症反应伴随着许多信号通路的系统激活。NF-κB在炎症反应中起关键作用,因为它促进促炎细胞因子的释放,并且p65易位在NF-κB的激活中起关键作用,这也被证实是LPS诱导巨噬细胞炎症的主要信号途径。NF-κB激活的抑制已被认为是炎症治疗中的一种抗炎策略。NF-κB通过激活转录来调节iNOS、COX-2和其他相关炎症基因的表达。NO是iNOS合并的游离气体信号分子,而iNOS介导的过量NO则引起炎症反应。已知COX-2会产生促炎物质前列腺素(例如PGE2)并引起炎症。包括类黄酮,槲皮素,染料木黄酮和山奈酚在内的多种天然化合物已被视为天然COX-2抑制剂。Min-Seon Kim证明了formononetin-7-O-磷酸盐通过抑制NF-κB核移位来抑制COX-2。

我们还探讨了ARR是否通过NF-κB信号通路发挥抗炎作用。如预期的那样,我们的结果表明ARR不仅抑制iNOS和COX-2 mRNA的表达,而且以剂量依赖的方式降低NO和PGE2的含量。此外,ARR显著抑制了NF-κB p65的表达。据我们所知,这是第一个证明ARR可通过LPS诱导的RAW264.7细胞通过NF-κB途径抑制NF-κB p65表达的第一个证据。

NLRC3充当检查点,以防止炎症失调。用LPS刺激RAW264.7细胞后,NLRC3分子充当去泛素化酶,以去除TRAF6的泛素化并抑制NF-κB p65亚基的核易位,从而减少IL-1β的释放。根据我们的研究结果,ARR增加了NLRC3的表达,从而抑制了NF-κB途径的激活。

Nrf2信号通路是炎症的另一个重要调节因子。Nrf2及其靶分子如HO-1和NQO1的活化被认为是针对氧化应激和炎症反应的细胞内保护性调节剂。Nrf2的激活可以破坏NF-κB与靶分子之间的串扰,从而控制炎症反应。此外,HO-1和NQO1抑制由NF-κB介导的炎性粘附分子的转录。在这项研究中,我们的结果表明ARR诱导Nrf2并抑制NF-κB的核易位。因此,我们认为ARR诱导的Nrf2激活会阻止由NF-κB介导的炎性细胞因子的增加。

综上所述,我们的研究表明鼠李素-3-O-α-鼠李糖苷(ARR)至少部分地通过调节NF-κB和Nrf2介导的炎症反应,在LPS刺激的RAW264.7细胞中发挥抗炎作用,可以作为活性成分制备广谱抗炎药物。鼠李素-3-O-α-鼠李糖苷ARR为水溶性,制剂可为注射剂。当然,也可以加入其他医学上可接收的辅料制成如片剂、颗粒剂等剂型。

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